徐炎炎,卓倩,湯洋洋,王慶苓
(徐州醫(yī)科大學,江蘇徐州 221004)
內皮細胞蛋白C受體(EPCR)是一種血管內皮細胞上表達的I型跨膜糖蛋白[1]。最初研究認為EPCR主要定位于大血管的內皮細胞上,在多數(shù)組織的微血管內皮中表達極低或不存在,還特異性表達于人支氣管上皮細胞、肺泡上皮細胞、單核細胞及中性粒細胞。EPCR是蛋白C(PC)和活化蛋白C(APC)的細胞受體,EPCR能與PC特異性結合,使PC活化效率提高4~20倍,APC繼而活化蛋白酶激活受體1(PAR-1),且APC與其輔因子蛋白S一起降解凝血因子Va和Ⅷa,從而干擾凝血酶產生并抑制凝血級聯(lián)反應[1~7]。近年來研究發(fā)現(xiàn)EPCR在部分腫瘤組織及細胞中表達[8]。EPCR在腫瘤細胞中的作用復雜,大部分研究認為EPCR促進腫瘤的生長,但亦有極少部分研究結果相反。另外EPCR在乳腺癌進展中的作用尚未闡明。2016年9月,我們探討EPCR在乳腺癌MBA-MB-231細胞增殖、遷移中的作用及分子機制?,F(xiàn)報告如下。
1.1材料人乳腺癌MDA-MB-231細胞購自中國科學院細胞所,DMEM高糖培養(yǎng)基購自Gibco公司,胎牛血清購自杭州四季青公司,CCK-8試劑盒購自日本株式會社同仁化學,Transwell 小室購自Millipore公司,Lipofectamine2000轉染試劑、opti-MEM和 EPCR siRNA片段GCACUCG-GUAUGAACUGCGGGAAU及無關序列對照購自Invitrogen公司,RIPA裂解液、BCA蛋白濃度測定試劑盒購自碧云天公司, 鼠抗人EPCR單克隆抗體、兔抗人GAPDH單克隆抗體購自Abcam公司,兔抗人Erk1/2單克隆抗體、兔抗人p-Erk1/2單克隆抗體、兔抗人AKT、兔抗人p-AKT(S473)、兔抗人p-AKT(T308)購自Cell signaling,辣根酶標記山羊抗小鼠IgG隆抗體、辣根酶標記山羊抗兔IgG隆抗體購自中杉金橋公司??刮戳呀庑蚉AR-1抗體委托Abgent Biotechnology公司設計并制備。
1.2細胞培養(yǎng)、轉染及抗體阻斷處理 用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,于37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱內培養(yǎng)MDA-MB-231細胞。將對數(shù)生長期的MDA-MB-231細胞接種于6孔細胞培養(yǎng)板中,每孔加2 mL細胞懸浮液培養(yǎng)過夜。將MDA-MB-231分為EPCR轉染組、無關序列轉染組和對照組,每組3個孔。分別加入5 μL/孔EPCR-siRNA、5 μL/孔 siRNA-NC、5 μL/孔空脂質體轉染,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)6 h,更換細胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)至實驗所需時間。同樣,將對數(shù)生長期的MDA-MB-231細胞接種至6孔細胞培養(yǎng)板中,每孔加2 mL細胞懸浮液培養(yǎng)過夜。將MDA-MB-231分為抗體處理組與對照組,每組3個孔。一組加入10 μg Anti-PAR1 抗體,一組為空白對照組。37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)4 h,更換細胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)至實驗所需時間。
1.3細胞中PAR-1蛋白表達檢測采用Western blotting法。提取各組細胞總蛋白,SDS-PAGE電泳,PVDF膜轉膜,5%脫脂牛奶封閉2 h,加入抗體EPCR(1∶1 000)、PAR-1(1∶1 000)、p-Erk1/2(1∶2 000)、p-Erk1/2(1∶2 000)、Akt(1∶1 500)、p-Akt(1∶1 000)、GAPDH(1∶10 000),4 ℃過夜。二抗室溫孵育2 h,化學發(fā)光檢測目的條帶,并采用Image J圖像分析系統(tǒng)對條帶進行分析。
