腸炎沙門菌sifA基因缺失株的無痕構建及其在巨噬細胞內的增殖特性研究

劉桂鳳，楊家興，丁 煒，王耀楠，蔡 媛，張 健，王 洋，耿士忠，潘志明，焦新安

腸炎沙門菌(SalmonellaEnteritidis, SE)是一種兼性細胞內寄生的革蘭陰性菌，為重要的人獸共患病原菌之一。該菌無特異性宿主，不僅能引起畜禽發病死亡造成嚴重的經濟損失，而且被污染的畜禽產品作為腸炎沙門菌的攜帶者，引發人食源性疾病危害公共衛生安全[1-2]。持續感染和免疫逃逸是沙門菌一個致病特征，主要是由于其能夠在細胞內進行復制和增殖。沙門菌接觸到宿主細胞后能黏附于細胞表面，侵襲進入宿主細胞內部，在細胞內生存繁殖，即沙門菌的胞內增殖。為了能夠在細胞內生存和繁殖，沙門菌適應性地產生一種沙門菌囊泡結構(Salmonella-containing vacuole, SCV)來逃避細胞對其的吞噬清除[3-4]。沙門菌的III型分泌系統(Type Ⅲ Secretion Systems, T3SS)是一個由膜內/外蛋白組成的多組份跨膜通道，參與沙門菌囊泡的生物發生和成熟過程。作為“分子注射器”的T3SS主要功能是分泌和轉運效應蛋白，它主要通過效應蛋白來改變宿主細胞的生理活動，促進沙門菌侵入細胞并在細胞內生存[5-6]。III型分泌系統包括T3SS-1和T3SS-2，T3SS-1由沙門菌毒力島1(SPI-1)基因組基因編碼，其效應物作用于宿主細胞質膜上以使細菌入侵和SCV生物發生；由沙門菌毒力島2(SPI-2)編碼的T3SS-2效應物作用于囊泡膜，促進SCV成熟、SIF形成和囊泡內沙門菌復制[7-8]。

sifA基因是沙門菌的一個毒力相關基因，由T3SS-2分泌的SifA蛋白在SCV的形成過程中發揮重要作用，sifA基因缺失突變后無法形成SifA蛋白，對沙門菌誘導形成SCV造成嚴重影響，使其不能在吞噬細胞內正常復制生存[9]。SifA蛋白可能參與沙門菌入侵宿主細胞[10]及沙門菌引起機體免疫功能受損[11]。通過對巨噬細胞系J774.2與上皮細胞系HeLa等一些比較成熟的細胞模型中SCV形成的研究，沙門菌在宿主細胞內SCV的形成機制已經逐漸被闡明，但這只針對少數血清型的沙門菌，其中研究最多的模式菌就是鼠傷寒沙門菌。而對于腸炎沙門菌在細胞內增殖及SCV形成機制的研究比較匱乏，是否與鼠傷寒沙門菌一致，需要進一步深入研究予以驗證。

本實驗室無痕敲除靶基因技術成熟[12]，利用具有lacZ基因的pGMB152自殺質粒作為中間載體，通過藍白斑篩選的方式，直觀地篩選重組菌，構建腸炎沙門菌sifA基因缺失株C50041ΔsifA及雙基因缺失株C50041ΔspiCΔsifA，并研究其基本生物學特性及其對胞內腸炎沙門菌增殖的影響，為更深入地探索沙門菌胞內增殖規律奠定基礎。對于腸炎沙門菌在細胞內SCV形成機制的研究，將有助于進一步探究腸炎沙門菌致病機理，為腸炎沙門菌的防控提供重要理論依據。

1 材料與方法

1.1菌株、質粒與細胞 本研究中所使用的菌株、質粒及細胞信息見表1。

表1 實驗所用菌株、質粒與細胞
Tab.1 Bacterial strains, plasmids and cells used in this study

名稱用途備注C50041受體菌腸炎沙門菌野生株C50041ΔspiC受體菌腸炎沙門菌spiC缺失株C50041(spiC-gfp)受體菌腸炎沙門菌spiC-gfp基因融合E.coli.Spy372pGMB152-ΔsifA克隆pGMB152宿主菌E.coli.χ7213pGMB152-ΔsifA克隆pGMB152宿主菌,DAP依賴pGMB152用于sifA基因敲除的自殺質粒Ampr,Smr,lacZRAW264.7用于沙門菌增殖的宿主細胞鼠源巨噬細胞

