陳桂華 李翔輝 郁川


【摘? ?要】 為得到TAT-Apoptin融合蛋白,以pMD-19T-Apoptin為模板PCR擴增出TAT-Apoptin基因,構建重組載體pET-32a-TAT-Apoptin,并對TAT-Apoptin蛋白進行表達。PCR和測序表明,成功構建重組載體pET-32a-TAT-Apoptin,進一步對其進行蛋白表達,發現該蛋白能與Apoptin多抗發生特異性結合。以上結果證明,TAT-Apoptin基因原核表達載體構建成功,并能在Rosetta中進行分泌性表達。
【關鍵詞】 TAT-Apoptin融合蛋白;重組載體pET-32a-TAT-Apoptin;分泌性表達
[Abstract]? In order to obtain TAT-Apoptin fusion protein, TAT-Apoptin gene was amplified by PCR with pMD-19T-Apoptin as template, the recombinant vector pET-32a-TAT-Apoptin, was constructed and the TAT-Apoptin protein was expressed. PCR and sequencing showed that the recombinant vector pET-32a-TAT-Apoptin, was successfully constructed to further express the protein, and it was found that the protein could specifically bind to Apoptin polyantibodies. The above results show that TAT- apoptin base The prokaryotic expression vector was successfully constructed and secreted in Rosetta.
[Keywords]? TAT-Apoptin fusion protein; secretory expression of recombinant vector pET-32a-TAT-Apoptin
凋亡素(Apoptin)是雞貧血病毒(chicken anemia virus, CAV)基因編碼的一種小分子功能蛋白,導入哺乳動物細胞后可表達凋亡素并誘導腫瘤細胞凋亡,對正常二倍體細胞則無影響[1,2]。但天然狀態下的Apoptin無法穿透細胞膜,人類免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus, HIV1)的反式激活蛋白(trans-activator transcription, TAT)可以在不損害細胞的情況下跨膜轉運與之融合表達的蛋白[3]。我們利用TAT這一特性,將TAT的編碼基因與外源蛋白基因Apoptin連接,表達TAT-Apoptin融合蛋白,該融合蛋白既有穿透性,又不影響外源蛋白的活性。鑒于此,我們構建了原核表達載體pET-32a-TAT-Apoptin,并對TAT-Apoptin蛋白進行表達,從而為TAT-Apoptin的抗腫瘤作用研究奠定了一定的基礎。
1? 材料和方法
1.1? 細菌菌株和載體
pMD-19T-Apoptin質粒由河南科技大學動物疫病與公共安全實驗室構建保存;E.coli-JM109、原核表達載體pET-32a、宿主表達菌菌株Rosetta均由本實驗室保存。
1.2? 試劑
Taq DNA聚合酶、dNTP、DNA Marker、T4 DNA Ligase、限制性內切酶EcoR I和Sal I、蛋白Marker均購自Takara(大連)有限公司;質粒提取試劑盒、瓊脂糖凝膠回收試劑盒均購自Axygen公司;LB培養基購自英國OXOID公司;兔抗Apoptin多抗購自武漢華美生物工程有限公司;硝酸纖維素膜、堿性磷酸酯酶標記山羊抗兔二抗、BCIP/NBT堿性磷酸酯酶顯色試劑盒均購自上海碧云天生物技術有限公司;IPTG誘導劑購自Sigma公司;氨芐青霉素購自生工生物(上海)股份有限公司。
1.3? 方法
1.3.1 引物設計與合成? 根據GenBank中的CAV基因組序列(GenBank: AF199501)及相關文獻中[4]報道的TAT序列,運用Primer Primer 5.0引物設計軟件設計并合成如下特異性引物:TAT-Apoptin引物:
1.3.2 TAT-Apoptin基因的克隆與鑒定? 以構建好的pMD-19T-Apoptin為模板,利用1.3.1設計合成的引物擴增出TAT-Apoptin融合基因,并于pET-32a進行連接,轉化大腸桿菌Rosetta中,挑取單菌落分別進行PCR鑒定和酶切鑒定,陽性重組質粒送上海生工測序。