1.4細胞增殖能力檢測將成功轉染或抗體處理24 h后的細胞,調整濃度為3.0×103/mL。按每孔100 μL接種細胞懸液至96孔板,每組設6個復孔。繼續(xù)培養(yǎng)24、48、72 h,取出培養(yǎng)板,吸棄培養(yǎng)基,將DMEM和CCK-8按10∶1的比例預先混勻,每孔加入100 μL,另設一個空白對照孔,無細胞生長孔,只加100 μL混合液,于37 ℃孵育2 h,酶標儀450 nm處檢測光密度值(OD值)。
1.5細胞遷移能力檢測將成功轉染或抗體處理24 h后的細胞,調整密度為1×104/孔,接種于Transwell小室的上室。每孔下室內加入完全培養(yǎng)液600 μL,將其放于24孔板上,每組設3個復孔。常規(guī)培養(yǎng)24 h后取出Transwell小室,甲醇固定30 min,晾干后于1%結晶紫染液染色25 min,PBS洗滌后用棉簽輕輕擦去上室細胞。倒置顯微鏡拍照計數(shù)(×200),每個小室隨機取10個視野,計算穿至小室膜下的細胞數(shù)后統(tǒng)計分析。
1.6MDA-MB-231細胞表面未裂解活化的PAR-1檢測采用Cell-ELISA法。將對數(shù)生長期的MDA-MB-231細胞接種到6孔細胞培養(yǎng)板中,每孔加2 mL細胞懸浮液培養(yǎng)過夜。將MDA-MB-231分為EPCR轉染組、無關序列轉染組、空白對照組、陽性對照組。分別加入5 μL/孔EPCR-siRNA、5 μL/孔 siRNA-NC、5 μL/孔空脂質體轉染、5 μL/孔凝血酶,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)6 h,更換細胞培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。調整細胞密度至3×104細胞/mL,將細胞接種于96孔板,每組設6個復孔,培養(yǎng)過夜。PBS洗3次,4%多聚甲醛室溫固定10 mim。1%BSA室溫封閉1 h后加入一抗37 ℃孵育1 h。PBS洗3次,加入二抗室溫孵育1 h。加入TMB顯色液顯色20 min后加入終止液終止反應。酶標儀450 nm處測OD值統(tǒng)計結果。
1.7干擾EPCR表達或添加抗PAR-1抗體對MDA-MB-231細胞Erk1/2和AKT 蛋白磷酸化水平的影響將無關序列和EPCR siRNA轉染,或用抗PAR-1抗體處理MDA-MB-231細胞,作用48 h后收集蛋白,然后采用Western blotting法分別檢測細胞中Erk1/2、p-AKT(S473)和p-AKT(T308)蛋白磷酸化情況。

2.1干擾MDA-MB-231細胞中EPCR表達對PAR-1蛋白表達及活性的影響EPCR siRNA干擾MDA-MB-231細胞EPCR基因表達后,EPCR蛋白表達明顯降低,而細胞表面PAR-1的表達無明顯改變(圖1)。干擾EPCR表達后PAR-1的裂解活化受到抑制,空白對照組、對照組、抗體處理組細胞表面未裂解型PAR-1抗體結合率分別為0.98±0.069、0.54±0.066、1.79±0.175,抗體處理組細胞表面未裂解型PAR-1抗體結合率高于其他組(P均<0.05)。

圖1 干擾EPCR表達后MDA-MB-231細胞中PAR-1蛋白表達
2.2干擾MDA-MB-231細胞EPCR表達對細胞增殖及遷移的影響 隨時間延長,OD值逐漸增高;在48、72 h EPCR轉染組細胞OD450值(0.86±0.133、1.05±0.041)低于無關序列組(1.35±0.131、1.70±0.073)及空白對照組(1.37±0.045、1.69±0.054),差異有統(tǒng)計學意義(P均<0.05);而在相同時點內無關序列轉染組與空白對照組相比,OD450值無統(tǒng)計學差異,見圖2。Transwell實驗結果表明,EPCR轉染組穿過PET膜上8 μm小孔的細胞數(shù)量(71.4±10.986)較無關序列轉染組(202.50±11.316)與對照組(204.80±10.982)相比均降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),而無關序列轉染組與對照組相比無統(tǒng)計學差異。
2.3抗體阻斷PAR-1后對 MDA-MB-231細胞增殖及遷移的影響在48、72 h PAR-1抗體處理組的細胞OD450值(0.39±0.021、0.81±0.101)低于對照組(0.49±0.015、1.08±0.081),差異有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。見圖3。Transwell實驗結果顯示,與對照組(200.80±12.035)相比,抗PAR-1抗體處理組穿過PET膜上8 μm小孔的細胞數(shù)目(85.10±11.080)減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