注：來源均為本實驗室保存。

1.2主要試劑 DNA膠回收試劑盒、SalⅠ限制性內切酶、質粒純化試劑盒、細菌基因組提取試劑盒、氨芐青霉素(Amp)和鏈霉素(Sm)等抗生素、DNA Marker、IPTG、PrimeScriptTMRT reagent Kit、Primestar max DNA Polymerase均購自寶生物工程(大連)有限公司；ClonExpress One Step Cloning一步法連接試劑盒以及2×Taq Master mix購自南京Vazyme生物科技有限公司；FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)試劑盒購自羅氏公司；API 20E腸道菌鑒定卡購自法國Bio Mérieux公司；DMEM培養基、胎牛血清、0.25%胰酶、青鏈霉素購自美國ThermoFisher公司；快速質粒小提試劑盒、細菌及細胞總RNA提取試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司。高效感受態細菌制備試劑盒及其他常規試劑購自生工生物工程(上海)股份有限公司。

1.3引物的設計與合成 本研究中所使用的引物堿基序列見表2，引物由南京金斯瑞生物有限公司合成。

表2 用于PCR擴增的引物
Tab.2 Primers used for PCR in this study

PrimesSequence(5′-3′)Size/bpsifA-U-FCCCCCCCTGCAGGTCGACTAATGGGTGGCGCGAAAAAC620sifA-U-RCGCTTTGTTGTTCTGAGCGAATTCGTATTCCTTGGGGAGTTGGsifA-D-FCCAACTCCCCAAGGAATACGAATTCGCTCAGAACAACAAAGCG730sifA-D-RCTTATCGATACCGTCGACCATCACGATATCCGGCGACAsifA-U-FCCCCCCCTGCAGGTCGACTAATGGGTGGCGCGAAAAAC1349(Δ); 2173(WT)sifA-D-RCTTATCGATACCGTCGACCATCACGATATCCGGCGACApGMB152-FCGTGGAGGCCATCAAACCAC283(Δ); 1632(WT)pGMB152-RCGCGAAATAAACGACCGGGAnsifA-FGTTGTCTAATGGAACCGATAATATCGqPCRnsifA-RCTACCCCCTCCCTTCGACAT16S-FCGGGGAGGAAGGTGTTGTGqPCR16S-RGAGCCCGGGGATTTCACATC

注：黑色粗體部分為與pGMB152SalⅠ酶切位點側翼序列互補配對片段，sifA-U-R和sifA-D-F為互補序列。

1.4 目的基因與重組自殺載體的制備

1.4.1腸炎沙門菌基因組DNA的提取 將凍存的腸炎沙門菌C50041接種于LB固體平板培養單菌落，將單菌落再接種于液體培養基中，37 ℃ 180 r/min連續震搖培養過夜，取4 mL菌液利用細菌基因組提取試劑盒提取腸炎沙門菌C50041基因組DNA。

1.4.2sifA基因上下游同源臂sifA-U和sifA-D片段的擴增 以所提C50041基因組DNA為模板，分別以sifA-U-F/R和sifA-D-F/R為引物，利用PCR擴增sifA基因上下游同源片段sifA-U、sifA-D片段。PCR擴增體系(50 μL)：Primestar max DNA Polymerase 22 μL，引物F(10 μmol/L)2 μL，引物R(10 μmol/L)2 μL，模板DNA 2 μL，滅菌超純水SW 22 μL。PCR反應條件：98 ℃ 5 min；98 ℃ 10 s，63 ℃ 15 s，72 ℃ 40 s，30個循環；72 ℃ 10 min。PCR反應結束后，利用0.7%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR產物，利用DNA膠回收試劑盒回收純化目的片段。

1.4.3pGMB152質粒載體的制備 挑取E.coli. Spy372 (pGMB152)單菌落轉接于100 mL含Amp(終濃度100 μg/mL)和Sm(終濃度100 μg/mL)的LB液體培養基中，于37 ℃ 180 r/min搖床內震搖培養過夜，常規方法提取質粒pGMB152后，再用質粒純化試劑盒純化。

