2+脅迫對羅氏沼蝦血清中抗氧化和免疫指標的影響"/>
999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?摘要:【目的】研究Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中抗氧化和免疫指標的影響,為其養殖環境的調控提供科學依據。【方法】設置0(對照組)和100 μg/L(脅迫組)兩個Cu2+濃度,分別在羅氏沼蝦受Cu2+脅迫后的0、3、6、12、24和48 h取樣,分離血清,測定血清中總抗氧化能力(T-AOC)、過氧化氫酶(CAT)活力、丙二醛(MDA)含量,以及酸性磷酸酶(ACP)和堿性磷酸酶(AKP)活力。【結果】在Cu2+脅迫的3~12 h,羅氏沼蝦血清中T-AOC顯著升高(P<0.05,下同),并在12 h達峰值,脅迫后24和48 h顯著下降;與對照組相比,CAT活力在脅迫3 h時顯著升高,6 h時顯著下降,12 h時又顯著上升并達峰值,之后又逐漸降低,并在48 h時顯著低于對照組;脅迫組羅氏沼蝦血清中MDA含量在整個脅迫過程中呈先升高后略有降低的變化趨勢,且在各時間點均顯著高于對照組;ACP活力在脅迫后6和12 h顯著升高,24和48 h時降至初始水平;AKP活力在脅迫3~12 h內無顯著變化(P>0.05),脅迫后24和48 h顯著降低。【結論】Cu2+脅迫導致羅氏沼蝦脂質過氧化發生,機體通過調節抗氧化系統抵御Cu2+脅迫,抗氧化和免疫指標的變化具有一定時間效應,其中T-AOC、CAT活力和MDA含量對Cu2+脅迫較敏感,在脅迫短時間內即被顯著誘導,可作為Cu2+污染的潛在生物指示物。
關鍵詞: Cu2+脅迫;羅氏沼蝦;抗氧化能力;免疫;生物指示物
中圖分類號: S945.41 文獻標志碼:A 文章編號:2095-1191(2017)07-1323-06
0 引言
【研究意義】集約化和工業化水產養殖業的發展,給養殖水環境帶來了嚴重污染,重金屬是主要污染物之一,具有遺傳毒性、持久性和不可降解性等特點(陳彩芳等,2014)。有報道顯示,我國南海地區水域中銅(Cu)污染嚴重(Pan and Wang,2012),在珠江口地區的水生生物體內也檢測到較高濃度Cu(Ip et al.,2005;Wang et al.,2013),Cu被認為是該地區的主要金屬污染物(Bai et al.,2011)。Cu是蝦體內必需的微量營養素,不僅在調節蝦類生長、免疫、酶功能和組織完整性方面發揮重要作用,還是合成血藍蛋白的必需成分(Bharadwaj et al.,2014)。在生產實踐中,Cu常作為礦物營養素、除藻劑或病原抑制藥物被廣泛應用于水產養殖領域,但過量的Cu累積,會使養殖水體惡化(Liao et al.,2006)。研究表明,溶解態Cu的毒性明顯高于其他形式Cu,且毒性范圍也更廣(Gibbon-Walsh et al.,2012),對水產養殖業造成嚴重威脅。羅氏沼蝦(Macrobrachium rosenbergii)又名大頭蝦、馬來西亞大蝦,是目前世界上養殖量最大的三大蝦種之一,也是我國重要的經濟甲殼動物。其在水生生態系統中分布較廣泛,在江河、湖泊等淡水和河口半咸水水域中均有分布,對水環境中各種理化性質的變化較敏感(朱春華等,2012)。因此,以羅氏沼蝦為對象,研究Cu2+脅迫對其血清中抗氧化和免疫指標的影響,對實際生產中監測Cu污染及提高羅氏沼蝦的抗Cu脅迫具有重要意義。【前人研究進展】當機體處于脅迫狀態時,總抗氧化能力(T-AOC)、丙二醛(MDA)含量及過氧化氫酶(CAT)、堿性磷酸酶(AKP)和酸性磷酸酶(ACP)活力均會隨著脅迫強度的不同呈規律性變化,這種高度敏感的生物反應指標稱為生物標志物(Regoli and Principato,1995)。