圖2 干擾MDA-MB-231細胞EPCR表達對細胞增殖的影響

圖3 抗體阻斷PAR-1后對 MDA-MB-231細胞增殖的影響
2.4干擾EPCR表達或添加抗PAR-1抗體對MDA-MB-231細胞Erk1/2和AKT 蛋白磷酸化水平的影響干擾EPCR表達后或PAR-1抗體處理后,MDA-MB-231細胞中p-AKT(s473)蛋白磷酸化水平分別為0.30±0.052、0.31±0.012,p-AKT(T308)蛋白磷酸化水平分別為0.39±0.064、0.43±0.052,均低于對照組(0.75±0.029、0.71±0.023;0.90±0.03、0.86±0.08),差異有統(tǒng)計學意義;而Erk1/2蛋白磷酸化水平分別為0.91±0.058、0.91±0.032;0.93±0.039、0.93±0.041,與對照組比較無統(tǒng)計學差異。
惡性腫瘤的高致死率與腫瘤細胞的無限制生長,凋亡抗性和重要臟器的轉移有關。因而研究如何抑制腫瘤細胞增殖、遷移和促進凋亡將是治療腫瘤的一種新方法。以阻斷腫瘤細胞的增長和遷移并促進腫瘤細胞的凋亡為治療靶點,從而達到治療腫瘤的目的。腫瘤的發(fā)生發(fā)展受多種因子的調控,其發(fā)病機制復雜,深入研究腫瘤的發(fā)生機制可為臨床預防和治療腫瘤提供幫助。
EPCR是天然抗凝途徑的一個新成員蛋白,有諸多病理生理作用[1]。近年來研究發(fā)現(xiàn),其與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有密切聯(lián)系,EPCR在多種惡性腫瘤細胞中呈不同水平表達,且與腫瘤預后有關。研究報道腫瘤細胞中EPCR介導的細胞信號傳導可促進癌細胞遷移、侵襲和血管生成并抑制癌細胞凋亡[9,10]。體內實驗發(fā)現(xiàn),沉默EPCR基因表達或阻斷EPCR-APC結合可減少肺癌細胞在靶器官的浸潤[10]。本研究發(fā)現(xiàn),干擾人乳腺癌細胞EPCR基因表達之后,細胞的增殖及遷移能力均降低。提示EPCR在乳腺癌中的表達與乳腺癌細胞的生長與轉移可能有關,與報道一致。然而,亦有相反的結論。如EPCR被發(fā)現(xiàn)在大腸桿菌介導敗血癥的預防中發(fā)揮重要作用[11]。
蛋白酶活化受體1(PAR-1)是目前PAR家族中研究最多亦是最為重要的成員。研究報道,PAR-1促進轉化和腫瘤細胞侵襲和轉移,與肺癌、胰腺癌的預后差有關[12,13]。另有研究報道PAR-1促進胃癌細胞的形態(tài)學改變并與細胞運動和侵襲相關[14]。本研究發(fā)現(xiàn)干擾EPCR基因表達,可降低細胞表面PAR-1裂解活化水平,提示PAR-1的活性可受到EPCR表達改變的影響,且添加抗PAR-1抗體阻斷PAR-1作用可抑制MDA-MB-231細胞增殖及遷移,說明PAR-1可促進人乳腺癌細胞MDA-MB-231增殖及遷移。
MAPK/ERK和PI3K/AKT通路是細胞內重要的促增殖通路。Althawadi等[15]研究證實了在卵巢癌細胞系OVCAR-3中,游離的APC與膜型EPCR結合可通過MEK-ERK和Rho-GTP酶途徑誘導細胞遷移。Nguyen等[16]曾報道,APC在EPCR介導下通過P13K的磷酸化激活內皮型一氧化氮合酶,從而啟動有絲分裂原活化蛋白激酶(MAPK)的磷酸化,引起相應的炎性因子及黏附分子表達上調。本研究干擾EPCR基因表達或添加抗PAR-1抗體阻斷PAR-1作用后,MDA-MB-231細胞中pAKT(s473)和pAKT(T308)磷酸化水平明顯降低,但Erk1/2磷酸化水平無明顯改變。本實驗結果提示MDA-MB-231細胞中的EPCR和PAR-1可能通過活化人乳腺癌細胞的Erk1/2通路促進人乳腺癌細胞的增殖及遷移。
綜上所述,EPCR可促進人乳腺癌細胞的增殖和遷移,其機制可能是通過激活PAR-1,從而激活Akt信號途徑。
參考文獻:
[1] Mohan Rao LV, Esmon CT, Pendurthi UR. Endothelial cell protein C receptor: a multiliganded and multifunctional receptor[J]. Blood, 2014,124(10):1553-1562.
