鄭斌,吳齊全,周克文,王鋼,任雨,祁洪剛,朱偉智,翁國斌
(寧波市鄞州第二醫院 泌尿外科,浙江 寧波 315100)
轉錄因子SOX7對前列腺癌PC-3細胞生物學活性的影響及其機制
鄭斌,吳齊全,周克文,王鋼,任雨,祁洪剛,朱偉智,翁國斌
(寧波市鄞州第二醫院 泌尿外科,浙江 寧波 315100)
目的:探討轉錄因子SOX7對前列腺癌PC-3細胞增殖、細胞周期、遷移和侵襲能力的影響及其機制。方法:采用脂質體法轉染高表達SOX7重組質粒(pCDNA3.1-SOX7),以轉染空質粒(Vector)作為對照,檢測SOX7對PC-3細胞株增殖、細胞周期、遷移及侵襲的影響,并用Western blot法檢測相關蛋白表達水平。結果:pCDNA3.1-SOX7顯著抑制PC-3細胞增殖能力,并且誘導細胞周期發生G1期阻滯,同時,使Cylcin D1、E表達量明顯下調。此外,pCDNA3.1-SOX7轉染后,PC-3細胞遷移距離顯著減少,穿透基質膠的細胞數量也顯著降低,并且伴隨著間質表型標記物MMP-2、MMP-9和N-cadherin蛋白表達減少,上皮標記物E-cadherin蛋白表達增加。結論:SOX7抑制前列腺癌PC-3細胞的增殖、周期、遷移及侵襲能力,其機制可能與調控這些細胞行為的相關蛋白表達有關。
SOX7;前列腺癌;增殖;遷移;侵襲
Abstract: Objective:To investigate the effects and mechanisms of transcription factor SOX7 on PC-3 cells proliferation, cell cycle, cell migration and invasion.Methods:PC-3 cells were transfected with highexpressed SOX7 recombinant plasmid (pCDNA3.1-SOX7) and further detected the changes of cell proliferation,cell cycle, migration, invasion, and related protein expressions.Results:After transfection with pCDNA3.1-SOX7, significant inhibition effects was shown in the PC-3 cell proliferation and G1/S cell cycle arrest, which were accompanied with decreased expressions of cyclin D1 and E. Furthermore, transfection of pCDNA3.1-SOX7 markedly decreased the cell migration distances and invasion capacity, with a reduction of the mesenchymal markers (MMP-2, MMP-9 and N-cadherin), however, the epithelial marker E-cadherin was increased.Conclusion:SOX7 inhibits PC-3 cell proliferation, cell cycle, migration and invasion through regulation of its related protein expressions.
Key words:SOX7; prostate cancer; proliferation; migration; invasion
前列腺癌為西方男性人群最常見的惡性腫瘤之一,近年來在我國的發病率與病死率呈逐年上升趨勢[1-2]。臨床上一般采取手術切除和放射療法為主,然而腫瘤復發與轉移問題已成為目前治療的難點。上皮間質轉化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)過程是腫瘤侵襲和轉移的關鍵環節。在此過程中,上皮細胞表型轉化為成纖維細胞的間質表型,上皮細胞間緊密連接相關蛋白表達下調,細胞外基質增多,抗凋亡能力增強,從而促進細胞遷移與侵襲[3]。SOX7作為轉錄調控因子SOX家族成員,特異性識別并結合靶基因5’-(A/T)(A/T)CAA(A/T)G-3’序列,影響基因轉錄水平,在調控胚胎發育過程中起重要作用[4]。