洪鴻翔,朱 海,劉雅克,楊曉佑,吳雪飛,崔志明△,劉 璠
(1.江蘇省南通市第一人民醫(yī)院骨科 226001;2.南通大學(xué)附屬醫(yī)院骨科,江蘇南通 226001)
隨著金屬對金屬(metal-on-metal,MoM)髖關(guān)節(jié)置換術(shù)的普及,其不良反應(yīng)漸漸引起人們的高度重視,如局部軟組織反應(yīng)及炎性假瘤等[1]。由鈷鉻合金制成的MoM髖關(guān)節(jié)置換植入物在體內(nèi)會釋放大量的金屬納米粒子及金屬離子[2]。鈷納米粒子(cobalt nanoparticles,CoNPs)是植入物降解產(chǎn)物的重要組成部分[3]。因此,鈷(CO)可能是導(dǎo)致MoM髖關(guān)節(jié)置換術(shù)中不良反應(yīng)的主要原因。體外實驗已經(jīng)證明,CO2+可以導(dǎo)致氧化損傷、DNA損傷、炎癥反應(yīng)及有遺傳毒性作用[4]。有報道稱在體外實驗中碳化鎢-鈷(WC-CO)微粒可以誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[5]。通過測定谷胱甘肽(GSH)水平的變化,可以發(fā)現(xiàn)與微粒相比,WC-CoNPs可以產(chǎn)生更高水平的活性氧(ROS),從而產(chǎn)生更強烈的氧化應(yīng)激反應(yīng)。進一步研究表明,在JB6細(xì)胞上,過氧化氫酶可以消除大量ROS,抑制WC-CoNPs誘導(dǎo)的線粒體膜通透性損傷[6]。抗壞血酸(ascorbic acid,AA)是一種常用的抗氧化劑,現(xiàn)已證實增加生理水平的AA可以抑制細(xì)胞內(nèi)ROS水平[7]。本實驗旨在探討CoNPs和Co2+對成纖維細(xì)胞的毒性作用機制,并使用AA降低CoNPs和Co2+所致的毒性反應(yīng)。
1.1材料 Balb/3T3細(xì)胞購自中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院。CoNPs,氯化鈷(COC1-2)和AA購于Sigma公司。抗體:細(xì)胞凋亡誘導(dǎo)因子(AIF),Bcl-2、 Bax、Caspase 3、血紅素加氧酶1(HO-1)、β-actin購于美國Cell Signaling Technology公司,兔抗及鼠抗購自Sigma公司。Trizol總RNA提取試劑、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR試劑盒購于Invitrogen公司,PCR引物購自Sigma公司,EDTA-Na2購于Life Sciences公司,細(xì)胞色素C試劑盒購自上海研謹(jǐn)生物科技公司,GSH檢測試劑盒來自碧云天,CCK8試劑盒來自日本同仁化學(xué)研究所。
1.2方法 將Balb/3T3細(xì)胞平均適量接種到96孔板中培養(yǎng),每孔約100 μL。分別加入100 μL含有不同濃度藥液的培養(yǎng)基,分別處理12、24、48 h。加入CCK8試劑,酶標(biāo)儀450 nm波長測量。將細(xì)胞平均適量接種到6孔板中,分為如下6個組:對照組、Co2+組、Co2++AA組、CoNPs組、CoNPs+AA組、AA組。其中,加入H2O2的對照組為陽性對照組。首先用50 μmol/L AA提前預(yù)處理1 h,然后用50 μmol/L CoNPs和50 μmol/L Co2+分別再處理24 h。分別用CCK8檢測CoNPs、Co2+誘導(dǎo)及AA處理后的細(xì)胞毒性,使用細(xì)胞色素C試劑盒檢測從線粒體釋放到細(xì)胞質(zhì)中細(xì)胞色素C的水平。采用熒光染色技術(shù)檢測線粒體中ROS生成,Western blot技術(shù)檢測相關(guān)蛋白表達(dá),實時定量PCR技術(shù)檢測mRNA水平的變化。所有檢測重復(fù)3次。

A、B、C:細(xì)胞分別被不同濃度Co2+和CoNPs處理4、24、48 h;D:各組細(xì)胞活性比較;1:對照組,2:CO2+組,3:CO2++AA組,4:CoNP組,5:CoNPs+AA組,6:AA組;a:P<0.05,與CoNPS組比較;b:P<0.05,與對照組比較
圖1 AA對Co2+和CoNPs處理過的Balb/3T3細(xì)胞的作用

2.1AA對細(xì)胞的保護作用 CoNPs和Co2+對細(xì)胞的毒性作用隨時間延長而增加,隨劑量加大而增加,具有時間和劑量依賴性,見圖1A、B、C。CoNPs誘導(dǎo)的毒性作用明顯強于Co2+。CoNPs和Co2+處理24 h后,其IC50值約為50 μmol/L。與CoNPs組比較,使用AA預(yù)處理可以明顯提高細(xì)胞的存活率,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);而AA預(yù)處理對Co2+處理的細(xì)胞存活率無明顯影響(圖1D)。
