卜曉芬,李 駿,朱 虹△
(華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬武漢中心醫(yī)院:1綜合二科;2重癥醫(yī)學科,武漢 430000)
酒精性脂肪肝(alcoholic fatty liver,AFL)是由于長期、過量的乙醇攝入所導致的肝臟受損疾病,主要的病理表現(xiàn)為肝細胞內(nèi)脂質(zhì)的蓄積,并且酒精性肝硬化的預后比較差[1-3]。隨著近些年飲酒人群的增加,AFL越來越受到人們的重視。甘草甜素是從中藥甘草中分離出來的一種五環(huán)三萜皂苷化合物[4]。近年的研究發(fā)現(xiàn)甘草甜素能夠清除機體內(nèi)多余的氧自由基,發(fā)揮抗氧化作用從而對肝臟起到保護作用[5-6]。但是關(guān)于甘草甜素在AFL中的作用尚少見報道。因此,本研究采用構(gòu)建體外乙醇誘導的AFL肝細胞模型,觀察甘草甜素對AFL肝細胞的保護作用及其機制。
1.1 材料 尼羅紅貯存液購自美國Sigma Aldrich公司;RIPM-1640培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶均購自美國Gibco公司;丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶(ALT)、天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶(AST)、三酰甘油(TG)測定試劑盒與CCK8試劑盒購自南京建成生物有限公司;核受體超家族轉(zhuǎn)錄因子γ(PPAR-γ)、含有“堿性螺旋-環(huán)-螺旋-亮氨酸拉鏈”結(jié)構(gòu)的核轉(zhuǎn)錄因子1(SREBP-1)、固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白裂解激活蛋白(SCAP)羊抗人多克隆抗體購自Abcam公司;Trizol Reagent購自Invitrogen公司,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和cDNA擴增試劑盒均購自Thermo公司。
1.2 方法
1.2.1 正常肝細胞的培養(yǎng) 人正常肝細胞L02細胞用含10%胎牛血清的RIPM-1640培養(yǎng)基,37 ℃,5%CO2環(huán)境下培養(yǎng)。
1.2.2 CCK8篩選乙醇誘導細胞的最佳濃度 實驗分為空白對照組、對照組、實驗組。取處于生長分裂期的細胞,消化后均勻鋪于96孔板中。待細胞完全貼壁向孔板中加入用含1%血清的1640培養(yǎng)基配置的0、0.4%、0.8%、1.6%、3.2%、6.4%、12.8%的乙醇。孵育24 h后,加入10 μL CCK8 ,采用酶標儀450 nm處檢測各孔中吸光度值。
1.2.3 AFL肝細胞模型建立 將實驗分為對照組和誘導組。誘導組加入含3%乙醇的1640培養(yǎng)基培養(yǎng)。對照組0.4%乙醇誘導培養(yǎng)3 d后,換用正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)3 d,并以6 d作為周期進行誘導,傳代。在倒置顯微鏡下觀察細胞質(zhì)內(nèi)的變化情況。將細胞分為對照組、繼續(xù)誘導組、脫離乙醇組,甘草甜素組。對照組:用正常培養(yǎng)基培養(yǎng);繼續(xù)誘導組:加入含0.4%乙醇的培養(yǎng)基誘導;脫離乙醇組:L02細胞經(jīng)乙醇誘導之后換用正常培養(yǎng)基培養(yǎng);甘草甜素組:L02細胞經(jīng)乙醇誘導之后換用含1.2 mmol/L甘草甜素的正常培養(yǎng)基培養(yǎng)。
1.2.4 CCK8篩選甘草甜素處理細胞的最佳濃度 實驗分組同1.2.2。取處于生長分裂期,乙醇誘導30代的細胞。待細胞完全貼壁后加入含0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mmol/L甘草甜素的1%血清的1640培養(yǎng)基,對照組加入不含甘草甜素的1%血清的1640培養(yǎng)基,孵育24 h后,向每孔中加入10 mL CCK8,采用酶標儀450 nm處檢測各孔中吸光度值。
