999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

植物根部內生細菌多樣性及其生防作用研究進展

2017-09-30 19:27:54曹焜王曉楠孫宇峰李振偉潘冬梅趙越
農業與技術 2017年17期

曹焜+王曉楠+孫宇峰+李振偉+潘冬梅+趙越

摘 要:植物內生細菌廣泛存在于植物的根、莖、葉、花、果實、種子等組織器官中,研究植物內生細菌多樣性在物種資源開發與利用等方面具有重要意義,近年來內生細菌的作用逐漸受到科研工作者的重視。本文針對植物根部內生細菌多樣性、定殖過程及其生防作用等幾方面進行綜述,旨在深入了解植物根部內生細菌資源,為植物內生菌資源開發利用提供參考。

關鍵詞:根;內生細菌;多樣性;定殖;生防作用

中圖分類號:S182 文獻標識碼:A DOI:10.11974/nyyjs.20170931001

植物內生菌(endophyte)指能夠在健康植物活組織中生存而不引起寄主植物明顯病變的一大類微生物,是一個生態學概念,主要包括細菌、真菌和放線菌[1]。其中,內生細菌(endophytic bacteria)是內生菌的重要組成部分,廣泛存在于植物的根、莖、葉、花、果實、種子等組織中[1-3],而根部的內生細菌數量遠超過其他組織。研究發現內生細菌具有固氮、促進植物生長、增強植物抗性、生物防治[4-6]等方面的作用。隨著農業耕作模式的改革、有機食品需求量增大、人們環保意識的增強,化肥農藥減量的同時,生物防治的優勢也不斷突顯出來。目前,王志偉等[7]已從宏觀角度對植物內生菌研究的發展及其意義進行總結分析,也有內生菌多樣性、內生菌生防作用[8,9]等方面的專題報道,而本文更加細化地從植物根部內生細菌多樣性及其生物防治作用2方面進行綜述分析,為深入了解內生細菌和生防微生物提供理論參考

1 植物根部內生細菌多樣性

植物體內存在大量微生物,其中很大一部分為內生細菌。為此,研究內生細菌多樣性不僅可以解析植物內生細菌群落結構、變化規律,還能為功能菌株篩選和鑒定提供理論依據。隨著分子生物學技術發展,很大程度上提高微生物檢測方法的靈敏度,使得多樣性研究成為內生細菌研究的重要組成部分。

內生細菌多樣性不僅表現在寄主植物多樣性上,還體現在內生細菌種類多樣性方面。目前已從水稻[2]、小麥[10]、甜菜[11]等不同植物根組織中發現多種內生細菌,對比發現不同寄主類型和寄主生長環境是影響內生細菌多樣性的2個因素。在甜菜生長的幼苗期、葉叢快速生長期、塊根增長期和糖分積累期時,根部內生細菌的類群數目分別為66 OTUs、109 OTUs、146 OTUs和95 OTUs[11],可見在相同環境下生長的同種植物根部,內生細菌的多樣性也會隨寄主生長階段的變化而變化。

研究植物根部內生細菌多樣性常采用2種方法,分別為培養法和非培養的分子生物學方法。培養法通過選擇不同培養基和培養條件篩選出相應的目的微生物,張瑞杰等[12]通過分離純化法研究香蒲根內生細菌多樣性,發現優勢菌屬是假單胞菌屬(Pseudomonas)和拉恩氏菌屬(Rahnella)。由于培養法僅能獲得環境中1 %~10 %的微生物[13],即培養法會人為降低植物根部內生細菌多樣性。因此,需要結合非培養的分子生物學方法進行研究才能獲得更大的突破。Zhang等[14]用T-RFLP和克隆文庫技術發現α-變形菌和β-變形菌是大豆根部的優勢內生細菌類群,同時也發現一些未知細菌類群。盡管經典的DGGE、T-RFLP和克隆文庫等非培養法能用于分析內生細菌多樣性和相對豐度,但受其分辨率的制約[15],一些微量及痕量內生細菌很難被發現。隨著測序技術的發展,一些高準確性、高通量、高靈敏度的檢測技術被應用在內生細菌多樣性檢測中。Yu等[16]采用LNA-PCR和454高通量測序方法發現假單胞菌屬(Pseudomonas)、慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)和黃桿菌屬(Flavobacterium)是大豆內生細菌的主要成員,同時還發現一些數目較少的不可培養內生細菌,進一步說明大豆根內生細菌多樣性豐富。