目前,已有研究報道Cu2+脅迫對羅氏沼蝦存活率、滲透調節和病理變化等方面的影響,如Chen和Wang(2001)研究發現,Cu2+脅迫顯著降低了羅氏沼蝦酚氧化酶活性,從而提高其對格氏乳球菌(Lactococcus garvieae)的易感性;Li等(2007)研究發現,Cu2+脅迫能顯著改變羅氏沼蝦鰓和肝胰腺的組織結構;Asih等(2013)的研究結果表明,Cu2+脅迫對不同發育時期羅氏沼蝦的存活、滲透調節和鰓的組織結構均有顯著影響;黎東(2013)研究發現,Cu2+能顯著抑制羅氏沼蝦仔蝦的生長,影響其卵巢發育;Guo等(2015)研究Cu2+脅迫下羅氏沼蝦血清中抗氧化酶基因表達量的變化,發現CAT、谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)等抗氧化酶的基因表達量被Cu2+顯著誘導。【本研究切入點】從生物標志物的角度研究Cu2+脅迫對羅氏沼蝦的毒性效應尚未見報道。【擬解決的關鍵問題】通過監測Cu2+脅迫下羅氏沼蝦T-AOC、MDA含量及CAT、ACP和AKP活力的變化,探討Cu2+對羅氏沼蝦的毒性影響及其生理響應,為其養殖環境的調控提供科學依據。
1 材料與方法
1. 1 試驗材料
羅氏沼蝦購自湛江某養殖場,體重10.89±1.42 g,置于實驗室淡水循環水系統中暫養2周,水溫(26±2)℃,所有水質指標均符合《漁業水質標準》要求(國家海洋局,1989),暫養及脅迫試驗期間持續充氧。暫養期間每日在6:00和18:00投入蝦體重2%的餌料,脅迫試驗前24 h停止喂食。酶活力測定試劑盒均購自南京建成生物工程研究所。
1. 2 脅迫試驗
試驗分對照組和脅迫組,每組設3個重復。根據 Chen和Wang(2001)的研究結果及預試驗結果發現,Cu2+脅迫濃度為100 μg/L時,可引起機體內生理生化變化并保證所有試驗沼蝦存活,故設置理論Cu2+脅迫濃度為0(對照組)和100 μg/L(脅迫組,用硫酸銅配置Cu2+溶液)兩個處理組。將羅氏沼蝦置于塑料箱中,脅迫組加入180 L硫酸銅溶液,每箱放蝦25尾,每24 h換硫酸銅溶液50%,對照組換水50%;分別在脅迫后0、3、6、12、24和48 h從每個箱中隨機選取3尾(n=9)羅氏沼蝦,參照Guo等(2013)的方法收集血淋巴800 g,4 ℃離心10 min,取上清分裝,-80 ℃保存備用。
1. 3 酶活力測定
采用比色法測定T-AOC,計算公式為:
1. 4 統計分析
所有數據均以3個平行組數據的平均值±標準差表示,并采用配對t檢驗法統計分析試驗組與對照組間的數據差異,P<0.05為顯著差異。
2 結果與分析
2. 1 Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中T-AOC的影響
由圖1可知,在Cu2+脅迫開始的3 h,羅氏沼蝦血清中T-AOC即顯著上升(P<0.05,下同),并在脅迫12 h時達峰值(136.89 U/mL);隨著Cu2+脅迫時間的延長,血清中T-AOC在24和48 h時逐漸下降,且顯著低于對照組。說明Cu2+脅迫初期可顯著誘導T-AOC,隨著脅迫時間的延長,顯著抑制機體的T-AOC。
2. 2 Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中CAT活力的影響
由圖2可知,隨著Cu2+脅迫時間的延長,羅氏沼蝦血清中CAT活力呈波動式變化趨勢,與對照組相比,Cu2+脅迫3 h后的血清中CAT活力顯著升高,在6 h時顯著下降,脅迫12 h時又顯著上升并達峰值(25.23 U/mL),此后逐漸降低,48 h時CAT活力顯著低于對照組。說明Cu2+脅迫可顯著影響羅氏沼蝦機體的CAT活力。
2. 3 Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中MDA含量的影響
如圖3所示,與對照組相比,羅氏沼蝦血清中MDA含量在Cu2+脅迫后3 h即被顯著誘導,6 h時雖有短暫降低,但仍與對照組有顯著差異。MDA含量在脅迫12 h時達峰值(22.86 nmol/mL),24和48 h時也顯著高于對照組。說明Cu2+脅迫能顯著提高羅氏沼蝦血清中MDA含量。
