復黃片微生物限度檢查方法適用性探究

胡亞英馬 欣陳 睿陸金根邱明豐潘一濱?張 平?

（1.上海市松江食品藥品檢驗所，上海201600； 2.上海交通大學藥學院，上海200240； 3.上海中醫藥大學附屬龍華醫院，上海200032）

制劑質量標準檢查項目中的微生物限度檢查是保障藥品使用安全的重要指標之一［1-3］，中藥制劑微生物污染的限度是中藥制劑臨床應用是否安全有效的一項重要參數［4］。《中國藥典》 明確提出所有用于藥品質量控制的微生物檢驗方法，應先進行方法驗證，以避免方法不適而造成的漏檢、誤判［5］。2015 年版《中國藥典》（四部）［6］將微生物檢查計數法完善成為更加科學與國際接軌的檢查方法［7］。明確方法的選擇應考慮供試品的處方工藝、抑菌程度、用藥途徑等因素，擬定檢驗方法進行方法適用性試驗，確認檢驗方法可行、有效［8］。中成藥由于組成多樣，大多具有消炎抗菌作用［9-11］，文獻研究較多［1，12-13］，微生物檢測方法的適用性試驗就顯得更為重要［14-16］，且其結果直接影響微生物檢測數據的準確性［8］。

復黃片是上海中醫藥大學附屬龍華醫院和上海交通大學藥學院共同研發基礎上開發的中藥6 類新藥，由蒲黃炭、槐角、地榆炭及大黃組成，功能涼血止血、清熱通便，主治血熱妄行之便血［17-18］。根據其給藥途徑和處方工藝，按2015 年版《中國藥典》（四部）通則1107 規定，不含藥材原粉的中藥制劑微生物限度檢查項目為需氧菌總數、霉菌和酵母菌總數及控制菌大腸埃希菌的檢查。本實驗對復黃片進行循序漸進的適用性研究，并對3 批復黃片進行3 次獨立試驗，建立微生物限度檢查方法。

1 材料

C 級背景局部A 級的凈化工作臺、HTY-602A 集菌儀、FC752 型薄膜過濾器、HTY-761 勻漿儀（杭州泰林生物技術設備有限公司）；MLS-3781L-PC 高壓蒸汽滅菌鍋（日本Panasonic 公司）；PL402-L 電子天平（瑞士Mettler-Toledo公司）；KS12 生物安全柜（美國Thermo 公司）；BD400 微生物培養箱（德國Binder 公司）。對照品金黃色葡萄球菌［CMCC（B）26003］、銅綠假單胞菌［CMCC（B）10104］、枯草芽孢桿菌［CMCC（B）63501］、白色念珠菌［CMCC（F）98001］均來源于北京三藥科技開發公司；對照品黑曲霉［CMCC（F）98003］、大腸埃希菌［CMCC（B）44102］均來源于杭州微球生物技術有限公司。

pH 7.0 無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液、胰酪大豆胨瓊脂培養基、胰酪大豆胨液體培養基、沙氏葡萄糖瓊脂培養基、麥康凱液體培養基（北京三藥科技開發公司）；麥康凱瓊脂培養基（廣東環凱微生物科技有限公司）；氯化鈉（上海凌峰化學試劑有限公司）。

復黃片（批號1711001、1711002、1711003），由上海中醫藥大學附屬龍華醫院提供委托上海寶龍藥業有限公司配制。

2 方法與結果

2.1 計數方法適用性試驗 按2015 年版《中國藥典》 四部非無菌產品微生物限度檢查：金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌、枯草芽孢桿菌的培養時間不超過3 d，白色念珠菌、黑曲霉的培養時間不超過5 d，需氧菌總數平板培養溫度30～35 ℃，霉菌和酵母菌總數平板培養溫度20～25 ℃，菌落數接種量均不得大于100 cfu。按以下公式進行回收試驗比值計算。

2.1.1 菌液制備 根據菌種說明書，將金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、銅綠假單胞菌、白色念珠菌、黑曲霉用0.9%無菌氯化鈉溶液制成混懸液，使加入供試品溶液中的含菌落數≤100 cfu／mL。

2.1.2 供試品溶液制備 取供試品10 g，以pH 7.0 無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液作為稀釋液，稀釋至100 mL，經勻漿儀粉碎，制成1∶10 供試品溶液。