2.2AA對細(xì)胞內(nèi)ROS及HO-1生成的影響 結(jié)果顯示,CoNPs處理24 h可以明顯增加ROS的表達(dá)(P<0.05);而使用AA預(yù)處理可以明顯減少CoNPs誘導(dǎo)的ROS生成(P<0.05);Co2+可以輕微地增加ROS的水平,AA只輕微降低Co2+誘導(dǎo)的ROS水平(圖2A)。CoNPs可以明顯誘導(dǎo)HO-1的表達(dá),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);使用AA預(yù)處理,可以明顯減少由CoNPs誘導(dǎo)的HO-1的表達(dá)(P<0.05);而Co2+對HO-1表達(dá)無影響,見圖2B。

A:AA對細(xì)胞內(nèi)ROS的影響;1:對照組;2:CO2+組;3:CO2++AA組;4:CONPS組;5:CONPS+AA組;6:H2O2處理陽性對照組;7:AA組;B:AA對細(xì)胞內(nèi)HO-1的影響,a:P<0.05,與對照組比較,b:P<0.05,與CoNPs組比較
圖2 AA對細(xì)胞內(nèi)ROS及HO-1生成的影響
2.3AA對細(xì)胞內(nèi)GSH生成及細(xì)胞色素C釋放的影響 CoNPs處理可以明顯減少GSH水平;AA預(yù)處理可以使CoNPs組GSH降低減弱(P<0.05);而Co2+對GSH幾乎無影響(圖3A)。CoNPs和Co2+都可誘導(dǎo)細(xì)胞色素C從線粒體釋放進入細(xì)胞質(zhì)中(P<0.05);AA預(yù)處理可以抑制CoNPs誘導(dǎo)的細(xì)胞色素C的釋放(P<0.05);而AA對Co2+無明顯作用,見圖3B。

A:AA對細(xì)胞內(nèi)GSH的影響;B:AA對細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞色素C的影響;1:對照組;2:CO2+組;3:CO2++AA組;4:CONPS組;5:CONPS+AA組;6:AA組;a:P<0.05,與對照組比較;b:P<0.05,與CoNPs組比較
圖3 AA對細(xì)胞內(nèi)GSH生成及細(xì)胞色素C釋放的影響

圖4 Westem blot檢測細(xì)胞內(nèi)AIF、Bax等蛋白表達(dá)
2.4AA對細(xì)胞內(nèi)Bax、Bcl-2及AIF、Caspases 3蛋白表達(dá)的影響 CoNPs和Co2+可明顯抑制抗凋亡因子Bcl-2表達(dá),其中CoNPs的抑制作用更明顯;使用AA預(yù)處理可抑制CoNPs對Bcl-2作用,但對Co2+的抑制作用無明顯影響。CoNPs和Co2+明顯誘導(dǎo)促凋亡因子Bax表達(dá),且CoNPs的誘導(dǎo)作用更明顯;使用AA預(yù)處理后可降低CoNPs的誘導(dǎo)作用,但對Co2+無明顯影響。CoNPs和Co2+可明顯激活促凋亡Caspase家族表達(dá),使其高表達(dá),CoNPs的誘導(dǎo)作用更明顯;使用AA預(yù)處理可降低CoNPs的誘導(dǎo)作用,但是對Co2+的誘導(dǎo)作用無明顯影響。CoNPs可明顯誘導(dǎo)AIF表達(dá);使用AA預(yù)處理可以明顯減少AIF的表達(dá);Co2+對AIF的表達(dá)無明顯的影響,見圖4。
隨著MoM關(guān)節(jié)置換術(shù)應(yīng)用越來越多,由假體釋放的金屬納米粒子已成為潛在的健康威脅[1]。有報道稱MoM髖關(guān)節(jié)假體會導(dǎo)致患者不明原因的疼痛[8],血液中金屬離子濃度超標(biāo)以及早期二次翻修率增高[9]。對假體組織檢測發(fā)現(xiàn),金屬磨損物大多以CoCr納米粒子形式存在,且Co可能是不良反應(yīng)的主要原因[10]。
氧化應(yīng)激是納米粒子毒性作用的重要機制之一,且細(xì)胞內(nèi)ROS是評價納米粒子各種毒性作用的常用關(guān)鍵指標(biāo)[11]。GSH是一種重要的抗氧化劑,在保護細(xì)胞對抗凋亡過程中發(fā)揮重要作用,GSH的損耗可以促進細(xì)胞內(nèi)ROS堆積及HO-1表達(dá),導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[12]。HO-1水平是衡量氧化應(yīng)激水平的代表性指標(biāo)[13]。通過熒光染色測量ROS發(fā)現(xiàn),CoNPs使細(xì)胞中自由基表達(dá)更高,GSH水平下降,HO-1表達(dá)增加,導(dǎo)致更嚴(yán)重的氧化應(yīng)激反應(yīng)。抗氧化劑AA是GSH的前體,可以抑制ROS生成,可部分緩解CoNPs誘導(dǎo)的細(xì)胞各項指標(biāo)變化,減少細(xì)胞死亡,然而AA對Co2+引起的細(xì)胞指標(biāo)變化無作用。這表明由CoNPs誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡和ROS生成有關(guān),AA能減少CoNPs誘導(dǎo)的死亡可能是通過減少了ROS的生成,而Co2+無明顯誘導(dǎo)ROS生成的作用。
