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氟苯尼考對三種豬呼吸道病原菌標準株的體外抗菌類型研究

2017-04-26 03:09:35李先強趙麗劉俊峰郭雪峰江春雨劉永宏
新疆農業科學 2017年3期

李先強,趙麗,劉俊峰,郭雪峰,江春雨,劉永宏

(塔里木大學動物科學學院/新疆生產建設兵團塔里木畜禽科技重點實驗室,新疆阿拉爾 843300)

氟苯尼考對三種豬呼吸道病原菌標準株的體外抗菌類型研究

李先強,趙麗,劉俊峰,郭雪峰,江春雨,劉永宏

(塔里木大學動物科學學院/新疆生產建設兵團塔里木畜禽科技重點實驗室,新疆阿拉爾 843300)

【目的】研究氟苯尼考對常見豬呼吸道病原菌的抗菌類型。【方法】對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌標準株進行最低抑菌濃度(MIC)、最小殺菌濃度(MBC)、抗菌后效應(PAE)的測定和體外殺菌曲線的繪制。【結果】氟苯尼考對上述病原菌的MIC和MBC依次為0.25~0.5 μg/mL和2~4 μg/mL,PAE結果顯示,氟苯尼考對3株病原菌均隨暴露濃度的增大和時間的延長其抗菌后效應明顯延長;體外殺菌曲線表明,氟苯尼考對上述三株病原菌均有很好的抗菌能力,且抗菌效應隨藥物濃度的增大而明顯增強。【結論】氟苯尼考對常見豬呼吸道病原菌的抗菌類型為濃度依賴型。

氟苯尼考;豬呼吸道病原菌;抗菌類型;抗菌后效應;殺菌曲線;濃度依賴型

0 引 言

【研究意義】豬細菌性呼吸道疾病是造成養豬業經濟損失最大的一類傳染性疾病,臨床發病率為10%~45%,死亡率更是高達2%~20%[1]。氟苯尼考因其抗菌譜廣、抗菌活性強、肺部組織濃度高等特點而廣泛的應用于臨床豬呼吸道疾病的防治[2]。【前人研究進展】近年來,伴隨著臨床獸藥的不合理使用導致耐氟苯尼考菌株的大量滋生,為輔助改善這一不良局面,提出了藥動學-藥效學(PK-PD)同步模型以制定科學合理的給藥方案[3]。PK-PD同步模型可以結合抗菌藥物的藥動學和藥效學特征進行綜合研究,將藥物不同形式的體內外過程進行整合并全面地分析藥物、菌株和宿主三者間的相互關系,為抗菌藥物臨床使用的安全性和有效性提供了重要的理論依據[4, 5]。【本研究切入點】根據抗菌藥物與細菌作用類型的不同可將藥物抗菌分為濃度依賴型和時間依賴型兩大類,而時間依賴型又可具體分為長PAE和短PAE[6]。不同類型所對應的PK-PD參數也不同,常用的PK-PD結合參數主要有:Cmax/MIC、AUC/MIC和T>MIC[7, 8]。根據已有研究表明抗菌藥物的抗菌特點與PK-PD參數密切有關[9],且準確的PK-PD參數在PK-PD模型擬合科學合理的給藥方案中占據著重要作用,這就需要準確的判斷抗菌藥物的抗菌類型,目前藥物抗菌類型的判別主要通過體內和半體內殺菌曲線特征[4, 5, 10]。【擬解決的關鍵問題】對三種豬呼吸道病原菌的標準株進行最低抑菌濃度(MIC)、最小殺菌濃度(MBC)、抗菌后效應(PAE)的測定,以及體外殺菌曲線的繪制,準確判斷氟苯尼考對常見豬細菌性呼吸道病原菌的抗菌類型,為PK-PD研究提供準確的PK-PD參數。

1 材料與方法

1.1 材 料

1.1.1 藥品與試劑

氟苯尼考標準品購自中國獸醫藥品監察所,含二甲基甲酰胺的無菌去離子水配成128 μg/mL的藥液置于-20℃冰箱保存備用;MH肉湯、TSA瓊脂、TSB肉湯培養基和NAD均由青島新希望生物科技有限公司生產,按說明書配置;胎牛血清(四季青)購自廣州瑞特生物技術有限公司。