2 植物根內生細菌的定殖

許多細菌不僅存在土壤中,也定殖在植物根部,特定的選擇機制使得他們向根際移動并定殖于適宜的植物根部,因此認為根際土壤是植物內生細菌的主要來源[17]。根際土壤中潛在內生菌先吸附在根組織表面[18],通過自然孔口和傷口等多種孔洞進入根部[17],通常定殖于木質部導管和細胞間隙中[18]。科研工作者們通過抗生素標記法、免疫學方法、基因標記法以及同位素示蹤、組織染色等方法檢測內生細菌的定殖過程。其中綠色熒光蛋白(GFP)標記技術以其性能穩定、表達與受體細胞無關、方便檢測等優點被許多研究者所采用[19]。郝慧娟等[19]采用GFP法研究枯草芽孢桿菌BSD-2在黃瓜植株內定殖及傳導過程,認為枯草芽孢桿菌通過占據有利的生態位而阻止病原菌的進入,從而防止病害的發生。明確內生細菌侵染定殖規律對于相關菌劑的開發與應用是至關重要的,同時也能從分子和細胞水平闡述內生細菌與寄主植物間的互作關系。

3 植物根部內生細菌生物防治作用

生物防治就是利用某種生物或其產物抑制有害生物的方法。其中利用有益微生物,通過生物間競爭作用、拮抗作用、寄生作用、溶菌作用及誘導抗性等,來抑制某些病原物的方法是微生物防治。筆者認為微生物防治主要可以分為“菌-病”和“寄主-病”2個方面。

所謂“菌-病”就是指利用有益微生物通過競爭、抗生、寄生、溶菌等作用去抑制或殺死某些病原物的方式。如表1中的芽孢桿菌,不僅能產β-1,3-葡聚糖酶、蛋白酶、幾丁質酶等分解酶去降解病害真菌的細胞壁;同時還能產生嗜鐵素,競爭性抑制病原菌吸收鐵元素,從而達到抑制病原菌生長的目的[20]。隨著研究的深入,Xu等[21]通過反轉錄技術、ptsI載體構建和基因敲除法對蠟樣芽胞桿菌進行研究,發現ptsI基因能促進蠟樣芽胞桿菌(Bacillus cereus strain 0–9)的生物膜形成,增加其在小麥根際的生存和定殖能力,最終促進其對紋枯病菌的抑制作用;同時也證明野生型蠟樣芽胞桿菌0–9是防治小麥紋枯病的理想生防菌。因為Xu等[21]的試驗是在實驗室條件下進行的,所以還需在盆栽或大田條件下對野生型蠟樣芽胞桿菌0–9的生防能力進一步的檢測分析。目前,生防菌通過產生抗菌素、蛋白酶、纖維素酶、嗜鐵素等物質在抑制葡萄霜霉病、梨樹腐爛病、煙草黑脛病等[22]方面取得一定突破。但防效單一、需菌量大、環境依賴強等缺點也制約著微生物防治的發展。endprint

而“寄主-病”是指拮抗微生物誘發植物自身抗病機制從而增強植物的抗病能力。如表1中沙雷氏菌[24],能誘導黃瓜產生系統抗性(induced systemic resistance, ISR)抵抗黃瓜炭疽菌、腐敗病等病害。自從Chester[25]于1933年首次報道誘導植物產生免疫力后,ISR作為植物保護的一種新機制逐漸引起人們重視。到目前為止,已有許多植物免疫誘抗劑方面的報道[26]。

4 展望

利用細菌16s rDNA及一些功能基因作為分子標記對植物根部內生菌多樣性研究取得一定進展。通過對比發現:16S rDNA是一段耐受環境脅迫的保守序列,一般可鑒定到亞屬或屬以上的分類單位。通過對16S rDNA的序列對比分析,基本上可以分析出植物根部內生細菌的豐度。若要進一步分析某個屬內的細菌組成,則需要結合該屬細菌的特異性功能基因[28]。

大量研究發現,不同內生細菌在植物根部的定殖規律各不相同,同時也說明內生細菌在定殖能力、分布位點和定殖數量等方面均有較大差異。也有人將內生細菌與病原菌結合研究,發現他們之間具有很多相似之處,為更加合理利用內生細菌的生防功效提供理論途徑。但上述研究大多集中在內生細菌的定殖過程及后續的傳導途徑部分,尚未對其在寄主體內的傳導機制、增殖的影響因素及防病機理等部分做深入研究。

與其他土壤微生物相比,內生細菌長期生活在植物體內,使得其具有更多的生態優勢和適應能力[29]。但內生細菌的生物防治過程十分復雜,受病害類型、自然環境、植物種類等多種因素影響。目前,關于生防菌制劑防效差、用量大、用法復雜等問題大量出現。因此,需要在內生細菌定殖、生防能力評價、與寄主關系等方面進行研究;在篩選生防菌時,應當以多種病原菌作為篩選條件,篩選出高效、穩定、易推廣的菌株,并將多種菌劑合理的復配使用,來提高內生細菌的綜合防效;同時還應結合盆栽及田間試驗進行驗證,為生防微生物制劑的開發與推廣奠定基礎。

參考文獻

[1]Hallmann J,Quadt-Hallmann A,Mahaffee W F,et al. Bacterial endophytes in agricultural crops[J].Canadian Journal of Microbiology,1997,43(10):895-914.