近年研究表明,SOX7在腫瘤的發生發展過程中扮演重要角色[5-6]。SOX7在不同組織或細胞中具有表達差異性,在食管癌、胃癌以及胰腺癌中呈高表達狀態,而在乳腺癌、前列腺癌、肺癌、腎癌和結直腸癌中呈現低表達[7-11],在HeLa、HL60、S3、Raji、SW480、K562、MOLT-4、A549細胞株中呈不表達或低表達狀態[7]。本課題組前期研究發現,相對于正常前列腺組織,SOX7在前列腺癌組織中呈低表達狀態,并且與Gleason評分密切相關[12]。預實驗結果表明,前列腺癌細胞株PC-3、DU145的SOX7表達量顯著低于前列腺正常細胞株RWPE-1。為進一步研究SOX7對前列腺癌細胞生物學活性的影響及其機制,本研究用攜帶人過表達SOX7基因的重組載體(pCDNA3.1-SOX7)轉染前列腺癌PC-3細胞,觀察SOX7基因對PC-3細胞體外增殖、周期、侵襲及遷移能力的影響。
1.1 材料 人前列腺癌PC-3細胞株購自中國科學院上海細胞研究所。RMPI 1640無血清培養基、胎牛血清均購自美國Gbico公司;細胞周期蛋白E(Cyclin E)、細胞周期蛋白依賴性激酶2(cyclin dependent kinase 2,CDK2)、CDK4、CDK6、E-鈣黏附蛋白(E-cadherin)、N-鈣黏附蛋白(N-cadherin)鼠抗人單克隆抗體以及細胞周期蛋白D1(Cyclin D1)、GAPDH兔抗人單克隆抗體購自美國Cell Signaling Technology公司;基質金屬蛋白酶2(matrix metalloproteinase-2,MMP-2)、MMP-9、SOX7、波形蛋白(vimentin)、纖維連接蛋白(fibronectin)兔抗人單克隆抗體購自英國Abcam公司;羊抗小鼠IgG二抗與羊抗兔IgG二抗購自武漢博士德生物科技有限公司。
1.2 細胞培養及分組 PC-3細胞接種于含10%胎牛血清的培養基中,37 ℃、5% CO2培養箱中飽和濕度培養。預實驗結果發現,相對于Control未處理組,空質粒pCDNA3.1組(Vector組)對PC-3細胞SOX7蛋白表達量及細胞生物學活性均無顯著性影響,因此,本研究僅比較pCDNA3.1-SOX7重組質粒組(pCDNA3.1-SOX7組)和空質粒pCDNA3.1組(Vector組)相關指標。
1.3 pCDNA3.1-SOX7質粒轉染 根據GeneBank中SOX7基因的CDS堿基序列(NM_031439),委托上海吉瑪生物科技有限公司合成pCDNA3.1-SOX7重組質粒。待PC-3細胞生長至50%~60%融合度時,按1∶3比例將質粒和脂質體混合液加入無血清培養基中進行轉染,待6 h后更換為含10%胎牛血清的普通培養基。轉染24 h后用于其他實驗。
1.4 MTT增殖實驗 60 mm培養皿中細胞匯合到80%~90%后,胰酶消化,完全培養基重懸細胞,計數并調整濃度至2×104個/mL,將稀釋好的細胞懸液加到5塊96孔板中,每孔100 μL,做5個復孔。在37 ℃、5% CO2培養箱中分別培養24、48、72、96 h后,每孔加入10 μL MTT溶液(5 mg/mL),在培養箱中繼續培養4 h后,吸棄上清,加入150 μL DMSO溶液,于490 nm測各孔吸光度值并記錄結果。
1.5 細胞周期檢測 將PC-3細胞以1×105個/mL濃度接種于培養皿中,待細胞融合度達60%左右,脂質體法轉染pCDNA3.1-SOX7質粒,24 h后用胰蛋白酶消化分裝,離心,70%的冰乙醇沉淀后-20 ℃保存24 h,置于流式管中,避光加入400 μL PI/RNase染色液并混勻,30 min后置于流式細胞儀中檢測細胞周期。
1.6 細胞劃痕實驗 將PC-3細胞以2.5×105個/mL濃度接種于6孔板中,待細胞長至融合度大于90%后,用200 μL槍頭小心垂直于6孔板劃一直線,37 ℃PBS清洗2次,24 h后倒置顯微鏡觀察拍照,并計算遷移距離。
1.7 Transwell實驗 PC-3細胞轉染24 h后,消化,無血清培養基調整濃度至4×104個/mL,取200 μL加入鋪有基質膠的Transwell小室上層,下室內加入600 μL含10%胎牛血清的培養基,待培養24 h后,取出上層小室,用消毒棉簽擦除小室背面的基質膠及未穿膜細胞,置于甲醇固定10 min,0.1%結晶紫染色,PBS清洗2次。倒置顯微鏡下拍照,并計算穿膜數量。