2. 4 Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中ACP活力的影響
如圖4所示,在Cu2+脅迫后的3 h內,Cu2+對羅氏沼蝦血清中ACP活力無顯著影響(P>0.05,下同),在Cu2+脅迫后的6和12 h,羅氏沼蝦血清中ACP活力明顯升高,且顯著高于對照組;隨著脅迫時間的延長,ACP活力又逐漸降至初始水平。說明Cu2+脅迫在一定時間內能顯著影響羅氏沼蝦血清中ACP活力。
2. 5 Cu2+脅迫對羅氏沼蝦血清中AKP活力的影響
如圖5所示,在脅迫3~12 h內,Cu2+對羅氏沼蝦血清中AKP活力無顯著影響,在脅迫后的24和48 h,羅氏沼蝦血清中AKP活力與對照組相比顯著降低。說明在Cu2+脅迫后期,可顯著抑制羅氏沼蝦機體的AKP活力。
3 討論
活性氧(ROS)在機體的免疫防御過程中發揮著重要作用。在正常生理狀態下,ROS的產生和消除處于平衡狀態(Lushchak,2011),但當有害物質入侵機體時,ROS的平衡狀態會被打破(Achard-Joris et al.,2006)。過多ROS會對機體造成細胞損傷,在進化過程中,機體形成了相應的抗氧化機制避免細胞組分受到氧化損傷(Griboff et al.,2014),包括超氧化物歧化酶(SOD)和CAT等在內的抗氧化酶系統被認為是機體對抗氧化損傷的第一道防線。溫度、鹽度、亞硝酸鹽等環境因子的脅迫,均會影響蝦類抗氧化酶的變化(Guo et al.,2013;Xian et al.,2013;Vinagre et al.,2014)。
T-AOC是用于衡量機體抗氧化系統功能狀況的綜合性指標,反映機體對外來刺激的代償能力及機體自由基代謝的狀態,包括酶促反應和非酶促反應兩個體系。其中酶促反應體系包括SOD和CAT等抗氧化酶類;非酶促反應體系包括維生素、類胡蘿卜素、氨基酸和金屬蛋白等抗氧化劑(管越強等,2011)。段亞飛等 (2015)研究表明,在感染鰻弧菌(Vibrio anguillarum)初期,脊尾白蝦(Exopalaemon carinicauda)鰓中的T-AOC呈上升趨勢,表明鰻弧菌感染誘導機體免疫反應產生ROS殺滅病原菌,從而激活機體抗氧化酶系統,在感染后期,鰓中T-AOC逐漸下降,推測是由于弧菌的繁殖抑制了機體抗氧化酶活性,使抗氧化防御系統下降。本研究結果表明,在Cu2+脅迫下,羅氏沼蝦血清中T-AOC呈先升高后降低的變化趨勢,在脅迫3~12 h,T-AOC顯著上升,可能是Cu2+脅迫作用使羅氏沼蝦體內的ROS含量增加,刺激酶促反應體系中各種酶活力升高,從而提高了T-AOC來清除體內過多的ROS;而隨著脅迫時間的延長,產生過量ROS,會對各種抗氧化酶活力產生部分抑制作用,而機體在清除ROS的同時自身的抗氧化酶也會被消耗掉,因此,在脅迫后24~48 h,T-AOC顯著降低,與管越強等(2011)研究硫化物脅迫對日本沼蝦(Macrobrachium nipponense)抗氧化系統的影響發現低濃度硫化物組的日本沼蝦在脅迫試驗前期T-AOC升高,而后隨著脅迫時間的延長,T-AOC顯著下降的結果一致。
CAT是一種普遍存在于古細菌、原核生物和真核生物中的高度保守酶,對維持細胞內的氧化還原平衡起著重要作用,可催化H2O2轉化成H2O和O2,從而降低其毒性(Arockiaraj et al.,2012;Rama and Manjabhat,2014)。本研究中,在Cu2+脅迫初始階段,CAT活力被顯著誘導,但在6 h時又顯著降低,可能是由于此時的H2O2不足以為CAT提供底物(孟曉林等,2015)。在脅迫后12和24 h,H2O2又重新積累,為CAT提供了足夠的反應底物,此時CAT活力又重新恢復,但隨著脅迫時間的延長,CAT抗氧化能力也逐漸減弱。這與Cu2+脅迫下蝦夷扇貝(Patinopecten yessoensis)鰓和肝胰腺中CAT活力的變化趨勢一致(孟曉林等,2015)。