1.2.5 尼羅紅染色檢測細胞內(nèi)脂肪蓄積 取對數(shù)生長期正常的和經(jīng)乙醇誘導后的L02細胞,接種細胞待培養(yǎng)24 h后。將染料尼羅紅貯存液(1 000 μg/mL)用PBS以1∶100稀釋比例稀釋后滴加至蓋玻片上,避光孵育5 min。通過熒光顯微鏡觀察細胞內(nèi)脂肪的蓄積程度。
1.2.5 細胞ALT和AST泄漏量的測定 分別取對數(shù)生長期的各組細胞,經(jīng)胰酶消化后,1 500 r/min,離心5 min后取各組細胞上清液,嚴格按照ALT和AST試劑盒上的說明書操作。
1.2.6 細胞內(nèi)TG水平的測定 分別取對數(shù)生長期的各組細胞,胰酶消化后1 500 r/min,離心5 min。PBS清洗細胞2次,每次5 min,計數(shù),控制細胞密度為106個/mL。向各組細胞中加入1 mL裂解液,裂解30 min后,4 ℃離心25 min,收集各組細胞的上清液送于本院檢驗科進行檢測。
1.2.7 流式細胞儀(FCM)檢測細胞凋亡情況 取各組中處于對數(shù)生長期的細胞,消化離心后制成單細胞懸液,加入500 μL binding-buffer重懸,依次加入Annexin-V、PI各5 μL。于1 h內(nèi)在FCM上檢測。結(jié)果判定:FITC-/PI-為活細胞,F(xiàn)ITC-/PI+為壞死細胞,F(xiàn)ITC+/PI-為早期凋亡細胞,F(xiàn)ITC+/PI+為晚期凋亡細胞。細胞凋亡率計算公式如下:
細胞凋亡率(%)=(早期凋亡細胞數(shù)+晚期凋亡細胞數(shù))/全部細胞數(shù)×100%。
1.2.8 FCM檢測細胞周期情況 取各組中處于對數(shù)生長期的細胞,消化離心后制成單細胞懸液,加入含75%乙醇的1×binding buffer重懸,4 ℃固定12 h以上,加入RNaseA反應30 min,5 μL PI室溫避光反應20 min。于1 h內(nèi)在FCM上檢測。
1.2.9 Western blot檢測細胞PPAR-γ,SREBP-1,SCAP蛋白的表達 取各組中處于對數(shù)生長期的細胞,提取細胞中的總蛋白,采用12%的十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)2 h分離蛋白,轉(zhuǎn)膜,室溫封閉1 h,一抗 4 ℃過夜,二抗[IgG(1∶2 000)]37 ℃孵育2 h,最后電化學發(fā)光顯影后用凝膠成像分析系統(tǒng)(Bio-Rad,USA)測蛋白條帶光密度值。
1.2.10 RT-PCR檢測細胞PPAR-γ、SREBP-1、SCAP mRNA的表達 取各組中處于對數(shù)生長期的細胞,提取細胞中的RNA,反轉(zhuǎn)錄并擴增成DNA。PPAR-γ引物序列上游:5′-GCC TGC ATC TCC ACC TTA TTA-3′,下游:5′-ATC TCC ACA GAC ACG A-3′;SREBP-1引物序列上游:5′-TGG GTT AGA GAA TGT GTT GGT G-3′,下游:5′-GAA GTA GCC GAT GAG GAT GAT G-3′;SCAP引物序列上游:5′-ACA CAG CAA CCA GAA ACT CAA G-3′,下游:5′-AGT GTG TCC TCC ACC TCA GTC T-3′;以GAPDH作為內(nèi)參,引物序列上游:5′-CAT GGG GTG TGA ACC ATG AGA-3′;下游:5′-GTC TTC TGG GTG GCA GTG AT-3′。RT-PCR反應條件如下:95 ℃預變性10 min,然后95 ℃變形30 s,50 ℃退火30 s,70 ℃延伸1 min,40個循環(huán),最后70 ℃延伸10 min結(jié)束。擴增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像分析系統(tǒng)檢測條帶灰度。