1.8 Western blot實驗 待細胞轉染質粒后再培養24 h,37 ℃ PBS清洗2次,RIPA裂解,離心取上清,BCA法測蛋白濃度。電泳后濕轉印至PVDF膜中,5%脫脂奶粉封閉60 min,4 ℃冰箱中孵育一抗過夜,TBST洗滌5次,二抗孵育60 min,顯影曝光。
1.9 統計學處理方法 應用SPSS18.0軟件將數據進行統計學分析。計量資料用 ±s表示,2組樣本均數比較采用t檢驗。P <0.05為差異有統計學意義。
2.1 SOX7抑制前列腺癌PC-3細胞的增殖作用 轉染pCDNA3.1-SOX7高表達質粒于PC-3細胞,經Western blot驗證pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后其SOX7蛋白表達水平顯著上調(見圖1)。MTT實驗顯示,轉染48 h后pCDNA3.1-SOX7組顯著抑制了PC-3細胞的增殖能力(見圖2);流式細胞術檢查發現,pCDNA3.1-SOX7組誘導PC-3細胞發生G1期阻滯(見圖3);Cyclin D1、E表達量下調,CDK2、4、6表達量無顯著性改變(見表1)。
2.2 SOX7抑制前列腺癌細胞的遷移與侵襲作用劃痕實驗檢測結果發現,轉染pCDNA3.1-SOX7重組質粒24 h后,pCDNA3.1-SOX7組PC-3細胞的遷移距離顯著性低于Vector組(見圖4、表2);Transwell試驗結果發現,pCDNA3.1-SOX7組穿透基質膠的細胞數量也顯著性低于Vector組(見圖5、表2);間質表型標記物MMP-2、MMP-9和N-cadherin蛋白表達減少,上皮標記物E-cadherin蛋白表達增加(見表1)。

圖1 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后SOX7蛋白表達水平變化

圖2 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞增殖能力變化
近年來,關于高遷移率族蛋白結構域SOX家族基因與腫瘤發生發展的關系已成為研究熱點。
已有研究發現,SOX7是wnt/β-catenin通路的負性調控因子,發揮著抑癌基因的作用。ZHAO等[13]發現,轉染SOX7質粒后,細胞增殖受抑制,wnt/β-catenin轉錄水平降低,同時Cyclin D1和c-Myc蛋白表達下調,但轉染缺失HMG-box結構域SOX7突變質粒后,并不能引起上述現象,因此認為,SOX7通過其本身的HMG-box結構域結合β-catenin并抑制其活性,從而下調β-catenin介導的增殖活性,扮演著抑癌基因的作用。此外,在人子宮內膜癌、卵巢癌、肝癌和乳腺癌的研究[8,14-17]中均有類似的報道。
細胞周期變化與細胞周期蛋白改變有關。其中Cyclin D/CDK4和Cyclin E/CDK2復合物促進細胞周期G1/S期的轉換,Cyclin A/CDK2復合物調控G1/S和G2/M期的轉換,而Cyclin B/CDK2復合物調控G2晚期進入有絲分裂期。據報道[18],SOX7通過調控wnt/β-catenin通路活性,從而控制Cyclin D1和c-myc的表達,調控細胞增殖過程。本研究通過流式細胞術檢測細胞周期,結果發現,SOX7抑制前列腺癌細胞的增殖能力,并且誘導細胞發生G1期阻滯,伴隨著Cyclin D1、E的顯著性下調,而CDK2與CDK4未見明顯改變,由此可見,SOX7抑制的CylcinD1/CDK4、Cyclin E/CDK2復合物水平下調與細胞周期結果一致。因此,我們認為SOX7通過抑制Cyclin D1、E表達量,從而誘導細胞周期發生G1期阻滯,抑制細胞增殖。

圖3 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞周期變化
SOX7抑制前列腺癌的轉移過程可能與抑制腫瘤血管生成及EMT發生有關。有研究報道,在斑馬魚發育過程中,敲除SOX7與SOX18表達導致血管功能缺失[19]。新近研究發現,SOX7聯合SOX17反饋調節于血管內皮生長因子信號,從而調控血管功能[20]。另外,EMT與惡性腫瘤的轉移與侵襲密切相關[21]。CUI等[22]在胃癌的研究中也發現,SOX7水平與細胞浸潤程度、淋巴結轉移、TNM分期均具有相關性,認為SOX7在胃癌轉移與浸潤過程中扮演重要角色。ZHONG等[23]在研究SOX7與前列腺癌患者生存率的相關性時發現,SOX7在血清前列腺特異性抗原水平小于4 ng/mL的前列腺癌患者中有較高的表達量,并且在發生轉移的患者中SOX7表達量顯著性低于未發生轉移的患者,因此認為,SOX7蛋白表達與腫瘤轉移呈負相關。本課題組前期研究也發現了類似的現象。SOX7在前列腺癌組織中呈現低表達狀態,而Gleason<7的前列腺癌組織表達量大于Gleason≥7,說明SOX7表達量與前列腺癌浸潤程度有關[12]。此外,我們發現高表達SOX7重組質粒轉染后顯著性抑制了細胞遷移與侵襲過程,伴隨著間質表型標記物MMP-2、MMP-9和N-cadherin蛋白的減少和上皮標記物E-cadherin蛋白增加,這也說明SOX7轉染后對于前列腺癌EMT過程具有抑制作用。