有研究測量暴露于CO2+細(xì)胞胞內(nèi)AA水平,結(jié)果顯示其水平降低,且在人巨噬細(xì)胞暴露于CoNPs時,在細(xì)胞中補充或維持AA水平能明顯提高細(xì)胞活性[7]。據(jù)報道,當(dāng)金屬離子暴露于人支氣管上皮細(xì)胞(HAEo)中,額外補充生理水平的AA(100 μmol/L)可以恢復(fù)細(xì)胞內(nèi)AA鹽水平,轉(zhuǎn)化為類似于初始?xì)夤芑績?nèi)皮細(xì)胞,也能在內(nèi)皮細(xì)胞中預(yù)防CO2+毒性[14]。AA鹽可抑制氧化應(yīng)激相關(guān)的HO-1生成,同時降低涉及凋亡的Caspase家族活性[15]。這更進一步表明了AA的保護作用與ROS生成減少有密切的聯(lián)系。
已有研究表明CoNPs和Co2+都可以誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[16],但其具體分子機制仍然不是很明確。哺乳動物細(xì)胞可以通過兩條信號級聯(lián)反應(yīng)實現(xiàn)凋亡:內(nèi)源性途徑和外源性途徑。Caspase屬于半胱氨酸蛋白酶家族,在細(xì)胞凋亡、壞死和炎癥中扮演必不可少的角色。本研究中,CoNPs和Co2+都激活了Caspase 3,并且CoNPs的效應(yīng)高于Co2+,這表明CoNPs和Co2+誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡可能通過外源性信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。內(nèi)源性凋亡途徑主要通過氧化應(yīng)激和其他因子損傷線粒體,導(dǎo)致細(xì)胞色素C和AIF從線粒體釋放入細(xì)胞質(zhì)激活內(nèi)源性凋亡途徑[17]。AIF直接靶向于DNA破碎和染色質(zhì)凝結(jié),是Caspase非依賴性凋亡途徑[18],而細(xì)胞色素C以一種Caspase依賴性途徑誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[19]。本研究發(fā)現(xiàn)CoNPs和Co2+都可以誘導(dǎo)細(xì)胞色素C和AIF從線粒體釋放入細(xì)胞質(zhì)。結(jié)果表明CoNPs和Co2+激活了細(xì)胞內(nèi)源性凋亡途徑。因此,CoNPs和Co2+可以同時激活內(nèi)源性和外源性凋亡途徑。
線粒體介導(dǎo)的內(nèi)源性凋亡途徑受Bcl-2家族調(diào)控。Bcl-2家族蛋白通過調(diào)控促凋亡蛋白和抗凋亡蛋白之間的平衡調(diào)控細(xì)胞生存或死亡[20]。在本研究中,CoNPs和Co2+都可以增加促凋亡因子Bax生成,減少抗凋亡因子Bcl-2生成,但是CoNPs的作用強于Co2+。
與Co2+相比,CoNPs導(dǎo)致更大幅度的GSH減少、HO-1增加和ROS高表達(dá),而Co2+基本未改變這些指標(biāo)。這表明Co2+并未導(dǎo)致高濃度的ROS生成。盡管以往研究表明Co2+也會產(chǎn)生ROS,這個矛盾的結(jié)論可能是因為Co2+濃度不同、時間點不同及CO鹽的純度不同而造成[7]。在實驗中,盡管AA可以部分減少CoNPs的細(xì)胞毒性,但是它不能完全逆轉(zhuǎn)CoNPs誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡,提示CoNPs可能也通過其他非依賴ROS的凋亡途徑誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,這將有待進一步研究。
[1]GILL H S,GRAMMATOPOULOS G,ADSHEAD S A,et al.Molecular and immune toxicity of CoCr nanoparticles in MoM hip arthroplasty[J].Trends Mol Med,2012,18(3):145-155.