純化后的pGMB152質粒利用SalⅠ限制性內切酶進行單酶切。酶切體系(150 μL)：H Buffer 15 μL，SalⅠ 10 μL，pGMB152質粒100 μL，滅菌SW 25 μL。酶切反應條件：37 ℃，2 h。利用DNA膠回收試劑盒回收純化酶切產物，回收產物即為本研究所用線性自殺質粒載體。

1.5sifA基因缺失株C50041ΔsifA無痕構建

1.5.1同源重組自殺質粒pGMB152-ΔsifA構建 利用ClonExpress One Step Cloning一步法連接試劑盒將sifA基因上下游同源片段sifA-U、sifA-D與線性酶切質粒PGMB152進行連接，構建同源重組自殺質粒并將其命名為pGMB152-ΔsifA。

1.5.2E.coli. Spy372與E.coli. χ7213感受態細菌的制備 分別用LB平板和含 DAP(終濃度100 μg/mL)的平板復蘇E.coli. Spy372和E.coli. χ7213，于37 ℃培養箱培養單菌落。將E.coli. Spy372轉接于LB液體培養基中，E.coli. χ7213轉接于含DAP的LB液體培養基中，于搖床震搖培養13 h至對數生長后期，1∶50擴大培養至含100 mL LB液體培養基中，震搖培養至OD600=0.5左右，按照高效感受態細菌制備試劑盒說明書制備E.coli. Spy372與E.coli. χ7213感受態細菌。

1.5.3重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA的制備 10 μL連接產物(pGMB152-ΔsifA)加入到100 μLE.coli.Spy372感受態中，置于冰上30 min使其充分接觸，于42 ℃金屬浴熱擊90 s，將連接產物熱轉化進入E.coli.Spy372，將轉化后的重組菌涂布在含X-gal(終濃度40 μg/mL)、IPTG(終濃度24 μg/mL)、Amp和Sm的LB固體平板上，形成藍色重組菌E.coli. Spy372(pGMB152-ΔsifA)，經自殺質粒特異性引物pGMB152-F/R進行菌落PCR驗證正確后，利用快速質粒小提試劑盒提取重組菌E.coli. Spy372(pGMB152-ΔsifA)的重組質粒。利用熱轉化將重組質粒轉入E.coli.χ7213，轉化后的重組菌涂布在含DAP、Amp、Sm、X-gal和IPTG的LB平板上，形成藍色重組菌E.coli.χ7213(pGMB152-ΔsifA)，鑒定正確后，以腸炎沙門菌野生株C50041為受體菌(構建C50041ΔspiCΔsifA時受體菌為C50041ΔspiC)，重組菌E.coli.χ7213(pGMB152-ΔsifA)為供體菌，按受體菌∶供體菌=1∶4的比例做固相雜交，進行接合轉移[13]，固相雜交后混合細菌用PBS稀釋至合適梯度后涂布在含Amp、Sm、X-gal和IPTG的平板上形成藍色重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA)。

1.5.4質粒載體的脫除 挑取沙門菌重組菌C50041(pGMB152-ΔsifA)單菌落接種于不含NaCl、含10%蔗糖的LB液體培養基中震搖培養過夜，以脫除自殺質粒，然后將菌液稀釋至合適的梯度涂布在含X-gal、IPTG的LB平板上，篩選白色菌落進行PCR鑒定，將PCR鑒定正確的沙門菌命名為C50041ΔsifA。

1.6 C50041ΔsifA鑒定

1.6.1抗生素耐藥性鑒定 將缺失株C50041 ΔsifA與接合轉移后的重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA)在同一塊含Amp、Sm的LB固體平板上劃線進行抗生素耐藥性驗證。

1.6.2菌落藍白色鑒定 將缺失株C50041 ΔsifA與接合轉移后的重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA)在同一塊含X-gal、IPTG的LB平板上劃線進行藍白斑鑒定。