1.3.3 TAT-Apoptin融合蛋白的表達鑒定? 挑取含有重組質粒的Rosetta單菌落,接種到4ml(LB+A)液體培養基中,于37℃、200rpm振搖過夜培養。取50ul過夜培養物轉接到5ml(2×YT+A)培養基中,于37℃、200rpm振搖培養4h左右加入1mmol濃度的IPTG,28℃、180rpm誘導表達7h后離心菌體,PBS洗兩遍,再用PBS重懸菌體,超聲破碎后再次離心,用200ul的PBS重懸沉淀,并分別于上清和沉淀中加入適量5×蛋白上樣液,100℃煮沸10min點樣進行SDS-PAGE蛋白電泳,而后進行Western-blot鑒定。
2? ?結果
2.1? TAT-Apoptin基因的擴增
PCR產物經1%的瓊脂糖凝膠電泳顯示大小為411bp,與預期大小一致(見圖1)。
2.2? ?pET-32a-TAT-Apoptin鑒定
對pET-32a-TAT-Apoptin進行PCR和酶切鑒定:PCR擴增出411bp的目的條帶(見圖2);經EcoR I和Sal I雙酶切后出現大小分別為5900bp和411bp的兩條帶(見圖3)。結果表明,目的片段以正確方向插入原核表達載體pET-32a中。對克隆片段進行序列測定及分析后,結果顯示重組載體pET-32a-TAT-Apoptin中包含完整的Apoptin基因及TAT序列,其中Apoptin基因序列與GenBank(AF199501)中發表的雞貧血病毒CAV基因序列相比同源性為99.7 %。但氨基酸序列同源性為100 %,說明克隆片段為TAT-Apoptin基因序列。
2.3? TAT-Apoptin蛋白的表達鑒定
含有重組質粒的Rosetta經IPTG誘導后,Western-blot顯示在約34 kDa處有TAT-Apoptin蛋白條帶,并且存在于過濾的上清中,表明TAT-Apoptin可在Rosetta中獲得分泌表達(見圖4)。
3? ?討論
腫瘤細胞的不受控增殖性是腫瘤難以治療的重要原因之一,如何促使腫瘤細胞凋亡成為各國學者探究的熱點[5]。研究發現,Apoptin可以選擇性促使腫瘤細胞凋亡,但是,處于天然狀態下的Apoptin透過細胞膜促使腫瘤細胞凋亡相當困難。因此,如何使Apoptin在腫瘤組織聚集并順利進入體內腫瘤細胞,發揮其腫瘤特異性殺手的效用,是當前亟待解決的問題。研究證實,HIV-1的反式激活因子TAT可攜帶小分子蛋白跨膜進入細胞[3],具有廣譜蛋白轉導作用。因此,本實驗將二者結合探究其在原核表達載體中的表達情況,為后續純化TAT-Apoptin蛋白并誘導腫瘤細胞凋亡奠定了基礎。
本實驗構建的TAT-Apoptin在Rosetta中具有很高的表達量,且目的蛋白大量出現在裂解上清中,說明其主要以分泌形式進行了表達,這可能與Rosetta中含有的稀有密碼子有關,這些稀有密碼子為Rosetta菌提供了“萬能”翻譯,從而避免因大腸桿菌密碼子使用頻率導致的表達限制。
綜上所述,本研究成功構建了能高效表達TAT-Apoptin蛋白的原核表達載體pET-32a-TAT-Apoptin,為進一步探索Apoptin的抗腫瘤作用研究提供了一定材料。
參考文獻:
[1]? Yuasa N, Taniguchi T, Yoshida I. Isolation and some properties of an agent iducing anemia in chicks[J]. Avian Dis, 1979,23(2): 366-385.
[2]? Noteborn MH, Todd D, Verschueren CA, et al. A singlechicken anemia virus protein induces apoptosis [J]. J Virol,1994, 68(1): 346-351.
[3] S Debaisieux, F Rayne, H Yezid, et al. The ins and outs ofHIV-1 Tat[J]. Traffic, 2012, 13(3): 355-363.
[4]? L Guelen, H Paterson, J Gaken, et al. TAT-apoptin is effi?ciently delivered and induces apoptosis in cancer cells[J].? ? ? ? ? ? ?Oncogene, 2004, 23(5): 1153-1165.
[5]? LT Jia, SY Chen, AG Yang. Cancer gene therapy targeting?cellular apoptosis machinery[J]. Cancer Treat Rev, 2012, 38? (7): 868-876