不同演替階段核桃根際放線菌群落生態特征

王傳琪，肖 文，嚴麗紅，馬 瑞 ，楊曉燕*

（1.大理大學公共衛生學院，云南大理 671000；2.大理大學東喜瑪拉雅研究院，云南大理 671003；3.大理大學農學與生物科學學院，云南大理 671003）

根際是植物自身創造的一種特殊環境，由植物根系包圍，并受植物根系的影響，是大量微生物和無脊椎動物的家園，被認為是地球上最具活力的界面之一〔1〕。而在其中生存的微生物被定義為根際微生物，是根際微生物生態系統中的重要組成部分，主要包括細菌、真菌和放線菌三大群落〔2〕，它們在轉化土壤有機質時，能夠釋放礦物質，進而對植物的原生演替產生促進作用，反過來，植物以腐殖質和根系分泌物的形式向土壤子系統補充能量，大大促進了微生物活動，使得根際土壤微生物數量遠遠高于非根際土壤〔3-4〕。目前，越來越多的研究表明，土壤微生物對于植物的生長和健康具有重要影響，但是，植物在生長和發育過程中對微生物群落結構和生態功能的反作用尚無定論〔5〕。2015年，Guo等〔6〕采用磷脂脂肪酸分析法對海南橡膠園橡膠根際土壤和非根際土壤微生物群落的空間變化進行了研究，通過對不同樹齡橡膠樹根際微生物群落結構的分析研究表明，根際土壤中的總生物量明顯高于非根際土壤，并且隨著樹齡的增加，土壤微生物生物量呈逐漸上升趨勢。但2007年，王韻等〔7〕對廣西喀斯特地區不同演替階段植物根際微生物群落的研究表明，在植被恢復過程中，隨著樹齡的增加，細菌和土壤微生物總量逐漸增加，真菌則逐漸減少。為了進一步探究植物在生長和發育過程中對微生物群落結構和生態功能的影響，本研究以核桃根際放線菌為研究對象，結合其抑菌活性開展研究，了解不同演替階段核桃根際放線菌群落結構特征和生態功能特征的變化。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 土壤樣品采集 樣品采自漾濞縣蒼山西鎮光明村（東經99°58′6.816″，北緯25°40′3.216″）10棵不同樹齡核桃根際土壤，每棵核桃樹之間平均相距約700 m，取樣部位為樹冠投影內緣，離樹干1.0 m左右，按“東南西北”4個方位，采集土樣，采集時除去核桃根部表層土壤，取5～15 cm土層的土壤約200 g，裝入封口樣品袋混勻。核桃樹齡通過走訪當地居民確定，分別為 10、20、30、40、50、100、200、260、350、500年，所有采集的樣品置4℃冰箱保存，1周內處理完所有樣品。

1.1.2 供試病原菌 金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureus，批號：ATCC186335）、大腸桿菌（Escherichia coli，批號：ATCC25922）、青霉菌（Penicillium，批號：ATCC117714），供試病原菌由大理大學農學與生物科學學院微生物實驗室提供。

1.1.3 培養基 高氏一號培養基、PDA培養基、發酵培養基和牛肉膏蛋白胨培養基的配制方法見文

獻〔8-9〕。

1.2 方法

1.2.1 放線菌的分離 將土樣取出，置于室內風干，充分研磨，過篩，然后分別稱取10 g土壤轉置于盛有90 mL無菌水的錐形瓶中，置于45℃恒溫搖床中120 r∕min振蕩24 h，使蘊藏在樣品中的放線菌充分釋放〔10〕，溫室中靜置20 min備用。采用10倍比稀釋法將土樣懸液稀釋為10-3、10-4、10-5，分別吸取0.1 mL土壤懸液涂布到高氏一號培養基上，每個濃度設置3個平行，置于28℃恒溫箱中倒置培養4～7 d。挑取單菌落進行平板劃線分離培養，經過多次純化接種到高氏一號斜面培養基，并置于28℃恒溫箱中培養24 h，然后于4℃冰箱中保存備用。

1.2.2 菌株鑒定 根據國際鏈霉菌計劃（ISP）中有關放線菌培養特征的標準，觀察并記錄放線菌在不同培養基上的生長情況〔11〕。采用插片法〔12〕觀察自然狀態下基絲、氣絲、孢子絲、孢子的形態，并用微分干涉顯微鏡AE31進行拍照，參照《放線菌快速鑒定與系統分類》鑒定到屬。

1.2.3 抑菌活性的測定 病原菌菌懸液制備：將冷凍保存的金黃色葡萄球菌（S.aureus）和大腸桿菌（E.coli）劃線接種至牛肉膏蛋白胨培養基上，青霉菌（Penicillium）劃線接種至PDA培養基上，37℃培養24 h；挑取單菌落至裝有10 mL無菌PBS緩沖液的試管中，得到病原菌菌懸液，置于4℃冰箱中備用〔13〕。