1.6.3PCR鑒定 在缺失株的構建中主要通過菌落PCR進行鑒定，挑取一個單菌落于50 μL的滅菌SW中混勻，此即進行菌落PCR驗證的模板。 PCR擴增體系(25 μL)：2×Taq mix 12.5 μL，滅菌SW 9.5 μL，引物F 1 μL，引物R 1 μL，模板 1 μL。反應條件為：94 ℃ 5 min；94 ℃ 45 s，63 ℃ 45 s，72 ℃ 45 s，30個循環；72 ℃ 10 min。PCR結束后，通過0.7% 瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR產物。

1.7 生物學特性鑒定

1.7.1生長特性鑒定 挑取C50041、C50041-ΔsifA及C50041ΔspiCΔsifA(構建方法與C50041ΔsifA單基因缺失株構建方法相同)單菌落接種于LB液體培養基培養過夜，次日分別轉接到20 mL的LB液體培養基中并用培養基調節OD600=0.05。在37 ℃ 180 r/min的搖床中連續培養12 h，每隔1 h利用分光光度計測定各個菌液的OD600值，并繪制細菌生長曲線，以野生株C50041為對照，觀察sifA基因對腸炎沙門菌生長速度的影響。

1.7.2生化特性鑒定 挑取新鮮的C50041、C50041ΔsifA及C50041ΔspiCΔsifA菌落于生理鹽水中，利用比濁儀調整比濁度為0.8左右。參照使用說明書的要求向鑒定卡中加入菌液，將API 20E生化鑒定板置于37 ℃培養箱培養24 h后觀察并記錄結果。以野生株C50041為對照，觀察sifA基因對腸炎沙門菌生化特性的影響。

1.8 C50041ΔsifA在巨噬胞內增殖

1.8.1巨噬細胞培養 用含10%的FBS、1%青鏈霉素的DMEM培養基于37 ℃含5% CO2的條件下培養鼠源巨噬細胞RAW264.7。在感染細胞前，用0.25%胰酶消化細胞1 min，換用含10% FBS無抗生素的DMEM培養基吹打懸浮細胞，活細胞計數后將細胞轉移到24孔板中繼續培養，細胞接種量為4.0×105CFU/孔，培養18 h待細胞長滿細胞培養孔底時，進行沙門菌感染。

1.8.2沙門菌感染巨噬細胞 挑取C50041、C50041ΔspiC、C50041ΔsifA及C50041ΔspiCΔsifA單菌落接種于LB液體培養基中，37 ℃ 180 r/min的條件下培養過夜，用滅菌PBS洗2遍后將細菌濃度調整至OD600=1.0。過夜培養的24孔細胞板中的鼠源巨噬細胞換用新的含血清但無抗生素的培養基，每孔細胞加入100 μL的菌液進行感染，每個菌株做3個重復，加完細菌后將細胞板以1 000 r/min的轉速離心10 min，使細菌與巨噬細胞充分接觸，加速細菌黏附；離心后將細胞板于細胞培養箱放置30 min，此階段為細菌黏附細胞的過程；棄掉上清培養基，用PBS洗2遍后加入含100 μg/mL慶大霉素、10% FBS的培養基，殺死未進入細胞的細菌，并將細胞板置于細胞培養箱培養1 h，此時為細菌的侵襲過程；再次棄掉上清，用PBS洗2遍后加入含10 μg/mL慶大霉素、10% FBS的培養基于細胞培養箱繼續培養。加入含較低濃度的慶大霉素的培養基時為增殖時間點的零點，分別取增殖0 h、8.5 h、20 h、24 h的時間點，用0.2% Triton X-100溶液裂解細胞而釋放出胞內的沙門菌，并進行細菌計數。以0 h時的細菌量為初始值。

1.9sifA基因的表達

1.9.1胞外菌sifA基因的表達 過夜震搖培養的腸炎沙門菌C50041、C50041ΔspiC、C50041ΔsifA和C50041ΔspiCΔsifA1∶50擴大培養至20 mL的LB液體培養基中，震搖培養至OD600=0.65左右，5 000 r/min離心10 min棄上清，加入1.5 mL PBS和3 mL的RNA保護劑重懸混勻后5 000 r/min離心10 min,棄上清收集細菌；再利用RNA提取試劑盒提取RNA，利用反轉錄試劑盒進行反轉錄，以反轉錄所得cDNA為模板進行熒光定量PCR，測定sifA基因表達量的熒光定量PCR引物為nsifA-F/R，以16S RNA引物16S-F/R為內參引物，將野生株C50041的sifA基因表達量定為1。熒光定量PCR體系(20 μL)：FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)10 μL，引物F(10 μmol/L)0.8 μL，引物R(10 μmol/L) 0.8 μL，模板(cDNA) 2 μL，RNase free Water 6.4 μL。反應條件為：95 ℃ 30 s；95 ℃ 5 s，60 ℃ 34 s，40個循環。

