不同地域來源桃根癌病病原菌及其致病性鑒定

郝峰鴿，李桂榮，王保全，蔡祖國，尤 楊，牛生洋

（河南科技學院園藝園林學院，河南 新鄉 453003）

【研究意義】植物根癌病又稱冠癭病，是由根癌土壤桿菌屬（Agrobacterium spp.）中的致病菌所引起的一種世界性病害。病原菌侵染后，感病植株會在根、莖甚至枝條上形成大小不一的癭瘤，不但影響植株對水分和礦質營養的吸收和運輸，同時還使其他病原微生物更易侵染，導致樹勢衰弱，易感病，果實品質及產量下降，甚至造成植株死亡?！厩叭搜芯窟M展】早期人們根據寄主范圍和病害癥狀將土壤桿菌屬分為根癌土壤桿菌、發根土壤桿菌、懸鉤子土壤桿菌及放射形土壤桿菌，認為除放射形土壤桿菌無致病性外其余3種菌都能引起發病。進一步研究認為，土壤桿菌的病害癥狀是由質粒類型決定的，而非細菌的種類，因而這種以可轉移的質粒引發的致病性作為分類依據并不科學。后來，人們又以生理生化特征和致病性特征，將土壤桿菌屬直接劃分為生物Ⅰ型、Ⅱ型、Ⅲ型3個生物型［1-2］。

帶有染色體外的、環狀閉合的Ti（tumor-inducing plasmid）質粒是致病的土壤桿菌的共同特征，其上有T-DNA (transfer-DNA)區、Vir區及冠癭堿分解代謝區與致病過程有關。根癌土壤桿菌可侵染雙子葉植物、單子葉植物、裸子植物等多種植物，包括重要的經濟作物，尤其以果樹中的核果類、漿果類、仁果類和堅果類易感?。?-4］。桃根癌病是由根癌土壤桿菌(Agrobacterium tumefaciens)引起的土壤病害，在我國桃栽培區的發病率最高達到90%［3］?！颈狙芯壳腥朦c】根癌病菌是土壤習居菌，具有潛伏侵染和系統侵染性，再加之苗木生產和調運中缺乏檢疫措施，更加劇了該病害的傳播和蔓延［3,5］。

前人對桃根癌病病原菌的研究認為，不同根癌病病原菌對同一寄主的致病性是不同的［6-7］?！緮M解決的關鍵問題】本試驗對從不同地區桃根瘤組織中分離，經初步鑒定的根癌病病原菌進行進一步的鑒定，了解病原菌的類型及其致病力，為今后桃根癌病的抗病育種工作及生物防治打下基礎。

1 材料與方法

1.1 桃根癌病病原菌及其來源

從我國不同桃產區包括北京平谷、河北昌黎、河北石家莊、山東泰安、江蘇南京、甘肅蘭州等采集桃樹根癌病組織，分離根癌病病原菌，并經初步形態學和致病性分子檢測。

1.2 植物材料

指示植物：向日葵（市售）種子浸泡10 h后，置26 ℃培養箱中保濕催芽，萌發后播種于腐葉土∶蛭石∶園土=1∶1∶2的混合基質中培養。

中桃抗砧1號、報春、紅根甘肅桃×貝蕾F1、毛桃等4個品種/單株6～10年生植株。中桃抗砧1號自花授粉實生苗（3年生）。

1.3 病原菌的分離、純化與保存

將完整癭瘤組織沖洗干凈，去除老化表皮，從不同方位選取幼嫩白色的瘤組織2～3塊（約2.0 g），75%酒精處理1 min，無菌水沖洗3次；切成2 mm×2 mm的小塊，加入1～2 mL蒸餾水，用滅菌玻棒搗碎，在2 mL無菌離心管中浸泡30 min，取100 μL浸泡液涂布于D1M培養基上，28 ℃培養2～4 d。挑取具有根癌土壤桿菌特征的單菌落，劃線純化培養，然后挑取單菌落于液體YEB培養基中，28 ℃、200 r/min 搖床培養約 16 h［8］。

YEB培養基培養的菌液直接放4℃可保存2個月。將菌液與30%的滅菌甘油1∶1混勻，液氮速凍后于-80℃長期保存。

1.4 桃根癌病病原菌鑒定

1.4.1 病原菌致病性的分子鑒定 參照Haas等［9］的方法，對根癌土壤桿菌與T-DNA轉移和癭瘤形成相關的virD2和ipt基因分別進行檢測。virD2基因的引物virD2A：5′-ATGCCCGATCGAGCTCAAGT-3′；virD2C：5′-TCGTCTGGCTGACTTTCGTCATAA-3′，目的條帶203 bp。ipt基因引物CYT：5′-GATCG(G/C)GTCCAATG(C/T)TGT-3′；CYT：5′-GATATCCATC GATC(T/C)CTT-3′，目的片段427 bp。

