普境安說明:“普境安”主要成分為磷酸鹽化合物(85%)、鈣、鐵、硫酸鹽(2.6%)、活性氯、Perica 油(0.05%)和鋁硅酸鹽(10.1%)。“普境安”具有很強地降低病毒滴度,還可以降低大量細菌作用。減少微生物吸附造成的對表面微生物污染的作用,吸附地板上的水和尿素,減少氮排放,稍微的防臭作用使“普境安”適合用作很好的衛生材料。
評價目的:偽狂犬病病毒和禽痘病毒與非洲豬瘟病毒的分子結構相似,都是雙股DNA 病毒,并且同是高接觸性傳染病,評價“普境安”體外降低偽狂犬病病毒、禽痘病毒活性效果的同時也為“普境安”降低非洲豬瘟病毒的活性提供有力依據。
評價方法:將“普境安”消毒劑設置梯度使用劑量(1/2 推薦劑量、推薦劑量、2×推薦劑量)在不同溫度(4 ℃、16 ℃、37 ℃)、不同時間(5 min、15 min、30 min、45 min)、不同環境和偽狂犬病病毒(PRV)、禽痘病毒(FPV)分別作用后測病毒TCID50,抽提核酸后用熒光定量PCR 方法檢測病毒核酸含量,觀察“普境安”對偽狂犬病病毒和禽痘病毒的吸附效果。模擬消毒劑使用的現場環境(土壤、水泥地、糞便)和偽狂犬病病毒、禽痘病毒分別混合后再使用“普境安”干粉消毒劑作用,分別設置3 個變量(劑量、溫度、時間)檢測不同情況下“普境安”干粉消毒劑吸附病毒、降低病毒活性的作用。
本試驗于2019年6 月在四川農業大學動物醫學院動物生物技術中心完成
豬偽狂犬病病毒(PRV-XJ),保存于四川農業大學動物生物技術中心;禽痘病毒毒株,保存于四川農業大學動物生物技術中心。
胎牛血清、細胞培養液(DMEM 培養液)、胰蛋白酶、PBS緩沖液、PK-15 細胞,雞胚成纖維細胞,熒光PCR 引物,均由實驗室提供;“普境安”消毒劑由丹麥(Storm?llen 公司)、成都杰鑫瑪生物科技有限公司生產提供。
2.1.1 病毒液制備
將偽狂犬病病毒液和禽痘病毒液按常規操作分別接種于生長良好的PK15 細胞和雞胚成纖維細胞,37 ℃、5% CO2條件下培養,當病毒發生70%~80%感染時,將病毒液反復凍融 2 ~3 次,收集病毒液離心取上清,分裝于2 mL EP 管中。
2.1.2 測定偽狂犬病病毒和禽痘病毒的 TCID50
取上述制備好的病毒懸液用無血清的DMEM 細胞培養液進行10系列的稀釋(10-1~10-10),分別接種于長滿單層PK-15 細胞和雞胚成纖維細胞的96 孔培養板中,每一稀釋度接種一縱排共8 孔,每孔接種100 μL 的病毒懸液;用含2% PBS的DMEM 細胞培養液作為對照,置37 ℃、5% CO2培養箱中培養,觀察細胞有無細胞病變(CPE)變化并記錄結果。按Reed-Muench 法計算病毒的TCID50。
2.1.3 偽狂犬病病毒和禽痘病毒滴度測定結果
病毒滅活滴度用半數細胞感染劑量(TCID50)表示。計算公式如下:
TCID50對數值=病變率高于 50%組稀釋度的對數值+距離比例(“病變率高于 50%組”是指病變率超過 50%的最低組,下面均簡稱“高于 50%組”;“病變率低于 50%組”是指病變率低于 50%的最高組,下面均簡稱“低于50%組”)。

