于曉晨,梁劍青,王嫚娜,牛祖彪,陳昭烈,孫強
軍事醫學研究院 生物工程研究所,北京 100071
細胞內的著絲粒相關蛋白檢查點蛋白(checkpointprotein,CP)是細胞分裂監控體系中的重要組成部分,有絲分裂阻滯缺陷蛋白2(mitoticarrest deficientprotein2,MAD2)作為CP蛋白的重要成員,在控制有絲分裂周期的正常進行中發揮著重要作用[1-2]。MAD2可以與CDC20結合[3],共同參與有絲分裂紡錘體檢查點復合物(spindleassemblycheckpoint,SAC)的形成[4],抑制有絲分裂中期向后期的進展,防止染色體分離錯誤。當有絲分裂中期姐妹染色單體正確地連接于紡錘體上,MAD2與CDC20解離,SAC復合物失活,CDC20激活泛素連接酶分裂后期促進復合體或循環體(APC/C),促進細胞周期阻滯蛋白的降解,有絲分裂中期向后期正常進展;若有絲分裂中期異常,則會激活SAC復合物,將細胞阻滯在分裂中期[5-6]。MAD2的異常會導致紡錘體檢查點的功能減弱或消失,無法監控腫瘤細胞內異常的動粒-微管結合,使染色體出現異常分離,造成細胞核型的非整倍體異常而導致腫瘤[7-8]。因此,MAD2與腫瘤的發生密切相關[4]。
為動態追蹤細胞有絲分裂中期阻滯,實時標記周期阻滯的細胞,并檢測MAD2分子在細胞分裂周期里的亞細胞分布變化,我們構建了MAD2與綠色熒光蛋白(EGFP)的融合蛋白,并初步檢測了EGFP-MAD2融合蛋白表達對細胞周期的影響。結果表明所構建的重組質粒能夠有效表達EGFP-MAD2融合蛋白,并誘導細胞在G2/M其發生阻滯,為隨后的功能研究奠定了基礎。
人胚腎細胞293FT細胞由本實驗室保存;大腸桿菌感受態細胞Trans10、dNTPs、TaqDNA聚合酶購自北京全式金生物技術有限公司;包含目的基因MAD2的質粒購自義翹神州生物技術有限公司;pQCXIP-EGFP-N1載體由本實驗室提供;pGEM-T載體購自Promega公司;實驗所需的Q5超保真DNA聚合酶,T4DNA連接酶,EcoRⅠ、BamHⅠ限制性內切酶及Cutsmart酶切緩沖液均購自NewEnglandBiolabs公司;瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒、無內毒素質粒小提中量試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;脂質體Lipo?fectAMINE2000購自Invitrogen生命技術有限公司;高糖DMEM培養基購自Macgene公司;胎牛血清FBS購自PAN-Biotech公司;PCR引物由中美泰和生物技術(北京)有限公司合成。
分別以pQCXIP-EGFP-N1載體及包含目的基因MAD2的質粒為模板,設計2對PCR擴增引物,其中EGFP的3′端引入限制性酶切位點BamHⅠ,MAD2的5′端引入限制性酶切位點EcoRⅠ,通過PCR擴增技術獲得EGFP和MAD2基因片段。為了提高融合基因表達產物的穩定性,引物設計時增加了同源互補的連接肽(Linker)。引物為EGFP-F(GGATC?CATGGTGAGCAAGGGCGAG)、EGFP-R(CCTCCTCC TCCTCCTCCGTCGACCTTGTACAGCTCGTCCATGCC)、MAD2-F(TCGACGGAGGAGGAGGAGGAGGAATGGCGC TGCAGCTCTC)、MAD2-R(GTAGAATTCTCAGTCATT GACAGGAATTTTGTAGGCC)(斜體字部分為同源互補序列)。EGFP和MAD2擴增產物電泳后回收混合作為模板,用EGFP-F和MAD2-R引物對進行重疊PCR,擴增獲得EGFP-MAD2融合基因。PCR反應條件:98℃預變性30s;98℃變性10s,60℃退火30s,72℃延伸45s,33個循環;72℃延伸2min。
將EGFP-MAD2融合片段克隆入pGEM-T載體進行測序測定。取測序正確的pGEM-TEGFP-MAD2質粒和表達載體pQCXIP-EGFP-N1,分別經限制性內切酶BamHⅠ/EcoRⅠ和BamHⅠ/MfeⅠ雙酶切,利用EcoRⅠ和MfeⅠ是同尾酶的原理,將融合片段EGFP-MAD2插入pQCXIP-EGFPN1載體,獲得重組表達載體pQCXIP-EGFP-MAD2(圖1)。
293FT細胞按1.5×104/孔接種于12孔板內,用含10%胎牛血清的高糖DMEM培養基于37℃、5%CO2的培養箱中常規培養約24h,細胞生長至匯合度50%~60%時,將pQCXIP-EGFP-MAD2表達質粒與脂質體混合共轉染293FT細胞,質粒與LipofectAMINE2000的用量比為0.5 μg∶1 μL(轉染按說明書操作)。對照組轉染空載體pQCXIPEGFP-N1。