1.9.2胞內沙門菌sifA基因的表達 選擇腸炎沙門菌C50041、C50041ΔspiC、C50041ΔsifA和C50041ΔspiCΔsifA在鼠源巨噬細胞內增殖1 h、8.5 h、19 h、20 h的時間點，收集細胞提取RNA。沙門菌在胞內增殖一定時間后棄掉細胞培養基，用PBS洗2遍后每孔加入1 mL的細胞RNA保護劑，移液槍反復吹打混勻細胞，細胞懸浮后將所有液體轉移到去RNA酶的1.5 mL的離心管中，每個菌每個時間點做3個重復。然后利用RNA提取試劑盒提取細胞內的RNA，并用反轉錄試劑盒進行反轉錄得到cDNA，此即用于熒光定量PCR的模板。熒光定量PCR體系和程序與胞外sifA基因表達的熒光定量PCR的體系、程序相同。通過熒光定量PCR測定各個時間點的細胞內sifA基因的表達情況。

1.10數據分析 使用GraphPad Prism 8.0.1軟件對實驗數據進行統計與整理，并利用該軟件制圖。檢驗方法采用t-test檢驗，檢驗水準為ɑ=0.05。

2 結 果

2.1C50041ΔsifA基因缺失株鑒定

2.1.1重組自殺質粒的構建及鑒定 PCR擴增sifA基因上下游同源片段，利用一步連接法試劑盒將sifA基因上下游同源片段連接到SalⅠ酶切的自殺質粒pGMB152載體上，形成重組自殺質粒pGMB152-ΔsifA，轉化E.coli. Spy372感受態細菌，構建重組菌E.coli. Spy37(pGMB152-ΔsifA)。獲得的重組質粒經sifA-U-F/R和sifA-D-F/R引物對擴增，擴增條帶分別為620 bp和730 bp，大小正確(圖1)。引物PGMB152-F/R進行菌落PCR驗證，擴增條帶約為1 632 bp(圖2)，與預期結果一致。

M：DL2000 Maker；1：sifA-U同源片段；2：sifA-D同源片段圖1 重組質粒中sifA基因上下游同源片段的PCR驗證Fig.1 PCR identification of sifA-U and sifA-D of pGMB152-ΔsifA

M：DL2000 Maker；1：E.coli. Spy372(pGMB152-ΔsifA)；2：E.coli. χ7213(pGMB152-ΔsifA)圖2 載體特異引物pGMB152-F/R PCR驗證重組菌中pGMB152-ΔsifAFig.2 PCR identification of pGMB152-ΔsifA by pGMB152-F/R

2.1.2構建供體重組菌E.coli. χ7213(pGMB152-ΔsifA) 從重組菌E.coli. Spy372(pGMB152-ΔsifA)提取質粒pGMB152-ΔsifA，再轉化E.coli. χ7213感受態細菌中構建重組菌E.coli. χ7213(pGMB152-ΔsifA)，利用引物PGMB152-F/R進行菌落PCR驗證，擴增出預期條帶(圖2)。該菌具有DAP生長依賴性，以作供體菌，便于與受體菌C50041進行接合轉移和篩選。

2.1.3重組沙門菌C50041(ΔsifA)構建與鑒定 以重組菌E.coli. χ7213(pGMB152-ΔsifA)為供體與C50041受體進行接合轉移，利用DAP生長依賴性去除供體菌E.coli. χ7213(pGMB152-ΔsifA)，抗生素去除受體菌C50041，以及LacZ特性篩選藍色重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA)，重組質粒pGMB152-ΔsifA進入C50041后進行上下游同源片段交叉互換，形成藍色重組沙門菌C50041(pGMB152-ΔsifA)。