[2]XIA Z D,KWON Y M,MEHMOOD S,et al.Characterization of metal-wear nanoparticles in pseudotumor following metal-on-metal hip resurfacing[J].Nanomedicine,2011,7(6):674-681.
[3]MILOSEV I,REMSKAR M.In vivo production of nanosized metal wear debris formed by tribochemical reaction as confirmed by high-resolution TEM and XPS analyses[J].J Biomed Mater Res A,2009,91(4):1100-1110.
[4]MONTEILLER C,TRAN L,MACNEE W,et al.The pro-inflammatory effects of low-toxicity low-solubility particles,nanoparticles and fine particles,on epithelial cells in vitro:the role of surface area[J].Occup Environ Med,2007,64(9):609-615.
[5]LOMBAERT N,DE BOECK M,DECORDIER I,et al.Evaluation of the apoptogenic potential of hard metal dust(WC-Co),Tungsten carbide and metallic Cobalt[J].Toxicol Lett,2004,154(1/2):23-34.
[6]ZHAO J,BOWMAN L,MAGAYE R,et al.Apoptosis induced by Tungsten carbide-cobalt nanoparticles in JB6 cells involves ROS Generation through both extrinsic and intrinsic apoptosis pathways[J].Int J Oncol,2013,42(4):1349-1359.
[7] NYGA A,HART A,TETLEY T D.Importance of the HIF pathway in cobalt nanoparticle-induced cytotoxicity and inflammation in human macrophages[J].Nanotoxicology,2015,9(7):1-13.
[8]CAMPBELL P,SHIMMIN A,WALTER L,et al.Metal sensitivity as a cause of groin pain in metal-on-metal hip resurfacing[J].J Arthroplasty,2008,23(7):1080-1085.
[9]HUANG D C,TATMAN P,MEHLE S,et al.Cumulative revision rate is higher in Metal-on-Metal THA than Metal-on-Polyethylene THA:analysis of survival in a community registry[J].Clin Orthop Relat Res,2013,471(6):1920-1925.
[10]HART A J,QUINN P D,LALI F,et al.Cobalt from metal-on-metal hip replacements May be the clinically relevant active agent responsible for periprosthetic tissue reactions[J].Acta Biomater,2012,8(10):3865-3873.
[11]NEL A,XIA T,MADLER L,et al.Toxic potential of materials at the nanolevel[J].Science,2006,311(5761):622-627.
[12]PAOLICCHI A,DOMINICI S,PIERI L,et al.Glutathione catabolism as a signaling mechanism[J].Biochem Pharmacol,2002,64(5/6):1027-1035.
[13]KIM H P,WANG X,CHEN Z H,et al.Autophagic proteins regulate cigarette smoke-induced apoptosis:protective role of heme oxygenase-1[J].Autophagy,2008,4(7):887-895.
[14]QIAO H,LI L Y,QU Z C,et al.Cobalt-induced oxidant stress in cultured endothelial cells:prevention by ascorbate in relation to HIF-1alpha[J].Biofactors,2009,35(3):306-313.
[15] WAGNER A E,BOESCH-SAADATMANDI C,BRECKWOLDT D,et al.Ascorbic acid partly antagonizes resveratrol mediated heme oxygenase-1 but not paraoxonase-1 induction in cultured hepatocytes - role of the redox-regulated transcription factor Nrf2[J].BMC Complement Altern Med 2011(11):1-10.
[16]BATTAGLIA V,COMPAGNONE A,BANDINO A A,et al.Cobalt induces oxidative stress in isolated liver mitochondria responsible for permeability transition and intrinsic apoptosis in hepatocyte primary cultures[J].Int J Biochem Cell Biol,2009,41(3):586-594.
[17]CAROPPI P,SINIBALDI F,FIORUCCI L,et al.Apoptosis and human diseases:mitochondrion damage and lethal role of released cytochrome C as proapoptotic protein[J].Curr Med Chem,2009,16(31):4058-4065.
[18]LANDSHAMER S,HOEHN M,BARTH N,et al.Bid-induced release of AIF from mitochondria causes immediate neuronal cell death[J].Cell Death Differ,2008,15(10):1553-1563.
[19]GARLAND J M,RUDIN C.Cytochrome c induces caspase-dependent apoptosis in intact hematopoietic cells and overrides apoptosis suppression mediated by bcl-2,growth factor signaling,MAP-kinase-kinase,and malignant change[J].Blood,1998,92(4):1235-1246.
[20]YANG W,SHI L,CHEN L,et al.Protective effects of perindopril on D-galactose and Aluminum trichloride induced neurotoxicity via the apoptosis of mitochondria-mediated intrinsic pathway in the hippocampus of mice[J].Brain Res Bull,2014,109(1):46-53.