2.1.3 平皿傾注法（常規法）制備6 份1∶10 供試品溶液。5 份分別加入5 種試驗菌混懸液（銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、白色念珠菌、黑曲霉），使每1 mL 供試品溶液中含菌量不大于100 cfu，作為實驗組；另一份作為供試品對照組。以稀釋液替代供試品溶液，按照實驗組操作加入試驗菌液，作為菌液對照組。振蕩均勻后，分別移取1 mL 至2 個相應的無菌平皿（?90 mm）中，立即傾注相應的瓊脂培養基。

需氧菌總數中試驗菌銅綠假單胞菌與金黃色葡萄球菌比值不在0.5～2 規定范圍內，供試品有抑菌性，故進一步采用消除抑菌性的方法。霉菌和酵母菌總數中，試驗菌白色念珠菌、黑曲霉比值均在0.5～2 規定范圍內，霉菌和酵母菌總數方法可使用平皿傾注法（?90 mm，1 mL／皿），見表1。

表1 需氧菌、霉菌、酵母菌總數預試驗結果（平皿傾注法，1∶10 供試品溶液，1 mL／皿， n＝2）

2.1.4 平皿傾注法（稀釋法）只做需氧菌總數，按“2.1.3”項下方法制備實驗組、供試品對照組和菌液對照組。分別移取0.1 mL 至10 個相應的無菌平皿（?150 mm）中，立即傾注胰酪大豆胨瓊脂培養基。試驗菌金黃色葡萄球菌比值不在0.5～2 規定范圍內，供試品的抑菌性未完全消除，見表2。

表2 需氧菌總數預試驗結果（平皿傾注稀釋法，1∶10 供試品溶液，0.1 mL／皿， n＝10）

2.1.5 薄膜過濾法 只做需氧菌總數，按“2.1.2”項下方法制備供試品溶液。取1∶10 的供試品溶液1 mL，薄膜（直徑75 mm，孔徑0.45 μm）過濾，沖洗量100 mL，在最后1 次沖洗的同時加入含菌量不大于100 cfu 的試驗菌液混勻，濾過，作為實驗組；以稀釋液代替菌液，作為供試品對照組；以稀釋液代替供試品溶液，作為菌液對照組。轉移濾膜以菌面朝上貼于胰酪大豆胨瓊脂培養基平板上（?90 mm），每株試驗菌平行制備2 個平皿。試驗菌的回收率比值均在0.5～2 規定范圍內，薄膜過濾法（100 mL 沖洗量，1 mL／膜）用于需氧菌總數測定，見表3。

表3 需氧菌總數預試驗結果（薄膜過濾法，1∶10 供試品溶液，沖洗量100 mL， n＝2）

2.1.6 結果 取3 批復黃片（批號1711001、1711002、1711003），進行3 次獨立試驗。需氧菌總數按薄膜過濾法（1∶10 供試品溶液，1 mL／膜，沖洗量100 mL）進行5 種菌加菌回收試驗，澆注胰酪大豆胨瓊脂培養基（TSA）；霉菌及酵母菌總數按平皿傾注法（1∶ 10 供試品溶液，1 mL／皿，?90 mm）進行2 種菌加菌回收試驗，澆注沙氏葡萄糖瓊脂培養基（SDA）。回收率比值均在0.5～2 之間，表明方法可行，見表4。

表4 需氧菌、霉菌和酵母菌總數適用性試驗結果（n＝2）

2.2 控制菌檢查方法適用性試驗

2.2.1 菌液制備 根據菌種說明書，將大腸埃希菌用0.9%無菌氯化鈉溶液制成混懸液，使加入供試品液中的菌落數≤100 cfu。

2.2.2 供試品溶液制備 同“2.1.2”項，制成1∶10溶液。

2.2.3 適用性試驗設計 取1∶10 供試品溶液10 mL 及不大于100 cfu 試驗菌的菌懸液（大腸埃希菌），分別接種至100、200 mL 胰酪大豆胨液體培養基中，混勻，作為實驗組1～2；以稀釋液代替菌液，作為供試品對照組；以稀釋液代替供試品溶液，作為菌液對照組。胰酪大豆胨液體培養物30～35 ℃培養18 h 后，取1 mL 接種至100 mL 麥康凱液體培養基中，42～44 ℃培養24 h；取麥康凱液體培養物劃線接種于麥康凱瓊脂培養基平板上，30～35 ℃培養18 h。