自殺質粒pGMB152的復制需要一種特定的蛋白，而腸炎沙門菌C50041中不含該蛋白，所以pGMB152質粒在C50041中無法復制。用不含NaCl含10%蔗糖的LB液體培養基傳代后在含X-gal、IPTG的LB平板上的白色菌落有兩種可能：一是同源片段雙交換，sifA基因缺失的菌株，另一種則可能是同源片段不交換，目的基因片段與pGMB152質粒一起丟失而回復為野生株。在傳代過程中利用引物sifA-U-F/sifA-D-R進行菌落PCR驗證。經過兩次脫質粒，最終獲得質粒脫除的sifA基因缺失株C50041ΔsifA。并分別用sifA-U-F/sifA-D-R和PGMB152-F/R的引物進行了PCR驗證，證明其正確性，結果如圖3、圖4。利用sifA-U-F/sifA-D-R的引物擴增條帶大小與預期結果一致，且PGMB152-F/R的引物未擴增出條帶證明PGMB152質粒已脫除，C50041ΔsifA構建成功。

M：DL2000；1：C50041(pGMB152-ΔsifA)；2：C50041ΔsifA; 3: 野生株C50041圖3 引物sifA-U-F/sifA-D-R PCR重組沙門菌結果Fig.3 PCR identification of the recombinant SE strains with primer sets sifA-U-F/sifA-D-R

M：DL2000；1：C50041(pGMB152-ΔsifA)；2：C50041ΔsifA；3：野生株C50041圖4 引物pGMB152-F/R PCR重組沙門菌結果Fig.4 PCR identification of the recombinant C50041-ΔsifA with primer pGMB152-F/R

A、B：6株sifA基因缺失株的藍白斑驗證；C、D：6株sifA基因缺失株的抗生素耐藥性驗證對照：重組沙門菌C50041 (pGMB152-ΔsifA)；1-6：6株sifA基因缺失株圖5 C50041ΔsifA藍白斑驗證和抗生素耐藥性分析Fig.5 Analysis of blue/white and antibiotic resistances of C50041ΔsifA strains

2.1.4C50041ΔsifA缺失株的抗生素耐藥性和藍白斑表型驗證 未脫除質粒的重組菌中含有lacZ基因和氨芐青霉素、鏈霉素抗性基因，在IPTG的誘導下它能夠利用X-gal產生藍色物質，表現為藍色菌落，也可以在含Amp、Sm的平板上正常生長；而缺失株 C50041ΔsifA完全脫除質粒后，失去pGMB152質粒所攜帶的lacZ基因和抗性基因，所以在含X-gal、IPTG的平板上表現為白色菌落，在含Amp、Sm的平板上不能正常生長。驗證結果如圖5，缺失株C50041 ΔsifA在含X-gal、IPTG的平板上表現為白色菌落，在含Amp、Sm的平板上不能生長，進一步說明自殺質粒已完全脫除。各菌株篩選特性見表3。

表3 沙門菌sifA基因敲除過程中各菌株篩選特性
Tab.3 Characteristics of bacterial strains during C50041ΔsifAconstruction

BacteriaCharacteristicsblue/whiteSmrAmprDAP dependenceC50041白無無無E.coli. Spy372(pGMB152-ΔsifA)藍有有無E.coli. χ7213 (pGMB152-ΔsifA)藍有有有C50041 (pGMB152-ΔsifA)藍有有無C50041 ΔsifA白無無無

2.2C50041ΔsifA的生物學特性

2.2.1C50041ΔsifA的生長速度 調節C50041、C50041ΔsifA、C50041ΔspiCΔsifA初始菌液濃度均為OD600=0.05，每隔1 h測一次OD600的值，繪制生長曲線如圖6。由此圖可以看出缺失株的生長曲線與野生株基本保持一致，說明sifA基因缺失沒有改變其生長速度。

圖6 C50041、C50041ΔsifA和C50041ΔsifAΔspiC的生長曲線Fig.6 Growth curves of C50041, C50041ΔsifA and C50041ΔsifAΔspiC