PCR反應體系：50 ng模板DNA（新鮮菌液），1×PCR buffer，0.2 mmol/L dNTPs，0.5 U Ex Taq DNA酶，上下游引物各0.5 μmol/L，以重蒸水補足20 μL。擴增條件：95 ℃預變性4 min；95 ℃變性40 s、55℃退火40 s、72 ℃延伸40 s，35個循環；72 ℃延伸10 min。PCR產物經EB染色，用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.4.2 病原菌致病性的生物學鑒定 （1）3-酮苷試驗：將分離純化后的菌株接種于YEB液體培養基中，28 ℃、200 r/min搖床培養約16 h。培養好的菌液在5 000 r/min條件下離心10 min，用滅菌蒸餾水重懸，并調整濃度為1×109CFU/mL。在含有1%乳糖、0.1%酵母浸膏和2%瓊脂的培養基上，接種待測菌，28 ℃培養1～2 d。經培養后在平板上倒一薄層Benedict試劑，靜置于室溫下。如果產生3-酮基乳糖，在菌落的周圍出現Cu2O的黃圈，約1 h后黃圈達最大，出現該現象則為生物Ⅰ型。

（2）向日葵接種鑒定：待苗高至5～10 cm時，選取生長健壯、整齊一致的向日葵苗接種。在苗子下胚軸接近子葉的部位，用解剖刀劃1 cm長的傷口，在傷口處涂抹一滴菌液（約20 μL），然后用封口膜包裹保濕。每個菌株接種10棵苗。同時接種無菌水作對照。接種后的幼苗放置于28 ℃溫室培養。從接種后5 d開始，每天定時觀察發病情況。

（3）桃枝條接種鑒定：接種參照Bliss等［10］的方法。在中桃抗砧1號、報春、紅根甘肅桃×貝蕾F1等3個品種/單株上，選生長較直立，健壯的新梢，從距枝條頂端10 cm的位置，用解剖刀劃1 cm長的傷口，深及木質部，在傷口處涂抹一滴菌液（約20 μL），然后用封口膜包裹保濕，每株菌每個植株上接種3個枝條，每個枝條接種5個位點，位點間間隔約5 cm，同時接種無菌水作對照。單株區組試驗設計，設置4個區組。接種后40 d調查，以瘤直徑衡量病原菌的致病力。

1.4.3 病原菌16S rDNA序列測定 對經致病性表現最強的3個菌株進一步進行16S rDNA序列測定，以確保試驗材料的準確性。引物采用細菌16S rDNA通用引物27f：5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′；1492r：5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′［11］。

細菌基因組DNA提取：取菌液1.5 mL，12 000 r/min離心3 min，棄上清液，加入0.5 mL蒸餾水，混勻，煮沸10 min，然后用CTAB法提取DNA。

PCR反應體系：80 ng模板DNA，1×PCR buffer，0.2 mmol/L dNTPs，1.0 U Ex Taq DNA 酶，上下游引物各0.5 μmol/L，以無菌重蒸水補足20 μL。擴增條件：95℃預變性4 min；95 ℃變性40 s、54 ℃退火40 s、72℃延伸40 s，4個循環；72℃延伸10 min。PCR產物經EB染色，用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

將1 500 bp的目的片段用PCR產物純化回收試劑盒（Biomed）回收目的片斷，連接至pMD 19-T載體（TaKaRa），并轉化導入DH5α感受態細胞中，在含100 μg/mL氨芐青霉素的LB平板上篩選。陽性克隆送往上海生工測序，測序結果與GenBank中序列進行同源性比對分析。

2 結果與分析

2.1 病原菌致病性分子檢測

virD2基因參與病原菌侵染寄主的過程，ipt基因是造成寄主植物病癥的關鍵基因之一［9,12-13］，而virD2與ipt基因結合能從不同角度反映病原菌的致病性。兩對特異引物在21株病原菌中均出現203 bp和427 bp的目的片段（圖1）。說明從不同桃產區分離的根癌農桿菌菌株基本都有致病性，這也是桃樹會有大面積發病的原因。