MDA是脂質過氧化的產物,可反映細胞氧化損傷的程度(Sila et al.,2015),已被廣泛用于水生生物的毒理學研究(Wang et al.,2012;Li et al.,2013,2016;Xu et al.,2014)。已有研究發現,Cu2+脅迫能顯著提高草魚(Ctenopharyngodon idella)鰓組織和克氏原螯蝦(Procambarus clarkii)血清中的MDA含量(Wang et al.,2015;Wei and Yang,2016)。本研究也發現,Cu2+脅迫可顯著增加羅氏沼蝦血清MDA含量,說明Cu2+脅迫可導致水產動物脂質過氧化的發生。
ACP和AKP是甲殼動物體內的2種非特異性免疫因子,在其免疫反應過程中具有防御和消化的雙重作用(鐘君偉等,2014;周冬仁等,2015)。因此,ACP和AKP活力是判斷甲殼動物免疫狀態的重要指標。ACP是巨噬細胞溶酶體的標志酶,在體內直接參與磷酸基團的轉移和代謝,在調節DNA、蛋白質和脂質代謝過程中起重要作用,且容易受外界影響(李玉全,2014;譚樹華等,2014)。據報道,羅氏沼蝦在遭受螺原體MR-1008感染(Du et al.,2013)和環境因子脅迫(王玥等,2005;朱春華等,2012)時,ACP活力均被顯著誘導。本研究也發現,在Cu2+脅迫后6和12 h,ACP活力被顯著誘導,在24和48 h時,ACP活力又逐漸降低,但與對照組無顯著差異。推測羅氏沼蝦在受到Cu2+脅迫時,機體需通過增加體內的ACP活力去參與免疫調節,以對抗Cu2+帶來的氧化損傷,長時間的Cu2+脅迫會嚴重影響蝦的物質代謝過程和免疫力,導致ACP活力下降(譚樹華等,2014)。
AKP是一種磷酸單酯酶,是生物體磷代謝的關鍵酶之一,其活性中心具有Zn2+。水體中的Cu2+可由鰓進入血液,使血液中的Cu2+濃度發生改變。本研究結果表明,在脅迫12 h內,Cu2+脅迫對AKP活力無顯著影響,脅迫后24和48 h時,Cu2+顯著抑制了AKP活力。這可能是因為Cu和Zn為同族元素,相互之間存在拮抗作用,從而使AKP活力受到抑制(王維娜等,2001),也可能是因為長時間的Cu2+脅迫擾亂了沼蝦自身生理調節過程,破壞了酶蛋白本身,導致抑制效應。
4 結論
Cu2+脅迫導致羅氏沼蝦脂質過氧化的發生,機體通過調節抗氧化系統抵御Cu2+脅迫,抗氧化和免疫指標的變化具有一定時間效應,其中T-AOC、CAT活力和MDA含量對Cu2+脅迫較敏感,在脅迫短時間內即被顯著誘導,可作為Cu2+污染的潛在生物指示物。
參考文獻:
陳彩芳,沈偉良,申屠基康,林志華. 2014. Pb2+對泥蚶鰓、肝臟等組織結構的影響[J]. 水產學報,38(7):965-972. [Chen C F,Shen W L,Shen T J K,Lin Z H. 2014. Effect of Pb2+ on the microstructure and ultrastructure of gill and he-patopancreas in Tegillarca granosa[J]. Journal of Fishe-ries of China,38(7):965-972.]
段亞飛,梁俊平,李吉濤,王蕓,張喆,李健,劉萍. 2015. 鰻弧菌感染對脊尾白蝦鰓組織抗氧化酶系統的影響[J]. 水產科學,34(11):667-672. [Duan Y F,Liang J P,Li J T,Wang Y,Zhang Z,Li J,Liu P. 2015. Antioxidant enzyme system in gills of shrimp Exopalaemon cariniauda cha-llenged with Vibrio anguillarum[J]. Fisheries Science,34(11):667-672.]