2.2.2C50041ΔsifA的生化特性 通過API 20E生化鑒定卡進行生化鑒定，鑒定了半乳糖苷酶(ONPE)(-)，精氨酸雙水解酶(ADH)(-)，尿素酶(URE)(-)，色氨酸脫氨酶(TDA)(-)，吲哚產生(IND)(-)，乙酰甲基甲醇(VP)(-)，明膠酶(GEL)(-)，肌醇發酵(INO)(-)，蔗糖發酵(SAC)(-)，苦杏仁苷發酵(AMY)(-)，賴氨酸脫羧酶試驗(LDC)(+)，鳥氨酸脫羧酶(ODC)(+)，檸檬酸利用(CIT)(+)，硫化氫產生(H2S)(+)，葡萄糖發酵(GLU)(+)，甘露醇發酵(MAN)(+)，山梨醇發酵(SOR)(+)，鼠李糖發酵(RHA)(+)，密二糖發酵(MEL)(+)，阿拉伯糖發酵(ARA)(+)等20個生化特性，C50041、C50041ΔsifA和C50041-ΔsifAΔspiC的這些生化特性完全一致，所以sifA基因的缺失未改變腸炎沙門菌的生化特性。(“+”代表陽性，“-”代表陰性)。

2.3C50041ΔsifA在巨噬細胞內增殖情況 分別取增殖的第0 h、8.5 h和24 h的時間點，將細胞裂解后進行胞內沙門菌計數，以0 h的細菌數量為初始值，比較胞內沙門菌的增長量。結果發現spiC的缺失提高腸炎沙門菌在巨噬細胞內的增殖能力(t=28.64,P<0.001)，sifA的缺失降低腸炎沙門菌在巨噬細胞內的胞內增殖能力(ΔsifAvsWT,t=3.077,P<0.05；ΔspiCvsΔspiCΔsifA(t=29.66,P<0.001)。結果如圖7。

圖7 腸炎沙門菌在巨噬細胞內的增殖情況Fig.7 The proliferation of intracellular SE strains

2.4腸炎沙門菌sifA基因的表達情況

2.4.1sifA基因在胞外沙門菌中表達 提取細菌mRNA并反轉錄進行熒光定量PCR，將野生株C50041的sifA基因的表達量設置為1，結果顯示sifA基因在spiC缺失株中表達量顯著上升(t=4.432,P<0.05)。結果如圖8。

圖8 LB培養腸炎沙門菌sifA基因相對表達量Fig.8 mRNA level of sifA gene of SE in the LB media by qPCR

2.4.2sifA基因在胞內沙門菌中表達 選取細菌在巨噬細胞內增殖1 h、8.5 h和19 h的時間點提取mRNA反轉錄，進行熒光定量PCR，結果同樣證明spiC基因缺失能上調sifA基因的表達，尤其是在沙門菌感染巨噬細胞8.5 h和19 h顯著上升(t=29.80,P<0.01)(t=6.007,P<0.01)。結果如圖9。

圖9 感染巨噬細胞中腸炎沙門菌sifA基因表達量Fig.9 mRNA level of sifA gene of SE in macrophage by qPCR

3 討 論

沙門菌是一種重要的人獸共患病病原菌，嚴重危害動物，威脅人的健康，是引起突發性食物中毒事件的重要病原菌之一，也是導致食源性疾病暴發最主要的原因[14]。2013年，27個歐盟(EU)成員國報告了82 694例沙門菌病例，每10萬人有20.4例感染者。其中兩種最常見的沙門菌血清型是腸炎沙門菌和鼠傷寒沙門菌，分別占所有報告與確診人類病例相關的血清型的39.5%和20.2%，腸炎沙門菌感染病例超越了鼠傷寒沙門菌[15]。在我國腸炎沙門菌也是引起沙門菌食物中毒最常見的血清型之一[16]。但目前國內外對于腸炎沙門菌致病機制的研究較少，其致病機制主要參照模式菌—鼠傷寒沙門菌。

在鼠傷寒沙門菌致病機制研究中，沙門菌進入宿主細胞內部，能有效躲避細胞的殺菌作用，然后在細胞內生存繁殖，這是導致其持續感染和免疫逃逸的一個重要原因。

沙門菌侵入宿主細胞后，能重塑宿主細胞內吞區室而形成一個特殊的結構—沙門菌囊泡，沙門菌在SCV內生存并復制，使沙門菌可以獲得宿主的膜和所需營養物質，還能保護病原菌免受細胞溶質殺菌應激反應的影響，確保其在細胞內正常生存和復制[9]。