放線菌發酵液制備：菌種經斜面活化后，用接種環將菌落接種于發酵培養基，28℃、160 r∕min搖床培養 6 d，發酵結束后，8 000 r∕min 離心，取上清，-20℃保存備用。

抑菌圈直徑測定：采用濾紙片法〔14〕進行測定。分別取金黃色葡萄球菌（S.aureus）、大腸桿菌（E.coli）菌懸液100 uL涂布于牛肉膏蛋白胨培養基，青霉菌（Penicillium）菌懸液100 uL涂布于PDA培養基。取20 uL發酵液滴加于6 mm無菌濾紙片，將其分別貼于上述培養基上，細菌和青霉菌分別置于30℃恒溫箱中培養24 h和48 h后觀察有無抑菌圈，并測量抑菌圈直徑。

1.2.4 數據分析 將采樣點土壤樣品按照樹齡分為兩組，樹齡＜100年的采樣點為演替早期，樹齡≥100年的采樣點為演替后期，使用SPSS 17.0對數據進行兩組獨立樣本雙側t檢驗。

2 結果

2.1 放線菌分離純化結果 本研究共分離得到133株放線菌，初步鑒定為11個屬，演替早期采樣點共分離到83株放線菌，分布于10個屬，演替后期采樣點共分離到50株放線菌，分布于6個屬（表1）。其中鏈霉菌屬（Streptomyces）和間孢囊菌屬（Intra?sporangium）分布較為廣泛，在所有采樣點中均能分離到，原小單孢菌屬（Promicromonospora）、糖絲菌屬（Saccharopolyspora）和小雙孢菌屬（Microbispora）僅在一個采樣點分離到。

如表2所示，從演替早期土壤樣品中分離的放線菌屬豐富度高于演替后期（t=2.921，P=0.019），檢出率亦然（t=5.127，P=0.001）。

2.2 不同演替階段抑菌活性菌株分布 如表3所示，從演替后期土壤樣品中分離到的活性菌株數量高于演替早期（t大腸桿菌=-2.479，P=0.038；t金黃色葡萄球菌=-2.613，P=0.031；t青霉菌=-2.399，P=0.043）。

表1 不同演替階段核桃根際放線菌檢出數量

表2 不同演替階段屬豐富度和檢出率的差異

表3 不同演替階段抑菌活性菌株數量

2.3 不同演替階段菌株抑菌活性特征 如表4所示，從演替后期土壤樣品中分離到的活性菌株抑菌活性與演替早期差異無統計學意義（t大腸桿菌=-0.396，P=0.695；t金黃色葡萄球菌=0.331，P=0.743；t青霉菌=-0.225，P=0.823）。

表4 不同演替階段菌株抑菌活性

3 討論

本研究在核桃根際共分離到放線菌133株，演替早期核桃根際土壤中放線菌資源較演替后期核桃根際中多，與崔翠〔15〕研究結果基本一致，即在不同生長年限的核桃根際土壤中，土壤微生物數量及種群發生了較大的變化，放線菌種群數量隨著生長年限的增長而呈現降低的趨勢，這可能由于生態系統發育早期階段根系生長迅速，有助于釋放多種關鍵營養物質，使土壤有機質不斷積累，為微生物的生長創造了良好的生長環境〔16〕，這種生態系統的早期轉變是基本的，通常是由植物與共生細菌之間早期的互惠關系驅動的〔17-18〕，然而，由于土壤有機質的長期損失和根系重新分配關鍵營養物質，植物和根際微生物相互拮抗，物種之間對于資源的競爭加劇，最終限制了生態系統的生產力〔19〕，導致微生物數量不斷減少。植物根際土壤微環境隨著植物生長而不斷變化，根際微生物為適應微環境的改變而發生群落結構的演替。

在演替過程中，隨著放線菌群落結構的不斷變化，具有抑菌活性的放線菌數量和所抑制病原菌的種類也在不斷變化，演替后期分離得到的放線菌的數量明顯高于演替早中期，并且在不同演替階段對不同病原菌的抑制能力也不相同，這可能與植物—根系—微生物的相互作用有關。根際是受植物根系活動影響、靠近植物根系的微域土區，直接受到植物的影響〔20〕，是微生物相互作用、基因交換和群落結構演替的關鍵區域〔21〕。研究表明，植物可以通過自身合成或從外部環境中吸收物質，分泌到根際周圍的土壤中，通過微生物之間的競爭作用，對根際微生物群落結構進行選擇性塑造〔22〕，例如鏈霉菌能夠分泌嗜鐵螯合鐵離子〔23〕，從而可以利用較多的鐵離子，限制土壤其他微生物的生長。并且，根際微生物在與宿主植物的長期進化過程中，與次級代謝產物生物合成有關基因可通過水平基因轉移使得植物根際放線菌產生一些由植物合成的生物活性物質〔24-25〕。而核桃的有效成分大多存在于植物根部，其根際微生物長期以來受根系分泌物的影響，使得核桃根際微生物群落結構和功能特征存在一定特殊性〔26〕。

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