高 芳
(浙江省臺州市第一中學 318000)
“探究培養液中酵母菌種群數量的動態變化”是高中生物學必修教材中的實驗。該實驗利用血細胞計數板進行酵母菌的顯微計數,并建立數學模型解釋種群數量動態變化規律。無論是實驗技術操作、實驗結果分析,還是實驗內容探究等方面都值得開展。但在實際操作過程中,由于教材很多步驟沒有詳細地解釋,無菌操作和血細胞計數板的使用等技術學生未曾接觸。因此,實驗難度較大,開出率較低。本文針對該實驗過程中的一些疑難問題提出解決方法,為該實驗的廣泛開展提供經驗。
買來的血細胞計數板沒有蓋玻片,能否使用實驗室普通蓋玻片?若使用普通蓋玻片,會因為蓋片太小(18 mm×18 mm)而不能覆蓋全2個計數室,且質量較輕(厚0.13~0.17 mm,約0.14~0.15 g/個),不能保證計數室的高度恒定。專用血蓋片(22 mm×26 mm)較大的面積足以蓋全2個計數室,較重的質量(厚0.5 mm,約0.55 g/個)能保證計數室的高度為0.1 mm。
酵母菌數量過多時,需要進行稀釋操作。浙科版高中生物學必修三教材中提及10倍稀釋的方法[1],往往使學生誤解而直接進行10倍稀釋,造成計數室酵母菌數量過少,引起實驗誤差,此時教師應怎樣指導學生進行合理稀釋呢?
教師可以指導學生在計數前進行稀釋的預實驗:先對原液大致計數,根據估算數目選擇合適倍數進行稀釋,實際操作中,最開始的稀釋只需1~2倍即可。那么稀釋至計數多少細胞數為宜呢?教材要求“計數總數不少于300個細胞”,但當“方格內細胞數目多于300個或者數不過來,可以用稀釋的方法”[1]。此處“計數總數不少于300個細胞”,應是針對規格為25格×16格的計數板中5個中方格的計數總數(規格為16格×25格的計數板則指4個中方格),即要求每個中方格計數不少于60個。而“方格內細胞數目多于300個則要稀釋”,則應是指每個中方格的計數數目。因此,實際操作時,以每個中方格計數 100個左右為宜,數量太多會使計數難度加大,太少會因稀釋過多而產生誤差。
血細胞計數板在調焦清晰的情況下,即使視野清晰,也會出現只能看到橫線而看不到豎線的情況,此時難以確定計數室的位置,該如何解決?因為血細胞計數板線條無色,所以顯微鏡觀察時,視野光線應調暗一些。碰到上述情況,可以將反光鏡向側面適當地翻轉調試至某個角度,使得光線強度適當降低,就可以清晰地看到血細胞計數板的豎線。
很多人對血細胞計數板的清洗并不在意,在計數完成后,不及時清洗,或簡單清洗晾干后便用于下次計數。而在再次鏡檢時,發現前次計數的酵母菌仍殘留在計數板表面,嚴重干擾再次觀察計數。怎樣才能將血細胞計數板徹底清洗干凈?首先在使用后應立即清洗,防止細胞失水后黏在計數板上。其次,可用擦鏡紙蘸取酒精擦拭,流動水沖洗數次。如果仍然不干凈,需泡酸后用蒸餾水沖洗。血細胞計數板若使用擦鏡紙擦干,會帶來雜質,可用吹風機吹干或讓其自然風干。
加樣到血細胞計數板上時,是先滴加菌液再蓋蓋玻片,還是先蓋蓋玻片再滴加菌液?血細胞計數板表面有凹槽(圖1),若先加菌液再蓋蓋玻片,血蓋片落下時極易產生氣泡,還可能造成菌液過量,計數室高度超過1 mm,這些都會造成計數誤差。因此,建議加樣時先蓋蓋玻片,在蓋玻片的邊緣滴加適量菌液,利用毛細作用將菌液滲入蓋玻片下,以保證菌液量合適,且避免氣泡的產生。

圖1 血細胞計數板側面觀模式圖
酵母菌培養過程中,每組培養所使用的試管,是自始至終只用1支,還是每組多支試管,每天取其中1支計數,不重復使用?通過將這兩種情況設置對照實驗發現,如僅用1支試管,存在重復取樣帶來污染及計數體積變化帶來誤差的問題,若試管不小心破碎,該組實驗則不能繼續進行。因此,建議每組選用多支試管,每天取其中1支計數,不重復使用的實驗設計,可有效避免以上問題。
將不同時間段的酵母菌數繪制成曲線時,是使用單組數據繪制成多條曲線,還是將全班所有數據匯總繪制成1條曲線?利用SPSS軟件將數據擬合成S型曲線可知,僅用單組數據,每條曲線的擬合度都較低,建立數學模型存在較大誤差;把全班所有數據匯總取平均值,曲線擬合度顯著提高,達到數學模型建立的要求。因此,建議將全部數據匯總繪制成一條曲線。
當所有操作都按規范進行,但血細胞計數板的不同計數方格間、同一試管樣品的重復測量間、同一處理的不同試管間酵母菌計數仍存在較大誤差,是什么原因導致的呢?學生親身實踐操作后,通過互相探討,普遍認同混勻這個操作對計數誤差起到關鍵作用,且容易忽視。取樣前搖勻、稀釋后搖勻以保證菌液密度均一,加樣前吹打均勻以保證菌液隨機散布計數室,這些都是避免出現計數誤差的操作細節。