[2] Balazs AB, Fabian AJ, Esmon CT, et al. Endothelial protein C receptor (CD201) explicitly identifies hematopoietic stem cells in murine bone marrow[J]. Blood, 2006,107(6):2317-2321.
[3] Zheng X, Li W, Song Y, et al. Non-hematopoietic EPCR regulates the coagulation and inflammatory responses during endotoxemia[J]. J Thromb Haemost, 2007,5(7):1394-1400.
[4] Xue M, March L, Sambrook PN, et al. Endothelial protein C receptor is overexpressed in rheumatoid arthritic (RA) synovium and mediates the anti-inflammatory effects of activated protein C in RA monocytes[J]. Ann Rheum Dis, 2007,66(12):1574-1580.
[5] Gur-Cohen S, Kollet O, Graf C, et al. Regulation of long-term repopulating hematopoietic stem cells by EPCR/PAR1 signaling[J]. Ann N Y Acad Sci, 2016,1370(1):65-81.
[6] Keshava S, Sundaram J, Rajulapati A, et al. Factor VIIa interaction with EPCR modulates the hemostatic effect of rFVIIa in hemophilia therapy: Mode of its action[J]. Blood Adv, 2017,1(15):1206-1214.
[7] Sen P, Gopalakrishnan R, Kothari H, et al. Factor VIIa bound to endothelial cell protein C receptor activates protease activated receptor-1 and mediates cell signaling and barrier protection[J]. Blood, 2011,117(11):3199-3208.
[8] Heng W, Mu CY, Chen C, et al. Endothelial cell protein C receptor (EPCR) is expressed by lung carcinoma and correlated with clinical parameters[J]. Clin Lab, 2013,59(3-4):375-380.
[9] Gramling MW, Beaulieu LM, Church FC. Activated protein C enhances cell motility of endothelial cells and MDA-MB-231 breast cancer cells by intracellular signal transduction[J]. Exp Cell Res, 2010,316(3):314-328.
[10] Anton I, Molina E, Luis-Ravelo D, et al. Receptor of activated protein C promotes metastasis and correlates with clinical outcome in lung adenocarcinoma[J]. Am J Respir Crit Care, 2012,186(1):96-105.
[11] Taylor FB Jr, Stearns-Kurosawa DJ, Kurosawa S, et al. The endothelial cell protein C receptor aids in host defense against Escherichia coli sepsis[J]. Blood, 2000,95(5):1680-1686.
[12] Uzunoglu FG, Kolbe J, Wikman H, et al. VEGFR-2, CXCR-2 and PAR-1 germline polymorphisms as predictors of survival in pancreatic carcinoma[J]. Ann Oncol, 2013,24(5):1282-1290.
[13] Uzunoglu FG, Yavari N, Bohn BA, et al. C-X-C motif receptor 2, endostatin and proteinase-activated receptor 1 polymorphisms as prognostic factors in NSCLC[J]. Lung Cancer, 2013,81(1):123-129.
[14] Wang Q, Liu Q, Wang T, et al. Endothelial cell protein C receptor promotes MGC803 gastric cancer cells proliferation and migration by activating ERK1/2[J]. Med Oncol, 2015,32(5):162.
[15]Althawadi H, Alfarsi H, Besbes S, et al. Activated protein C upregulates ovarian cancer cell migration and promotes unclottability of the cancer cell microenvironment[J]. Oncol Rep, 2015,34(2):603-609.
[16] Nguyen M, Arkell J, Jackson CJ. Activated protein C directly activates human endothelial gelatinase A[J]. J Biol Chem, 2000,275(13):9095-9098.