圖1 pQCXIP-EGFP-MAD2重組表達載體的構建示意圖
轉染72h后用熒光顯微鏡(NikonEclipse)同時采集對照質粒和pQCXIP-EGFP-MAD2質粒轉染的293FT細胞圖像(DIC和FITC通道),觀察熒光蛋白表達情況。
熒光顯微鏡采集圖像后回收細胞,用流式細胞儀分析細胞周期。消化細胞制備細胞懸液,2000r/min離心5min;棄上清,用0.5mL1%多聚甲醛重懸,避光固定10min;1000r/min離心3 min,棄上清,用 3~5mLPBS清洗 3次,PBT(以PBS為溶劑,含0.1%TritonX-100,0.5%BSA)清洗1次;再次離心后用PI染液(以PBT為溶劑,含100 μg/mLRNaseA,50 μg/mL碘化丙啶)重懸細胞,避光37℃孵育1h或4℃過夜;PBS清洗2次后重懸細胞,調整細胞密度約為106/mL,用流式細胞儀(BectonDickinson)進行分析。
以pQCXIP-EGFP-N1載體及含有MAD2基因的質粒為模板,PCR擴增EGFP和MAD2的基因片段,產物長度分別為746和650bp。通過重疊PCR將2個片段拼接為EGFP-MAD2,產物長度為1374bp,DNA凝膠電泳驗證產物與理論基因片段長度一致(圖2A)。將EGFP-MAD2基因片段與pGEM-T載體連接,獲得重組質粒pGEM-TEGFP-MAD2,通過測序驗證EGFP-MAD2基因序列正確,無突變或缺失。取測序驗證正確的pGEM-T-EGFP-MAD2質粒和表達載體pQCXIPEGFP-N1,經雙酶切連接,將融合片段EGFPMAD2插入pQCXIP-EGFP-N1載體,獲得重組表達載體pQCXIP-EGFP-MAD2。隨機挑取8個單菌落進行菌液PCR驗證,結果顯示4號和7號克隆的目的基因連接成功(圖2B),取7號單克隆測序分析,測序結果表明EGFP-MAD2基因序列正確,無突變或缺失(圖2C)。
將pQCXIP-EGFP-MAD2質粒通過脂質體法轉染293FT細胞,72h后在熒光顯微鏡下可見293FT細胞中綠色熒光蛋白的表達(圖3)。轉染pQCXIP-EGFP-MAD2質粒的細胞綠色熒光蛋白表達效率和表達水平都顯著高于對照組pQCXIPEGFP-N1,且視野中容易觀察到被阻滯在有絲分裂中期的細胞(呈圓球狀,圖3箭頭所示),約占細胞總數的1/3,提示MAD2基因表達可能阻滯細胞G2/M期的進展。

圖2 pQCXIP-EGFP-MAD2載體構建及序列分析
由于對照載體pQCXIP-EGFP-N1與重組載體pQCXIP-EGFP-MAD2的綠色熒光表達量不同,通過設定相同的閥值M1獲得綠色熒光細胞群,排除未表達或表達量低的細胞干擾,進一步分析細胞周期。流式分析結果(圖4)顯示,超過一半的EGFP-MAD2表達細胞處于G2/M期(54.1%),顯著多于EGFP對照組的22.4%,表明融合了EGFP的MAD2蛋白仍然能夠有效地誘導細胞發生G2/M阻滯。
MAD2作為有絲分裂紡錘體檢測點SAC復合物的關鍵蛋白,在調控細胞正常有絲分裂方面發揮著重要作用[9],當細胞周期進程中出現DNA損傷或復制受阻等異常事件時,監控點激活,及時中斷細胞周期運行,防止異常的染色體分離[10]。MAD2基因影響多種腫瘤如胃癌、大腸癌、結直腸癌、喉鱗狀細胞癌等的發生和發展,臨床標本分析顯示MAD2的表達與多種腫瘤的預后密切相關,可以作為腫瘤惡性程度判定、預后分析及腫瘤臨床治療的重要參考指標[4,11-14]。而沉默MAD2基因的表達,能夠顯著抑制腸癌細胞增殖、抑制細胞遷移、誘導細胞凋亡。因此,MAD2基因被認為是腫瘤防治的一個潛在靶點[15-16]。

圖3 EGFP-MAD2融合蛋白在293FT細胞中表達

圖4 MAD2表達導致細胞周期G2/M期阻滯
為實現實時追蹤MAD2蛋白分子在細胞內的分布定位,指示MAD2過表達的細胞,我們將MAD2與EGFP融合構建融合蛋白,考慮到EGFP蛋白的分子略大于MAD2,直接融合后可能會影響MAD2分子的折疊和功能發揮,我們在2個分子間加入了一段8個氨基酸殘基的連接短肽,鑒于以往文獻中將短的標簽(如HA等)融合于MAD2分子的N端,我們將EGFP分子也融合在MAD2分子的N端,并在EGFP分子的起始密碼子前端設計了Kozak序列以增強融合蛋白的翻譯效率。將構建的EGFP-MAD2融合基因表達載體轉入293FT細胞后,熒光顯微鏡下可以看到與對照EGFP相當甚至更強的綠色熒光信號,提示EGFP-MAD2融合蛋白得到了有效表達,與此相對應,流式細胞分析顯示表達EGFP-MAD2融合蛋白的細胞在G2/M期的比例顯著增加,提示融合蛋白仍然具有誘導細胞發生G2/M阻滯的功能。以上結果表明,我們構建了可用于活細胞成像和實時動態追蹤的EGFP-MAD2融合蛋白,而EGFP在MAD2分子N端的融合并不影響其細胞學功能,可以用于后續的功能研究。