管越強,裴素蕊,李澤健. 2011. 急性硫化物脅迫對日本沼蝦免疫和抗氧化系統的影響[J]. 水生態學雜志,32(6):89-94. [Guan Y Q,Pei S R,Li Z J. 2011. Effects of acute sulfide stress on immune responses and antioxidant system of Macrobrachium nipponense[J]. Journal of Hydroecology,32(6):89-94.]
國家海洋局. 1989. 漁業水質標準[S]. 北京:中國標準出版社.[State Oceanic Administration People’s Republic of China. 1989. Water Quality Standard for Fisheries[S]. Beijing:Standards Press of China.]
黎東. 2013. Cu2+、Zn2+對羅氏沼蝦生長以及卵巢發育的影響[D]. 湛江:廣東海洋大學. [Li D. 2013. Effects of growth and ovarian development on Macrobrachium rosenbergii by Cu2+ and Zn2+[D]. Zhanjiang:Guangdong Ocean University.]
李玉全. 2014. pH脅迫對脊尾白蝦代謝酶活力的影響[J]. 南方農業學報,45(6):1098-1101. [Li Y Q. 2014. Effects of pH stress on activities of phosphatase in Exopalaemon carinicauda Holthuis[J]. Journal of Southern Agriculture,45(6):1098-1101.]
孟曉林,田雪,郭倩倩,黃建蓉,盧榮華,梁俊平,李學軍,孔祥會,聶國興. 2015. 銅在蝦夷扇貝鰓和肝胰腺中的累積及對抗氧化酶、脂代謝的影響[J]. 水產學報,39(6):908-915. [Meng X L,Tian X,Guo Q Q,Huang J R,Lu R H,Liang J P,Li X J,Kong X H,Nie G X. 2015. Copper specific accumulation and its effect on the activity of antioxidant enzymes and metabolism of lipid in gill or hepatopancreas of Patinopecten yessoensis[J]. Journal of Fisheries of China,39(6):908-915.]
譚樹華,李玉峰,劉文海,羅潔,葉可. 2014. 十二烷基硫酸鈉(SDS)對克氏原螯蝦抗氧化功能和酸性磷酸酶活性的影響[J]. 生態與農村環境學報,30(3):392-397. [Tan S H,Li Y F,Liu W H,Luo J,Ye K. 2014. Effects of sodium dodecyl sulfate on antioxidation function and acid phosphatase activity of Procambarus clarkii[J]. Journal of Ecology and Rural Environment,30(3):392-397.]
王維娜,王安利,孫儒泳. 2001. 水環境中的銅鋅鐵鈷離子對日本沼蝦消化酶和堿性磷酸酶的影響[J]. 動物學報,47(S1):72-77. [Wang W N,Wang A L,Sun R Y. 2001. E-
ffects of Cu2+,Zn2+,Fe3+ and Co2+ in freshwater on digestive enzymes and alkaline phosphatase activity of Macrobra-
chium nipponense[J]. Acta Zoologica Sinica,47(S1):72- 77.]
王玥,胡義波,姜乃澄. 2005. 氨態氮、亞硝態氮對羅氏沼蝦免疫相關酶類的影響[J]. 浙江大學學報(理學版),32(6):698-705. [Wang Y,Hu Y B,Jiang N C. 2005. Effects of ammonia-N and nitrite-N on immune enzymes of Macrobrachium rosenbergii[J]. Journal of Zhejiang University(Science Edition),32(6):698-705.]
鐘君偉,朱永安,孟慶磊,張龍崗,安麗. 2014. 敵百蟲脅迫對克氏原螯蝦免疫學相關指標的影響[J]. 水生態學雜志,35(2):95-100. [Zhong J W,Zhu Y A,Meng Q L,Zhang L G,An L. 2014. Effects of the stress of trichlorphon on some immune parameters of Procambarus clarkia[J]. Journal of Hydroecology,35(2):95-100.]