綜上所述,SOX7抑制前列腺癌PC-3細胞的增殖、周期、遷移及侵襲能力,其機制可能與調控這些細胞行為的相關蛋白表達有關。

表1 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞周期相關蛋白和遷移/侵襲相關蛋白表達變化(n=3, ±s)

圖4 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞遷移能力變化(×40)

圖5 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞侵襲能力變化(×100)

表2 pCDNA3.1-SOX7重組質粒轉染后PC-3細胞遷移及侵襲能力的變化(n=3, ±s)
[1] CHEN W, ZHENG R, BAADE P D, et al. Cancer statistics in China, 2015[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66(2): 115-132.
[2] TORRE L A, SAUER A M, CHEN M S JR, et al. Cancer statistics for Asian Americans, Native Hawaiians, and Pacific Islanders, 2016: Converging incidence in males and females[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66(3): 182-202.
[3] KALLURI R. EMT: when epithelial cells decide to become mesenchymal-like cells[J]. J Clin Invest, 2009, 119(6):1417-1419.
[4] LIOUBINSKI O, MULLER M, WEGNER M, et al. Expression of Sox transcription factors in the developing mouse pancreas[J]. Dev Dyn, 2003, 227(3): 402-408.
[5] STOVALL D B, CAO P, SUI G. SOX7: from a develop-mental regulator to an emerging tumor suppressor[J]. Histol Histopathol, 2014, 29(4): 439-445.
[6] WAT J J, WAT M J. Sox7 in vascular development: review,insights and potential mechanisms[J]. Int J Dev Biol, 2014,58(1): 1-8.
[7] KATOH M. Expression of human SOX7 in normal tissues and tumors[J]. Int J Mol Med, 2002, 9(4): 363-368.
[8] STOVALL D B, WAN M, MILLER L D, et al. The regulation of SOX7 and its tumor suppressive role in breast cancer[J]. Am J Pathol, 2013, 183(5): 1645-1653.
[9] LI B, GE Z, SONG S, et al. Decreased expression of SOX7 is correlated with poor prognosis in lung adenocarcinoma patients[J]. Pathol Oncol Res, 2012, 18(4): 1039-1045.