2.1 CCK8篩選乙醇誘導細胞的最佳濃度 隨著乙醇濃度的增加,肝細胞的活力隨之降低,活細胞的數(shù)目也逐漸減少,見圖1。

圖1 不同濃度乙醇作用肝細胞的CCK8結(jié)果
2.2 CCK8篩選甘草甜素處理細胞的最佳濃度 隨著甘草甜素處理濃度的增加,細胞活力呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢,當作用濃度為1.2 mmol/L時,甘草甜素對細胞的促生長作用最大,見圖2。

圖2 不同濃度甘草甜素作用于AFL肝細胞的CCK8結(jié)果
2.3 各組細胞尼羅紅染色結(jié)果 實驗組肝細胞的脂肪蓄積率為(58.85±5.08)%,對照組為(18.12±4.58)%,兩組比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。尼羅紅染色結(jié)果發(fā)現(xiàn),AFL肝細胞中存在大量脂肪的蓄積,見圖3。

A:實驗組;B:對照組
圖3 尼羅紅染色顯示細胞內(nèi)脂肪蓄積(×20)
2.4 各組細胞TG水平及ALT、AST泄漏量比較 與對照組比較,脫離乙醇組中TG水平有所降低(P>0.05);甘草甜素組細胞內(nèi)的TG水平明顯降低(P<0.01);繼續(xù)誘導組細胞內(nèi)的TG水平有所升高(P>0.05)。與對照組比較,脫離乙醇組細胞內(nèi)的ALT與AST泄漏量降低(P<0.05);繼續(xù)誘導組細胞內(nèi)的ALT與AST泄漏量明顯升高(P<0.05);而甘草甜素組細胞內(nèi)的ALT與AST泄漏量明顯降低(P<0.01),見表1。
2.5 各組細胞周期與凋亡情況 對照組中的細胞大部分處于G0/G1期,G2/M期細胞數(shù)目少。與對照組比較,甘草甜素組中的細胞,S期細胞明顯減少,G2/M期細胞增加,各組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。與對照組相比,甘草甜素組的細胞凋亡率明顯降低(P<0.05),見表2。

表1 各組細胞TG水平及ALT和AST泄漏量 比較
a:P<0.05,b:P<0.01,與對照組比較

表2 各組細胞周期與凋亡結(jié)果比較(%)
a:P<0.05,與對照組比較
2.6 各組細胞中PPAR-γ、SREBP-1、SCAP蛋白的表達 空白對照組中PPAR-γ、SREBP-1、SCAP蛋白的表達低,在乙醇誘導后的AFL肝細胞中3種蛋白的表達出現(xiàn)了明顯的升高,經(jīng)藥物甘草甜素治療后AFL肝細胞內(nèi)3種蛋白的表達明顯降低(P<0.05),見圖4。
2.7 各組細胞中PPAR-γ、SREBP-1、SCAP mRNA的表達 空白對照組中PPAR-γ、SREBP-1、SCAP mRNA的表達低,在乙醇誘導后的AFL肝細胞中3種mRNA的表達出現(xiàn)了明顯的升高(P<0.05),甘草甜素組肝細胞內(nèi)3種mRNA的表達明顯降低(P<0.05),見表3。