周冬仁,羅毅志,葉雪平,潘曉藝,陳建明,沈斌乾. 2015. 2種復方制劑對中華鱉非特異性免疫功能的作用效果[J]. 貴州農業科學,43(6):146-148. [Zhou D R,Luo Y Z,Ye X P,Pan X Y,Chen J M,Shen B Q. 2015. Effect of two compound preparations on nonspecific immunity function of Trionyx sinensis[J]. Guizhou Agricultural Sciences,43(6):146-148.]
朱春華,李郁嬌,陳孌孌,黎東,李廣麗,鄧思平. 2012. 壬基酚對羅氏沼蝦血清中免疫酶活力的影響[J]. 廣東海洋大學學報,32(6):17-20. [Zhu C H,Li Y J,Chen L L,Li D,Li G L,Deng S P. 2012. Effects of nonylphenol(NP) on the activities of immunologic enzyme in blood serum of Macrobrachium rosenbergii[J]. Journal of Guangdong Ocean University,32(6):17-20.]
Achard-Joris M,Gonzalez P,Marie V,Baudrimont M,Bourdineaud J P. 2006. Cytochrome c oxydase subunit I gene is up-regulated by cadmium in freshwater and marine bivalves[J]. Biometals,19(3):237-244.
Arockiaraj J,Easwvaran S,Vanaraja P,Singh A,Othman R Y,Bhassu S. 2012. Molecular cloning,characterization and gene expression of an antioxidant enzyme catalase(MrCat) from Macrobrachium rosenbergii[J]. Fish Shellfish I-
mmunology,32(5):670-682.
Asih A Y P,Irawan B,Soegianto A. 2013. Effect of copper on survival,osmoregulation,and gill structures of freshwater prawn(Macrobrachium rosenbergii,de Man) at different development stages[J]. Marine and Freshwater Behaviour and Physiology,46(2):75-88.
Bai J H,Xiao R,Cui B S,Zhang K J,Wang Q G,Liu X H,Gao H F,Huang L B. 2011. Assessment of heavy metal pollution in wetland soils from the young and old reclaimed regions in the Pearl River Estuary,South China[J]. Environmental Pollution,159(3):817-824.
Bharadwaj A S,Patnaik S,Browdy C L,Lawrence A L. 2014. Comparative evaluation of an inorganic and a commercial chelated copper source in Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei(Boone) fed diets containing phyticacid[J]. Aquaculture,422-423(3):63-68.
Chen W,Wang C H. 2001. The susceptibility of the giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii to Lactoco-
ccus garvieae and its resistance under copper sulfate stress[J]. Diseases of Aquatic Organisms,47(2):137-144.
Du J,Zhu H X,Liu P,Chen J,Xiu Y J,Yao W,Wu T,Ren Q,Meng Q G,Gu W,Wang W. 2013. Immune responses and gene expression in hepatopancreas from Macrobrachium rosenbergii challenged by a novel pathogen spiroplasma MR-1008[J]. Fish Shellfish Immunology,34(1):315- 323.
Gibbon-Walsh K,Salaün P,van den Berg C M. 2012. Pseudopolarography of copper complexes in seawater using a vibrating gold microwire electrode[J]. Journal of Physical Chemistry A,116(25): 6609-6620.
Griboff J,Morales D,Bertrand L,Bonansea R I,Monferrán M V,Asis R,Wunderlin D A,Amé M V. 2014. Oxidative stress response induced by atrazine in Palaemonetesargentinus:The protective effect of vitamin E[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety,108:1-8.
Guo H,Miao Y T,Xian J A,Qian K,Wang A L. 2015. Expression profile of antioxidant enzymes in hemocytes from freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii exposed to an elevated level of copper[J]. Bulletin of Environmental Contamination Toxicology,95(4):447-451.
Guo H,Xian J A,Li B,Ye C X,Wang A L,Miao Y T,Liao S A. 2013. Gene expression of apoptosis-related genes,stress protein and antioxidant enzymes in hemocytes of white shrimp Litopenaeus vannamei under nitrite stress[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part C:Toxicology Pharmacology,157(4):366-371.
Ip C C M,Li X D,Zhang G,Wong C S C,Zhang W L. 2005. Heavy metal and Pb isotopic compositions of aquatic organisms in the Pearl River Estuary,South China[J]. Environmental Pollution,138(3):494-504.