表1 偽狂犬病毒滴度測定結果

表 2 禽痘病毒滴度測定結果
根據表1 和表2 中結果,按Reed-Muend 法計算出偽狂犬病病毒的TCID50值為10-8.21/0.1 mL ,禽痘病毒的TCID50值為10-6.73/0.025 mL。
取288 個無菌培養皿,一半培養皿(108 個試驗組+36 個對照組)涂1 mL 禽痘病毒液,另一半培養皿(108 個試驗組+36 個對照組)涂1 mL 偽狂犬病病毒液后放于 37℃無菌恒溫箱干燥。向已干燥的病毒培養皿中以 25 g/m2,50 g/m2,100g/m2劑量加入粉劑“普境安”,在 4℃、16℃、37℃條件下使消毒劑單獨與等份的病毒保持接觸5 min,15 min,30 min,45 min(試驗組每組設置3 組重復,最后取平均值,不同溫度下不同時間設置空白對照組無消毒劑作用也做3 組重復)。后將“普境安”干粉移除,用1 mL DMEM 細胞培養液重懸收集培養皿中的病毒,做梯度稀釋后測定試驗組與對照組的TCID50對比病毒滴度的差異。
試驗結果表明(見表3),“普境安”粉狀消毒劑受溫度的影響較小,在不同的濃度和環境溫度下對病毒均有很好的殺滅作用,在接觸15 min 后滴度減少平均達到4 以上,在作用30 min 后滴度減少平均達到5 以上,但在推薦劑量時殺滅效果最佳。
取288 個無菌培養皿,一半培養皿(108 個試驗組+36 個對照組)涂1 mL 禽痘病毒液,另一半培養皿(108 個試驗組+36 個對照組)涂1 mL 偽狂犬病病毒液后放于37 ℃無菌恒溫箱干燥。向已干燥的病毒培養皿中以 25 g/m2,50 g/m2,100g/m2劑量加入粉劑“普境安”,在4 ℃、16 ℃、37 ℃條件下使消毒劑單獨與等份的病毒保 持 接 觸 5 min,15 min,30 min,45 min(試驗組每組設置3 組重復,最后取平均值,不同溫度下不同時間設置空白對照組無消毒劑作用也做3 組重復)。后將“普境安”干粉移除,用1 mL DMEM 細胞培養液重新懸浮收集培養皿中的干燥病毒,抽提病毒DNA,檢測DNA 濃度。梯度稀釋的標準品(即病毒原液)及待測樣品進行實時定量PCR檢測,用標準品制作標準曲線,檢測對照組和試驗組病毒核酸含量,對比差異。
試驗結果表明(見表4),“普境安”粉狀消毒劑可在不同溫度和濃度下均可有效吸附環境中的病毒,在移除普境安粉末的同時能移除大量病毒,其受溫度影響較小,推薦劑量在接觸15min 以上能大幅降低病毒量,達到較好的清除效果。
試驗設置 A、B 組,每組3個重復,A 為偽狂犬病病毒組:5×5×5 cm3的土壤中加 2 mL 偽狂犬病病毒原液;B 為禽痘病毒組:5×5×5 cm3的土壤中加 2 mL 禽痘病毒原液,同樣在不同溫度不同時間下設置空白對照組無消毒劑作用也做3 組重復。每組分別設置4 ℃、16 ℃、37 ℃3 個溫度梯度,每個溫度下以 25 g/m2,50 g/m2,100 g/m2的量加入粉劑“普境安”,作用 5 min、15 min、30 min、45 min 后用生理鹽水將土壤溶解,4 000 r/min 離心5 min 取上清,然后將上清做梯度稀釋檢測病毒滴度,對比消毒劑處理前后病毒滴度的差異。

表 3 “普境安”對禽痘病毒和偽狂犬病毒作用后TCID50 結果

表 4 “普境安”對禽痘病毒和偽狂犬病病毒作用后熒光定量試驗結果
試驗結果表明(見表5),在土壤環境中,“普境安”粉狀消毒劑在不同溫度差異較小,在不同的濃度和環境溫度下對病毒均有很好的殺滅作用,在接觸5 min 后大幅度降低病毒滴度,在接觸15 min 后病毒滴度平均降低4 以上。
試驗設置 A、B 組,每組3個重復,A 為偽狂犬病病毒組:5×5×5 cm3糞 便 加 2 mL PRV病毒原液;B 為禽痘病毒組:5×5×5 cm3糞 便 加2 mL FPV 病毒原液,同樣在不同溫度不同時間下設置空白對照組無消毒劑作用也做3 組重復。每組分別設置 4 ℃、16 ℃、37 ℃3 個溫度梯度,每個溫度下以25 g/m2,50 g/m2,100 g/m2的量加入粉劑“普境安”,作用5 min、15 min、30 min、45 min 后 用 生 理鹽水將土壤溶解,4 000 r/min 離心5 min 取上清,然后將上清做梯度稀釋檢測病毒滴度,對比消毒劑處理前后病毒滴度的差異。
試驗結果表明(見表6),在糞便環境中,“普境安”粉狀消毒劑在不同溫度差異較小,在不同的濃度和環境溫度下對病毒均有很好的殺滅作用,在接觸15 min 后病毒滴度平均降低4 以上。

表 5 土壤環境試驗 TCID50 結果

表 6 糞便環境試驗 TCID50 結果
試驗設置A、B 組,每組3個重復,A 為偽狂犬病病毒組:100 cm2的水泥地面上加 2 mL PRV病毒原液;B 為禽痘病毒組:100 cm2的水泥地面加2 mL FPV 病毒原液,同樣在不同溫度不同時間下設置空白對照組無消毒劑作用也做3 組重復。待病毒液干后,每組分別設置4 ℃、16 ℃、37 ℃3 個溫度梯度,每個溫度下以25 g/m2,50 g/m2,100 g/m2的量加入粉劑“普境安”,作用5 min、15 min、30min、45 min 后移除“普境安”,用生理鹽水沖洗地面后將其收集。然后做梯度稀釋檢測病毒滴度,對比消毒劑處理前后病毒滴度的差異。
試驗結果表明(見表7),在水泥地面環境中,“普境安”粉狀消毒劑在不同溫度差異較小,在不同的濃度和環境溫度下對病毒均有很好的殺滅作用,在接觸15min 后病毒滴度平均降低4 以上。

表 7水泥地面環境下試驗 TCID50 結果
結果顯示“普境安”消毒劑對偽狂犬病病毒和禽痘病毒有很好的滅活作用,不同溫度對其滅活作用影響不大,建議使用推薦劑量。模擬消毒劑使用的現場環境試驗中“普境安”對兩種病毒都有很好的滅活效果,可以為其使用提供參考依據。
綜合評定認為“普境安”消毒劑對環境中病毒有很好的滅活作用,可以用于生產消毒。