[10] GUO L, ZHONG D, LAU S, et al. Sox7 is an independent checkpoint for beta-catenin function in prostate and colon epithelial cells[J]. Mol Cancer Res, 2008, 6(9): 1421-1430.
[11] MA Y, SHE X G, MING Y Z, et al. MiR-24 promotes the proliferation and invasion of HCC cells by targeting SOX7[J]. Tumour Biol, 2014, 35(11): 10731-10736.
[12] 陳特磊, 王鋼, 朱偉智. S O X 7基因在前列腺癌組織中的表達及其與臨床特征的關系[J]. 現代實用醫學, 2 0 1 3, 2 5(1 1):1 2 4 7-1 2 4 8.
[13] ZHAO T, YANG H, TIAN Y, et al. SOX7 is associated with the suppression of human glioma by HMG-box dependent regulation of Wnt/beta-catenin signaling[J]. Cancer Lett,2016, 375(1): 100-107.
[14] LIU H, YAN Z Q, LI B, et al. Reduced expression of SOX7 in ovarian cancer: a novel tumor suppressor through the Wnt/beta-catenin signaling pathway[J]. J Ovarian Res, 2014, 7(87): 1-9.
[15] WU G G, LI W H, HE W G, et al. Mir-184 post-transcriptionally regulates SOX7 expression and promotes cell proliferation in human hepatocellular carcinoma[J]. PLoS One,2014, 9(2): e88796.
[16] WANG C, GUO Y, WANG J, et al. The suppressive role of SOX7 in hepatocarcinogenesis[J]. PLoS One, 2014, 9(5):e97433.
[17] CHAN D W, MAK C S, LEUNG T H, et al. Down-regulation of Sox7 is associated with aberrant activation of Wnt/b-catenin signaling in endometrial cancer[J]. Oncotarget,2012, 3(12): 1546-1556.
[18] 孫余省, 朱冠保, 金勁激, 等. 查爾酮類似物A 5 9促人結腸癌細胞凋亡及其機制[J]. 溫州醫科大學學報, 2 0 1 5, 4 5(6):4 2 1-4 2 9.
[19] CERMENATI S, MOLERI S, CIMBRO S, et al. Sox18 and Sox7 play redundant roles in vascular development[J]. Blood,2008, 111(5): 2657-2666.
[20] KIM K, KIM I K, YANG J M, et al. SoxF transcription factors are positive feedback regulators of VEGF signaling[J]. Circ Res, 2016, 119(7): 839-852.
[21] OSANTO S, VAN POPPEL H. Emerging novel therapies for advanced prostate cancer[J]. Ther Adv Urol, 2012, 4(1):3-12.
[22] CUI J, XI H, CAI A, et al. Decreased expression of Sox7 correlates with the upregulation of the Wnt/beta-catenin signaling pathway and the poor survival of gastric cancer patients[J]. Int J Mol Med, 2014, 34(1): 197-204.
[23] ZHONG W D, QIN G Q, DAI Q S, et al. SOXs in human prostate cancer: implication as progression and prognosis factors[J]. BMC Cancer, 2012, 12(248): 1-11.
(本文編輯:丁敏嬌)
Mechanisms and effects of transcription factor SOX7 on the biological activity of the prostate cancer PC- 3 cells
ZHENG Bin, WU Qiquan, ZHOU Kewen, WANG Gang, REN Yu, QI Honggang, ZHU Weizhi, WENGGuobin. Department of Urologic Surgery, Ningbo Yinzhou No.2 Hospital, Ningbo, 315100
R73-37;R737.25
A
10.3969/j.issn.2095-9400.2017.09.011
2016-12-27
鄞州區科技計劃項目;寧波市科技惠民項目(2017C50 058)。
鄭斌(1982-),男,浙江寧波人,主治醫師,碩士。
翁國斌,主任醫師,教授,Email:ddwgb@aliyun.com。