Li N,ZhaoY,Yang J. 2007. Impact of waterborne copper on the structure of gills and hepatopancreas and its impact on the content of metallothionein in juvenile giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii(Crustacea: Decapoda)[J]. Archives of Environmental Contamination and Toxicology,52(1): 73-79.
Li Y,Chai X,Wu H,Jing W,Wang L. 2013. The response of metallothionein and malondialdehyde after exclusive and combined Cd/Zn exposure in the crab Sinopotamon henanense[J]. PloS One,8(11):e80475.
Li Y,Wei L,Cao J,Qiu L,Jiang X,Li P,Song Q,Zhou H,Han Q,Diao X. 2016. Oxidative stress,DNA damage and antioxidant enzyme activities in the pacific white shrimp(Litopenaeus vannamei) when exposed to hypoxia and reoxygenation[J]. Chemosphere,144:234-240.
Liao C M,Chang C F,Yeh C H,Chen S C,Chiang K C,Chio C P,Chou B Y H,Jou L J,Lien G W,Lin C M. 2006. Metal stresses affect the population dynamics of disease transmission in aquaculture species[J]. Aquaculture,257(1-4):321-332.
Lushchak V I. 2011. Environmentally induced oxidative stress in aquatic animals[J]. Aquatic Toxicology,101(1):13-30.
Pan K,Wang W X. 2012. Reconstructing the biokinetic processes of oysters to counteract the metal challenges:Physio-
logical acclimation[J]. Environmental Science Technology,46(19):10765-10771.
Rama S,Manjabhat S N. 2014. Protective effect of shrimp carotenoids against ammonia stress in common carp,Cyprinus carpio[J]. Ecotoxicology Environmental Safety,107(9):207-213.
Regoli F,Principato G. 1995. Glutathione,glutathione-dependent and antioxidant enzymes in mussel,Mytilus galloprovincialis,exposed to metals under field and laboratory conditions:Implications for the use of biochemical biomar-
kers[J]. Aquatic Toxicology,31(2):143-164.
Sila A,Kamoun Z,Ghlissi Z,Makni M,Nasri M,Sahnoun Z,Nedjar-Arroume N,Bougatef A. 2015. Ability of natural astaxanthin from shrimp by-products to attenuate liver oxi-dative stress in diabetic rats[J]. Pharmacological Reports,67(2):310-316.
Vinagre C,Madeira D,Mendon?觭a V,Dias M,Roma J,Diniz M S. 2014. Effect of temperature in multiple biomarkers of oxidative stress in coastal shrimp[J]. Journal of Thermal Biology,41(1):38-42.
Wang B,Feng L,Jiang W D,Wu P,Kuang S Y,Jiang J,Tang L,Tang W N,Zhang Y A,Liu Y,Zhou X Q. 2015. Co-pper-induced tight junction mRNA expression changes,apoptosis and antioxidant responses via NF-κB,TOR and Nrf2 signaling molecules in the gills of fish:Preventive role of arginine[J]. Aquatic Toxicology,158:125-137.
Wang S L,Xu X R,Sun Y X,Liu J L,Li H B. 2013. Heavy metal pollution in coastal areas of South China:A review[J]. Marine Pollution Bulletin,76(1):7-15.
Wang W N,Li B S,Liu J J,Shi L,Alam M,Su S J,Wu J,Wang L,Wang A L. 2012. The respiratory burst activity and expression of catalase in white shrimp,Litopenaeus vannamei,during long-term exposure to pH stress[J]. Ecotoxicology,21(6):1609-1616.
Wei K,Yang J. 2016. Copper-induced oxidative damage to the prophenoloxidase-activating system in the freshwater crayfish Procambarus clarkii[J]. Fish Shellfish Immunology,52:221-229.
Xian J A,Chen X D,Wang A L,Ye J M,Guo H,Miao Y T,Ye C X,Feng L N,Liao S A. 2013. Effects of dietary manganese levels on growth,antioxidant defense and immune responses of the juvenile white shrimp,Litopenaeus vannamei,reared in low salinity water[J]. Fish and Shellfish Immunology,34(6):1747.
Xu X H,Zhang Y Q,Yan B L,Xu J T,Tang Y,Du D D. 2014. Immunological and histological responses to sulfide in the crab Charybdis japonica[J]. Aquatic Toxicology,150(5):144-150.
(責任編輯 羅 麗)