表3 各組細胞中 PPAR-γ、SREBP-1、SCAP mRNA表達比較
a:P<0.01,與空白對照組比較;a:P<0.05,與對照組比較
近些年,多項研究報道關(guān)于甘草甜素在肝炎等肝臟疾病中的作用。研究發(fā)現(xiàn)甘草甜素能夠?qū)λ穆然颊T導的肝損傷起保護作用,同時臨床上采用甘草甜素的脂質(zhì)體對AFL進行治療[7]。但關(guān)于甘草甜素對酒精性肝損傷的報道少見。
李龍輝等[8]報道通過乙醇誘導L02成功建立了體外AFL模型。而本研究采用CCK8法篩選出了對肝臟細胞無明顯損傷作用但又可對細胞活性產(chǎn)生一定影響的乙醇濃度作為亞致死量,通過對誘導前后的細胞進行尼羅紅染色,發(fā)現(xiàn)誘導后的細胞內(nèi)脂肪的蓄積率明顯高于正常的肝臟細胞,傳代后的細胞生長狀況良好,證明建模成功并且模型比較穩(wěn)定[9-10]。
本實驗通過CCK8篩選甘草甜素的作用濃度,結(jié)果發(fā)現(xiàn)當作用濃度為1.2 mmol/L時,甘草甜素對細胞的促生長作用最大,因此選取1.2 mmol/L作為最佳濃度。而在本實驗中,亞致死量的乙醇長期作用于肝臟細胞,導致肝細胞受損,細胞內(nèi)的轉(zhuǎn)氨酶泄露至培養(yǎng)基中,因此,本實驗通過檢測各組細胞上清液中ALT和AST泄漏量來反映肝臟功能[11-12]。結(jié)果發(fā)現(xiàn),甘草甜素作用細胞后ALT和AST泄漏量明顯降低(P<0.05),提示甘草甜素一定程度上能夠減輕AFL的肝臟損傷。乙醇能夠影響肝臟內(nèi)TG的清除導致肝臟內(nèi)大量TG蓄積進而形成脂肪肝[13]。本實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn)經(jīng)甘草甜素治療后TG明顯降低(P<0.01),與動物實驗結(jié)果基本一致[14]。同時本實驗通過FCM檢測了甘草甜素治療后細胞的周期情況,發(fā)現(xiàn)細胞大部分阻滯在G0/G1期,提示甘草甜素對細胞周期影響不大,但是能夠通過降低細胞凋亡率來抑制細胞的增殖。
PPAR-γ是核受體超家族成員中的一員,有研究發(fā)現(xiàn)PPAR-γ在肝臟、腎臟等多種高代謝組織中存在表達,可以通過氧化脂肪酸從而清除肝臟內(nèi)的TG,減少體內(nèi)TG的蓄積[15]。SREBPs是一種重要的脂質(zhì)穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)因子,當細胞內(nèi)固醇減少時,SREBPs與SCAP結(jié)合由內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜轉(zhuǎn)移至高爾基體,調(diào)控脂質(zhì)代謝基因的表達,導致體內(nèi)脂質(zhì)的沉積[16]。本研究發(fā)現(xiàn),乙醇誘導后的AFL肝細胞PPAR-γ、SREBP-1、SCAP mRNA的表達明顯升高(P<0.01),經(jīng)甘草甜素治療后3種mRNA的表達出現(xiàn)了明顯下調(diào)(P<0.05),同時各組細胞中3種蛋白的表達與mRNA表達一致。結(jié)果提示乙醇可以通過調(diào)控PPAR-γ、SREBP-1、SCAP表達促進脂質(zhì)的產(chǎn)生,與YOU等[17]的研究結(jié)果一致;甘草甜素可能通過下調(diào)PPAR-γ、SREBP-1、SCAP表達,從而抑制脂質(zhì)的產(chǎn)生,但是具體的機制還需進一步的研究。
[1]李國春,黃新武,尹加珍,等.趕黃草提取物對大鼠酒精性脂肪肝的影響[J].中國臨床藥理學雜志,2016,32(2):163-165.
[2]PARK J H,LEE D H,PARK M S,et al.CCR5 deficiency exacerbates alcoholic fatty liver disease through pro-inflammatory cytokines and chemokines-induced hepatic inflammation[J].J Gastroenterol Hepatol,2016,32(6):1258-1264.
[3]王宏英,陳林.甘草甜素抑制小鼠慢性支氣管炎模型肺組織中炎性細胞因子表達的作用機制[J].中國實驗診斷學,2016,20(3):372-374.
[4]李永偉,盧建溪,楊宏志,等.甘草甜素對HepG2.2.15細胞株CCL20的影響[J].中國實驗方劑學雜志,2011,17(1):148-150.
[5]劉協(xié),顧呈華,胡啟之,等.甘草甜素脂質(zhì)
體對小鼠急性酒精性肝損傷的保護作用[J].中國臨床康復,2004,8(36):8260-8261.
[6]張建,唐紅敏,劉厚鈺,等.甘草甜素多相脂質(zhì)體對非酒精性脂肪肝肝功能的影響[J].肝臟,2003,8(3):30-32.
[7]馬中春.甘草甜素對四氯化碳誘發(fā)大鼠肝臟損傷的作用及其機制[J].毒理學雜志,2005,19(3):250-251.
[8]李龍輝,李龍江,湯為學,等.甘利欣作用前后體外酒精性脂肪肝細胞模型甘油三酯水平變化及其可能作用機制[J].重慶醫(yī)科大學學報,2010,35(2):179-182.
[9]張紅鋒,楊慧萍,王耀發(fā).乙醇和軟脂酸誘導的脂肪肝離體細胞模型[J].華東師范大學學報(自然科學版),2002(4):88-95.
[10]阮雪青.體外酒精性脂肪肝模型的建立和評價[D].杭州:浙江大學,2010.
[11]SHI D,ZHAN X,YU X,et al.Inhibiting CB1 receptors improves lipogenesis in an in vitro non-alcoholic fatty liver disease model[J].Lipids Health Dis,2014,13(1):173.
[12]KAPIL S,DUSEJA A,SHARMA B K,et al.Genetic polymorphism in CD14 gene,a co-receptor of TLR4 associated with non-alcoholic fatty liver disease[J].World J Gastroenterol,2016,22(42):9346-9355.
[13]BOONVISUT S,NAKAYAMA K,MAKISHIMA S,et al.Replication analysis of genetic association of the NCAN-CILP2 region with plasma lipid levels and non-alcoholic fatty liver disease in Asian and Pacific ethnic groups[J].Lipids Health Dis,2016,15(1):8.
[14]DA SILVA R P,KELLY K B,LEONARD K A,et al.Creatine reduces hepatic TG accumulation in hepatocytes by stimulating fatty acid oxidation[J].Biochim Biophys Acta,2014,1841(11):1639-1646.
[15]TOMIZAWA M,KAWANABE Y,SHINOZAKI F,et al.Elevated levels of alanine transaminase and triglycerides within normal limits are associated with fatty liver[J].Exp Ther Med,2014,8(3):759-762.
[16]SHI H,LUO J,ZHU J,et al.PPAR γ regulates genes involved in triacylglycerol synthesis and secretion in mammary gland epithelial cells of dairy goats[J].PPAR Res,2013,2013(6):310948.
[17]YOU M,JOGASURIA A,TAYLOR C,et al.Sirtuin 1 signaling and alcoholic fatty liver disease[J].Hepatobiliary Surg Nutr,2015,4(2):88-100.