2.2 病原菌的生理生化鑒定

盡管所分離的菌株都有致病性，但分清楚致病菌的生物型，對深入研究其發病機制有重要作用。對21個經初步鑒定具有致病性的菌株進行生理生化鑒定，結果表明，致病菌中主要是生物Ⅱ型，有18株，其余3株菌為生物Ⅰ型（圖2）。

2.3 病原菌對指示植物向日葵幼苗的致病性

指示植物接種與分子鑒定相比，需時較長，但能更客觀地反映病原菌的致病性。為了驗證不同菌株的致病能力，將鑒定為生物Ⅱ型的菌株接種在指示植物向日葵上，結果（圖3）表明，21株病原菌均能使向日葵幼苗長瘤，但瘤的大小有差異，即不同菌株對向日葵幼苗的致病能力存在差異。

圖2 3-酮苷反應鑒定12株病原菌的生物型Fig.2 Biotypes of 12 strains from peach crown galls identified by 3-Ketolactose test

圖3 不同菌株對向日葵幼苗的致病性Fig.3 Virulence of several isolated strains on sunflower seedlings

2.4 病原菌對桃樹枝條的致病性

由于指示植物和目標植物在抗病性及對病原菌的應答機制有所不同，在指示植物上有強致病力的菌株還需要在桃樹進行最終驗證。選擇對向日葵幼苗致病力強的10株菌，接種在不同種桃樹枝條上，比較其對桃樹的致病力。結果（圖4）表明，不同植株形成的瘤大小有差異，即不同菌株之間的致病力強弱存在差異，其中菌株AT4-3（生物Ⅱ型）的致病力最強。

圖4 AT4-3菌株在桃樹及近緣種上的致病情況Fig.4 Pathogenic status of strain AT4-3 on peach trees and other relative species

2.5 病原菌16S rDNA測序鑒定

將包括AT4-3在內的3個菌株的16S rDNA測序結果在GenBank中進行BLAST同源性比對，與根癌土壤桿菌相似性均在99%以上（表1），由此可確定這3個菌株均為根癌土壤桿菌。

表1 AT4-3菌株16S rDNA測序結果同源性比對Table 1 Homologous alignment of strain AT4-3 16S rDNA sequencing results

3 討論

根癌土壤桿菌中的生物Ⅰ型和生物Ⅱ型是桃及其他核果類的致病菌［2,7-8］。LI等［14］從采自我國5個地區的桃根瘤組織分離的19株根癌土壤桿菌中，鑒定出生物Ⅱ型14株，說明生物Ⅱ型為優勢菌群。在同一條件下的桃抗根癌病評價中，生物Ⅱ型致病力強于生物Ⅰ型［15-17］。本試驗篩選出的強致病力菌為生物Ⅱ型，這與前人的研究結果一致。

在根癌土壤桿菌致病性鑒定時，分子檢測因其快速、簡便，得到廣泛的研究及應用［9,14,18-19］。分子檢測方法大多根據根癌土壤桿菌Ti質粒的Vir區和T-DNA區保守序列設計特異引物，其中Vir區與病原菌附著、T-DNA加工和轉移相關，T-DNA區為致瘤區，二者在決定病原菌的致病性時缺一不可。因此，在致病性鑒定時，至少需要Vir區與T-DNA區各一對引物相結合才能確定病原菌的致病性。即使這樣，分子檢測方法還是有其局限性，比如Vir區，存在大約35個vir基因［12-13］，而一對引物也只能反映出某一個vir基因的存在與否（根據基因區間序列設計的引物除外），因此可能出現假陽性結果。另外，在經向日葵接種鑒定表現為致病性的菌株，在桃上卻仍沒有表現出病狀。這可能是因為指示植物不是該病原菌的自然寄主，不能完全可靠地反映該病原菌對桃的致病能力［20］。

4 結論

本研究對來源于其他實驗室（中國農業科學院植物保護研究所）的21株病原菌進行鑒定，為后繼的試驗提供可靠的材料。生理生化鑒定認為，其中的3株菌為生物Ⅰ型，18株菌為生物Ⅱ型；分子生物學和生物學方法（接種指示植物向日葵）鑒定表明21株菌均具有致病性，但存在致病能力的差異。選擇對向日葵致病力最強的10株菌接種桃枝條，發現致病力也有差異。最后，對在桃上致病力表現最強的3株菌進行16S rDNA測序，確定其為根癌土壤桿菌，以其中致病性最強的AT4-3作為后繼試驗的致病菌。