張微 ,岳麗玲 ,張延勇 ,韓翠翠 ,徐天嬌 ,朱文斌 ,劉立琨
1.齊齊哈爾醫學院醫藥科學研究院,黑龍江齊齊哈爾 161006;2.齊齊哈爾醫學院第三附屬醫院,黑龍江齊齊哈爾161006;3.齊齊哈爾醫學院藥學院,黑龍江齊齊哈爾 161006
原鈣黏蛋白 10(protocadherin 10,PCDH10)是原鈣黏基因家族的新成員,在細胞間粘附、分化、信號傳遞以及細胞周期信號調節等方面發揮著重要作用。近年研究揭示 PCDH10 在胃癌[1]、肺癌[2]、乳腺癌[3]、胰腺癌[4]、結腸直腸癌[5]等腫瘤組織中表達下調或缺失,而DNA啟動子區的甲基化修飾對其表達產生抑制作用。體外過表達PCDH10基因或者DNA去甲基化處理均能顯著抑制腫瘤細胞增殖、遷移和侵襲,誘導腫瘤細胞凋亡,這為腫瘤治療提供新的思路。該研究于2018年6—11月間采用重組慢病毒技術成功構建PCDH10基因過表達載體,并實現了其在人乳腺癌MDA-MB-231細胞中的表達,為深入研究PCDH10在乳腺癌發生發展中的功能提供實驗依據。
人乳腺癌MDA-MB-231細胞、人胚腎HEK293T細胞購自中科院上海細胞庫;L-15培養基、RPMI1640培養基和胎牛血清購自Hyclone公司;pLVEF1α-GFP-Puro載體系統和RNAi-Mate轉染試劑為蘇州吉瑪基因股份有限公司產品;TRIzol試劑購自Invitrogen公司;ExTaq DNA聚合酶、T4 DNA連接酶、限制性內切酶、膠回收試劑盒購自Takara公司;Transcript One-step gDNA Removal and Sythesis SuperMix購自全式金公司;質粒大提試劑盒購自QIAGEN公司;BCA蛋白定量試劑盒、ECL發光試劑盒均購自北京康為世紀公司;兔抗人PCDH10多克隆抗體購自Proteintech公司;嘌呤霉素購自Sigma公司。
1.2.1 PCDH10慢病毒表達載體構建 從GeneBank中獲得人PCDH10的mRNA序列(NM_020815.2),借助Primer 5.0軟件設計基因特異性引物,上游和下游分別引入Not I和BamH I酶切位點。PCDH10上游引物:5'-GCGGCCGCATGATTGTGCTATTATGTTTGC-3',下游引物:5'-GGATCCCTAGGCTTTCT GATGGA-3'。測序鑒定PCR產物。用Not I/BamH I酶切得到目的片段,膠回收后與線性化的pLV-EF1α-GFP-Puro載體連接,構建得到pLV-PCDH10表達載體。
1.2.2 慢病毒的包裝及滴度測定 取對數生長期的HEK293T細胞按 1×106/孔接種于六孔板中,37℃、5%CO2條件下培養,待細胞匯合度達到80%時,將pLVPCDH10 載體與包裝質粒 pGAG/Pol、pRev、pSV-G 用RNAi-Mate試劑共轉染HEK293T細胞,6 h后吸棄轉染液,更換完全培養基繼續培養72 h。收集上清液,4℃4 000 g離心10 min后過濾收集上清,-80℃保存備用。
將HEK293T細胞以8×103/孔的密度接種于 96孔板,每孔 100 μL,培養 24 h。 將 10 μL 病毒液加入90 μL的無血清培養基中,梯度稀釋測定慢病毒滴度。吸棄96孔板中的培養液,每孔加入100 μL梯度稀釋的病毒液,并設立空白對照組,24 h后每孔加入100 μL完全培養基,繼續培養72 h。熒光倒置顯微鏡下計數表達綠色熒光的細胞數,并結合稀釋倍數計算病毒滴度。
1.2.3 穩定過表達PCDH10細胞系的建立 將人乳腺癌 MDA-MB-231細胞以 5×104/孔的密度接種于24孔板培養,細胞融合度達到80%以上時進行病毒感染。以預實驗得到的重組慢病毒的最佳MOL值100 侵染 MDA-MB-231,并加入聚凝胺(polybrene,終濃度為5 μg/mL)培養12 h后更換完全培養基,繼續培養 48 h。繼續用嘌呤霉素(0.5 μg/mL)篩選 1周,獲得穩定轉染pLV-PCDH10的MDA-MB-231細胞株。
1.2.4 RT-PCR方法檢測PCDH10基因表達 收集重組慢病毒感染組和對照組細胞,TRIzol提取總RNA。取1 μg總RNA進行逆轉錄,PCDH10上游引物:5'-ACTGCTATCAGGTATGCCTG-3', 下游引物 :5'-GTCTGTCAACTA GATAGCTG-3',擴增片段為 219 bp;β-actin作為內參, 上游引物:5'-GTGGACATC CGCAAAGAC-3', 下游引物 :5'-GAAAGGGTGTAACGCAACT-3',擴增片段為303 bp。PCR反應條件:94℃ 30 s,56℃ 30 s,72℃ 1 min 循環 35 次。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產物。
1.2.5 Westernblot檢測PCDH10蛋白表達 收集重組慢病毒感染組和對照組細胞,提取總蛋白,BCA蛋白定量檢測試劑盒測定蛋白濃度。每組取20 μg蛋白進行SDS-PAGE電泳,轉膜,5%脫脂奶粉37℃封閉2 h。一抗4℃孵育過夜。TBST洗膜3次,每次10 min后,二抗室溫孵育2 h,ECL顯影,凝膠成像分析系統成像。以GAPDH作為內參,Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。
實驗均重復3次,數據用SPSS 19.0統計學軟件進行統計分析,計量資料(±s)表示,使用t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
選取重組載體的陽性克隆進行測序,測序結果與GeneBank中PCDH10序列比對驗證,表明插入片段正確無誤(圖1),說明pLV-PCDH10表達載體構建成功。