[2]Sun L,Qiu F,Zhang X,et al. Endophytic bacterial diversity in rice (Oryza sativa L.) roots estimated by 16S rDNA sequence analysis[J].Microbial ecology,2008,55(3):415-424.

[3]Romero F M,Marina M,Pieckenstain F L. The communities of tomato (Solanum lycopersicum L.) leaf endophytic bacteria,analyzed by 16S-ribosomal RNA gene pyrosequencing[J].FEMS microbiology letters,2014,351(2):187-194.

[4]Kandel S L,Herschberger N,Kim S H,et al. Diazotrophic endophytes of poplar and willow for growth promotion of rice plants in nitrogen-limited conditions[J].Crop Science,2015,55(4):1765-1772.

[5]Ramamoorthy V,Viswanathan R,Raguchander T,et al. Induction of systemic resistance by plant growth promoting rhizobacteria in crop plants against pests and diseases[J].Crop protection,2001,20(1):1-11.

[6]Rangeshwaran R,Wasnikar A R,Prasad R D,et al. Isolation of endophytic bacteria for biological control of wilt pathogens[J].Journal of biological control,2002,16(2):125-134.

[7]王志偉,紀燕玲,陳永敢. 植物內生菌研究及其科學意義[J].微生物學通報,2015,42(2):349-363.

[8]徐亞軍. 植物內生菌資源多樣性研究進展[J].廣東農業科學,2011,38(24):149-152.

[9]陳澤斌,靳松,張永福,等. 植物內生菌生物防治研究進展及存在的問題[J].昆明學院學報,2014,36(3):40-42.

[10]Durán P,Acu?a J J,Jorquera M A,et al. Endophytic bacteria from selenium-supplemented wheat plants could be useful for plant-growth promotion,biofortification and Gaeumannomyces graminis biocontrol in wheat production[J].Biology and fertility of soils,2014,50(6):983-990.endprint

[11]Shi Y W,Yang H,Zhang T,et al. Illumina-based analysis of endophytic bacterial diversity and space-time dynamics in sugar beet on the north slope of Tianshan mountain[J].Applied microbiology and biotechnology,2014,98(14):6375-6385.

[12]張瑞杰,張瓊瓊,黃興如,等. 基于分離培養方法的香蒲根內生細菌多樣性[J].濕地科學,2016(2):201-211.

[13]Ward D M,Weller R,Bateson M M. 16S rRNA sequences reveal numerous uncultured microorganisms in a natural community [J].Nature,1990,345(6270):63-65.

[14]Zhang Y Z,Wang E T,Li M,et al. Effects of rhizobial inoculation,cropping systems and growth stages on endophytic bacterial community of soybean roots[J].Plant and soil,2011,347(1-2):147-161.

[15]Kirk J L,Beaudette L A,Hart M,et al. Methods of studying soil microbial diversity[J].Journal of microbiological methods,2004,58(2):169-188.

[16]Yu J,Yu Z H,Fan G Q,et al. Isolation and Characterization of Indole Acetic Acid Producing Root Endophytic Bacteria and Their Potential for Promoting Crop Growth[J].Journal of Agricultural Science and Technology,2016,18(5):1381-1391.

[17]Rosenblueth M,Martínez-Romero E. Bacterial endophytes and their interactions with hosts[J].Molecular plant-microbe interactions,2006,19(8):827-837.

[18]Tombolini R,Unge A,Davey M E,et al. Flow cytometric and microscopic analysis of GFP-tagged Pseudomonas fluorescens bacteria[J].FEMS Microbiology Ecology,1997,22(1):17-28.

[19]郝慧娟,劉洪偉,尹淑麗,等. 枯草芽孢桿菌BSD-2的GFP標記及其在黃瓜上的定殖研究[J].華北農學報,2016,31(4):106-111.

[20]Szilagyi-Zecchin V J,Ikeda A C,Hungria M,et al. Identification and characterization of endophytic bacteria from corn (Zea mays L.) roots with biotechnological potential in agriculture[J].AMB Express,2014,4(1):26.