2.2.4 適用性試驗結果 實驗組1 以100 mL 胰酪大豆胨液體培養基作為增菌液，麥康凱液體培養基和麥康凱瓊脂平板上都出現弱陽性；實驗組2 以200 mL 胰酪大豆胨液體培養基作為增菌液，陽性明顯，菌落生長較好，故采用培養基稀釋法，以200 mL 胰酪大豆胨液體培養基作為增菌液體積，結果見表5。

表5 大腸埃希菌控制菌檢查方法適用性試驗結果

2.2.5 結果 取3 批復黃片（批號1711001、1711002、1711003），進行3 次獨立試驗。以200 mL 胰酪大豆胨液體培養基作為增菌液，培養基稀釋法方法可行，見表6。

2.3 結論 按“2.1.6”“2.2.5”項下微生物限度檢驗方法，對3 批樣品進行微生物限度檢查，結果見表7。3 批樣品的需氧菌總數均＜10 cfu／g、霉菌和酵母菌總數均＜10 cfu／g，未檢出控制菌大腸埃希菌，符合2015 年版《中國藥典》 四部對不含藥材原粉的中藥固體口服制劑的限度要求。

表6 大腸埃希菌控制菌檢查方法適用性試驗結果

表7 3 批樣品微生物限度檢查結果

3 討論

2015 年版《中國藥典》 與2010 年版相比較，修訂內容比較多。首先，關于加菌實驗組的制備有修訂。后者加菌試驗是“取供試品溶液與試驗菌菌液，分別注入平皿，菌液在培養基搖碟時與供試品溶液相接觸”，而前者是“取已經制備好的供試品溶液，加入試驗菌，混勻，菌液在供試品溶液的制備過程即與供試品溶液直接混勻接觸，充分模擬樣品的污染狀態”。把試驗菌加入供試品溶液中一起混勻制備，更加真實地反映樣品的染菌狀態，也增加了試驗操作的難度［19］。其次，前者刪除離心沉淀法。《中國藥典分析檢測技術《中國藥典分析檢測技術指南》 》［20］中明確指明此法能將吸附有微生物的顆粒劑懸浮微生物沉積到離心管底部，影響微生物的檢出，所以各國藥典均未收載該方法。文獻［21］采用離心沉淀法建立復黃片微生物限度檢查方法，2015 年版《中國藥典》（四部）頒布以后，該方法已不適用。

本品由蒲黃炭、槐角、地榆炭及大黃4 味藥組成，其中大黃具有較強的抑菌活性［22-23］。蘇潤萍［24］關于驗證方法的選擇中認為，常規法＞稀釋法＞中和法＞薄膜過濾法＞幾種方法聯合使用。本研究在選擇方法時從常規法到稀釋法開始摸索，測定需氧菌總數時采用1∶10 稀釋的供試品溶液平皿傾注法，不管是用增加稀釋液或培養基體積，都無法消除供試品的抑菌性。中成藥的抑菌性無法選擇合適的中和劑消除抑菌性，薄膜過濾法能直接徹底消除抑菌作用、計數結果準確度高，但是不適用于非完全溶解的供試品。對于大多數的中成藥固體制劑而言，處方中不溶性成分較多，不能使用離心沉淀來減少藥渣的堵膜影響，薄膜過濾法的使用難以確保方法的可操作性［19］。本實驗摸索了直徑50、75 mm 濾膜的操作性，直徑75 mm 濾膜很好的解決了樣品固體顆粒堵膜的障礙，過濾快；摸索了100、200 mL沖洗量的試驗菌回收率比值結果，均在0.5～2.0 之間，故選用沖洗量100 mL，操作快速高效。

采用標準定量菌株，菌落計數準確方便可控，減少了藥典規定中菌液制備的繁瑣過程。pH 7.2 磷酸鹽緩沖液作為稀釋劑［25-27］，其具有穩定微生物細胞滲透壓，緩沖供試品溶液pH，提供適于微生物生長的環境［28］。培養時間按藥典規定最短時間計數，應逐天觀察，黑曲霉生長較快，培養時間不超過5 d，一般在第2～3 天時就可以計數，培養至第4 天后蔓延成片不易計數；白色念珠菌生長較緩慢，不管在TSA 還是SDA 平板培養基上培養時間不超過5 d 即可計數。另外，以稀釋液作為空白，計數與控制菌檢查均應顯陰性，否則實驗失敗，需重新實驗。