圖1 重組慢病毒載體pLV-PCDH10的測序結果
將慢病毒質粒 pLV-EF1α-GFP-Puro和 pLVPCDH10 與包裝質粒 GAG/Pol、pRev、pSV-G 共轉染HEK293T細胞72 h后,熒光顯微鏡下可見明顯的熒光 (圖2),提示轉染成功。計算病毒滴度分別為2×108TU/mL 和 5×108TU/mL。

圖2 重組慢病毒載體轉染HEK293T細胞后觀察綠色熒光蛋白表達(×40)
以轉染空載體的MDA-MB-231為對照組,轉染pLV-PCDH10載體的MDA-MB-231為實驗組。RTPCR結果顯示:與對照組相比,實驗組中PCDH10的mRNA表達水平明顯上調(圖3A)。Western blot蛋白條帶及灰度值分析顯示,實驗組中PCDH10蛋白表達(0.69±0.01)高于對照組(0.12±0.01),差異有統計學意義(P<0.01)(圖 3B)。進一步證實 PCDH10重組慢病毒載體構建成功,能在MDA-MB-231細胞中穩定表達。

圖3 對照組與實驗組中PCDH10蛋白的表達水平
PCDH10基因是近年來新發現的抑癌基因,已有研究證實,其在多種人類惡性腫瘤中低表達,參與腫瘤的發生發展。有研究發現胃癌病灶內PCDH10的mRNA表達量顯著低于癌旁病灶,低表達的PCDH10能夠影響蛋白酶表達相關基因 Vav2、Vav3、CatB、MMP9、TIMP1、TIMP2以及上皮間質轉化基因ZEB1、Twist1、Vimentin、RASAL2、E-cadherin 的表達, 進而促進胃癌細胞浸潤性生長及上皮間質轉化[1]。PCDH10在非小細胞肺癌組織中低表達,過表達PCDH10基因可通過誘導細胞發生G1期阻滯及促進凋亡而抑制A549細胞的增殖能力;通過下調Slug基因的mRNA和蛋白表達抑制細胞的遷移和侵襲[2]。張微等人[3]發現PCDH10在乳腺癌MDA-MB-231細胞中表達缺失,5-Aza-CdR去甲基化處理能夠誘導PCDH10重新表達,并通過阻滯NF-κB p65的活化,下調MMP2和MMP9表達而抑制MDA-MB-231細胞的侵襲遷移能力。這些結果均提示,PCDH10低表達與腫瘤的發生發展密切相關。但其如何參與腫瘤的發生發展進程仍需進一步研究。
慢病毒載體是以人類免疫缺陷I型病毒(human immunodeficienct virus 1,HIV-1)為基礎改建而來的基因載體[6],對分裂和非分裂細胞均具有感染力,可以將目的基因有效地整合到宿主細胞的基因組上,實現目的基因長期穩定的表達,轉染效率高[7],且可攜帶9 000 bp的目的基因,不產生化學轉染等引起的細胞損傷和免疫反應,具有較好的生物安全性[8]。目前,通過慢病毒載體介導基因過表達,獲得穩定表達目的基因的細胞株,進而研究基因功能的方法已被廣泛應用[9]。閆丹等[10]通過構建IL-35的慢病毒表達載體,并將其轉染A549細胞,獲得了過表達IL-35的A549穩定細胞株。該研究利用PCR法擴增PCDH10全長片段,通過連接Not I和BamH I雙酶切的PCDH10基因和載體pLV-EF1α-GFP-Puro,繼而經包裝病毒,獲得高滴度(5×108TU/mL)的重組慢病毒質粒 pLV-PCDH10。用病毒液感染MDA-MB-231細胞,經嘌呤霉素篩選獲得穩定過表達PCDH10基因的MDA-MB-231細胞株。RT-PCR和Western blot結果顯示PCDH10的mRNA表達和蛋白表達均較對照組高表達。
以上結果顯示該研究成功獲得了穩定過表達PCDH10基因的MDA-MB-231細胞株,為深入探索PCDH10基因在乳腺癌發生發展以及臨床治療中的功能提供了實驗支持。