[21] Xu Y B,Chen M,Zhang Y,et al. The phosphotransferase system gene ptsI in the endophytic bacterium Bacillus cereus is required for biofilm formation,colonization,and biocontrol against wheat sharp eyespot[J].FEMS microbiology letters,2014,354(2):142-152.

[22] 程超,趙延存,李紅旭,等. 產酶溶桿菌OH11代謝產物HSAF對梨樹腐爛病的防治效果[J].中國生物防治學報,2017,33(1):114-120.

[23] Debode J,Maeyer K D,Perneel M,et al. Biosurfactants are involved in the biological control of Verticillium microsclerotia by Pseudomonas spp[J].Journal of applied microbiology,2007,103(4):1184-1196.

[24] Press C M,Loper J E,Kloepper J W. Role of iron in rhizobacteria-mediated induced systemic resistance of cucumber[J].Phytopathology,2001,91(6):593-598.

[25] Chester K S. The problem of acquired physiological immunity in plants[J].The Quarterly Review of Biology,1933,8(3):275-324.

[26]邱德文. 我國植物免疫誘導技術的研究現狀與趨勢分析[J].植物保護,2016,42(5):10-14.

[27]Abdallah R A B,Mokni-Tlili S,Nefzi A,et al. Biocontrol of Fusarium wilt and growth promotion of tomato plants using endophytic bacteria isolated from Nicotiana glauca organs[J].Biological Control,2016(97):80-88.

[28]Chun J,Bae K S. Phylogenetic analysis of Bacillus subtilis and related taxa based on partial gyrA gene sequences[J].Antonie van Leeuwenhoek,2000,78(2):123-127.

[29] Pathak K V,Keharia H. Characterization of fungal antagonistic bacilli isolated from aerial roots of banyan (Ficus benghalensis) using intact‐cell MALDI‐TOF mass spectrometry (ICMS)[J].Journal of applied microbiology,2013,114(5):1300-1310.

作者簡介:曹焜,黑龍江鶴崗人,碩士,研究實習員,研究方向為漢麻育種及漢麻內生菌;王曉楠,黑龍江綏化人,博士,副研究員,研究方向為漢麻育種及組學研究。endprint

主站蜘蛛池模板: 日韩成人午夜| 免费aa毛片| 久久久久人妻一区精品色奶水| 亚洲日韩精品综合在线一区二区| 亚洲国产黄色| 欧美精品v欧洲精品| 天堂av综合网| 亚洲激情99| 亚洲香蕉在线| 欧美黄网在线| 一区二区三区四区日韩| 伊人天堂网| 2020最新国产精品视频| 国产99热| 最近最新中文字幕在线第一页| 国产精品亚洲天堂| 国产精品福利社| 成人福利一区二区视频在线| 亚洲精品国偷自产在线91正片| 色香蕉影院| 91网红精品在线观看| 国语少妇高潮| 久久人体视频| 亚洲性日韩精品一区二区| 午夜精品久久久久久久无码软件| 国产女人18水真多毛片18精品 | 日韩精品亚洲一区中文字幕| 午夜人性色福利无码视频在线观看| 亚洲福利片无码最新在线播放| 国产手机在线观看| 亚洲精品中文字幕无乱码| 色综合手机在线| 99热在线只有精品| 精品一区二区三区视频免费观看| 欧美亚洲另类在线观看| 成人在线天堂| 国产成人一二三| 无码日韩人妻精品久久蜜桃| 国产在线观看91精品| 精品无码国产一区二区三区AV| 69国产精品视频免费| 性喷潮久久久久久久久| 亚洲综合亚洲国产尤物| 成人亚洲天堂| 国内自拍久第一页| 国产一区二区三区夜色| 国产一区二区色淫影院| 国内精品手机在线观看视频| 久久人妻xunleige无码| 野花国产精品入口| 欧美色香蕉| 日本道中文字幕久久一区| 国产精品综合色区在线观看| 啦啦啦网站在线观看a毛片| 久久免费视频播放| 亚洲色精品国产一区二区三区| 婷婷成人综合| 亚洲一区第一页| 青青操国产| 高清色本在线www| 日韩大片免费观看视频播放| av在线人妻熟妇| 国产91视频观看| 亚洲AⅤ无码国产精品| 国产三级成人| 爱爱影院18禁免费| a级毛片免费网站| 99在线观看国产| 亚洲人成人无码www| 91欧美在线| 久久6免费视频| 精品综合久久久久久97超人| 欧美在线精品怡红院| 九九久久99精品| 免费人成网站在线高清| 伊在人亚洲香蕉精品播放| 久久精品人人做人人爽电影蜜月| 国模极品一区二区三区| 最新国产高清在线| 天天躁狠狠躁| 日本人又色又爽的视频| 国产亚洲精品97AA片在线播放|