沙門菌侵入細胞并在細胞內增殖是由多個沙門菌毒力島(SPI)介導完成的，其中SPI1和SPI2是最重要的，分別表達III型分泌系統T3SS1和T3SS2，它們作為分子注射器能將40多種效應蛋白注入宿主細胞胞質中[5]。當沙門菌接觸到細胞膜時，T3SS1分泌效應蛋白能作用于宿主細胞質膜而引起細胞骨架的重排，使細菌侵襲進入細胞[17]；沙門菌進入細胞后，通過修飾吞噬小體并改變吞噬小體的成熟過程形成SCV來保護自身不被降解。囊泡中沙門菌的T3SS2被激活分泌30多種作用于囊泡膜的效應蛋白，來促進SCV成熟、SIF形成和囊泡內沙門菌復制。細菌在細胞內的復制開始于感染細胞后的2～3 h，在這段時間里，沙門菌會不斷地調節SCV中的環境來使自己得以生存。

細胞中SCV的成熟過程同樣遵循內體從早期至晚期的成熟途徑。SCV的形成可以分為3個階段：感染細胞后10～60 min為早期SCV形成，T3SS1效應蛋白SopA、SopB/SigD、SipA/SspA、SopD和SopE參與；感染1～4 h時形成中期SCV，此過程不僅需要T3SS1效應蛋白SipA和SopB的參與，還需要T3SS2效應蛋白SifA、SseG和SseF的參與；感染4 h以后為SCV形成后期，T3SS2效應蛋白PipB2、SifA、SifB、SopD2、SseF、SseG、SseJ和SpvB參與此過程[18]。SifA蛋白主要參與SCV形成的中晚期。

在SCV形成的早期階段表達的T3SS2效應蛋白是SpiC，它是第一個被鑒定的T3SS2效應蛋白，它在沙門菌感染細胞后的0.5～1 h內表達，并可以抑制SCV與溶酶體的融合，它的缺失會明顯降低沙門菌的毒力[19]。SCV移動至核區時即SCV形成中期，T3SS2的效應蛋白SseG和SseF相互作用，誘導細胞內晚期內體再分配維持SCV的穩定性并與SifA蛋白協同作用，改變SCV的運輸路徑促使SCV進入成熟期[20]。在SCV成熟期，SifA蛋白通過抑制甘露醇-6-磷酸受體的招募來阻止溶酶體對沙門菌的清除[7]，sifA基因缺失可明顯減弱沙門菌的毒力[21]。SifA蛋白的形成依賴于sifA基因，它通過與宿主蛋白SKIP相互作用，下調SCV對微管驅動蛋白的招募，若sifA基因缺失則對SCV的形成造成影響，使沙門菌在細胞內不能正常復制，所以sifA基因是影響沙門菌在細胞內增殖的一個重要基因。

本研究利用同源重組的原理，通過一步法連接、顏色輔助篩選等改進方法，構建了腸炎沙門菌C50041株的sifA基因缺失株C50041ΔsifA、雙基因缺失株C50041ΔsifAΔspiC，該方法簡化了沙門菌基因敲除過程，加快了實驗進程。基因的無痕敲除則避免殘留堿基可能導致的不可預期的結果。各菌株的生長生化特性保持一致，表明sifA基因的缺失對其生物學特性并無影響。腸炎沙門菌在鼠源巨噬細胞內增殖的結果表明，與野生株相比，sifA基因缺失株巨噬細胞內沙門菌的數量顯著減少，并且能降低C50041ΔspiC在細胞內的增殖量，這說明sifA基因缺失能有效降低胞內沙門菌的增殖。通過熒光定量PCR結果顯示無論是在細胞內還是細胞外，spiC基因缺失后sifA基因的表達量上調，可能導致產生更多的SCV絲狀物，以吸收更多的營養[22]，該結果部分解釋了腸炎沙門菌spiC基因缺失株在巨噬細胞內超級復制增殖的現象。該研究為進一步研究腸炎沙門菌sifA基因功能及SCV的形成規律奠定基礎。

利益沖突：無