1.1.2 菌種

豬鏈球菌cvcc 3928、豬胸膜肺炎桿菌cvcc 268以及多殺性巴氏桿菌cvcc 388購自中國獸醫藥品檢查所并由實驗室保存。

1.2 方 法

1.2.1 生長曲線的繪制

分別將三種菌液培養所得的種子液100 μL接種于100 mL含有5%胎牛血清及10 μg/mL NAD的TSB培養基錐形瓶中,同時將5%胎牛血清及10 μg/mL NAD的TSB培養基設有空白對照組,置恒溫培養箱(37℃,5%CO2)中培養。每隔2 h抽取1 mL的培養物,用紫外分光光度計在600 nm條件下測定其OD值。以時間為橫坐標,細菌培養物的OD值為縱坐標,繪制三種菌株在TSB培養基中的生長曲線。

1.2.2 MIC、MBC、MPC和PAE的測定

參考CLSI標準(CLSI-M07A8-2010)中的微量肉湯稀釋法分別測定氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌的MIC[2]。在此基礎上根據CLSI標準(M26-AE)中推薦的方法進行MBC的測定。

根據耐藥選擇窗(MSW)理論,按照文獻報道方法進行MPC的測定[4]。配制含氟苯尼考濃度為1、2、4、8、16、32、64 MIC的TSA瓊脂,接種1010CFU/mL菌液100 μL于培養箱(37 ℃,5%CO2)中培養。72 h后無菌落生長的最低氟苯尼考濃度成為MPCpr,根據MPCpr依次線性遞減20%氟苯尼考濃度,配制TSA瓊脂并重復培養,不出現菌落生長的最低藥物濃度即為MPC。

將含氟苯尼考10、20、40 MIC濃度0.2 mL與107CFU/mL菌液1.8 mL混合培養1和2 h,同時進行不含藥物的空白對照。然后將培養液稀釋100倍去除藥物后的菌液和對照菌液各0.5 mL,加入4.5 mL無菌處理的TSB中培養,此為重建后零時。分別于0、1、2、4、6、8、12 h取細菌培養液100 μL進行細菌計數以建立不同濃度處理后各菌液恢復生長的動力學曲線。按照PAE=T-C計算不同濃度的氟苯尼考與豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌接觸1和2 h后的PAE,其中T和C分別為誘導PAE 的實驗組細菌數目高于重建后零時10倍和對照組細菌的數目高于重建后10倍所需要的時間。

1.2.3 體外殺菌曲線的繪制

TSB肉湯稀釋的1/2、1、2、4、8、16、32 MIC濃度的氟苯尼考標準液稀1.5 mL與106CFU/mL的1.5 mL菌液混合于細菌瓶中,無菌TSB培養液中的細菌計數為初始細菌濃度。分別于0、1、2、4、6、8、12、18、24 h抽取培養液0.1 mL稀釋后進行細菌計數三次取平均值。以時間點為橫坐標,不同時間點活菌落數的對數值為縱坐標繪制氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌的殺菌曲線。

2 結果與分析

2.1 生長曲線

研究表明,豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌在TSB肉湯培養基中的生長曲線為,豬鏈球菌和豬胸膜肺炎桿菌在0~3 h為遲緩期,3~10 h處于對數期,10~24 h處于生長穩定期。多殺性巴氏桿菌在0~4 h處于遲緩期,4~12 h為遲緩期,12~24 h為生長穩定期。圖1

圖1 豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌生長曲線(n=3)
Fig.1 The growth curve ofStreptococcussuis,ActinobacilluspleuropneumoniaeandPasteurellamultocida (n=3)

2.2MIC、MBC、MPC和PAE

氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌標準株的MIC、MBC、MPC和PAE測定結果顯示,MIC≤0.5表明氟苯尼考對所選3種豬呼吸道病原菌均較敏感,MBC和MPC依次介于2~4和4~8μg/mL,氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌的耐藥突變窗可依次定為0.25~4、0.5~8和0.25~8μg/mL。表1

氟苯尼考對3種豬呼吸道病原菌的PAE結果相似,均表現出隨暴露氟苯尼考藥物濃度的增大和時間的延長其PAE均明顯延長。相比較于時間的延長,暴露1和2h后PAE的長短與氟苯尼考藥物濃度呈現一定的正相關,隨藥物濃度的增大PAE有逐漸增加的趨勢。PAE試驗表明氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌有著明顯的濃度依賴性。表1

表1 氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌的體外藥敏
Table 1 In vitro antimicrobial susceptibility of florfenicol againstStreptococcussuis,ActinobacilluspleuropneumoniaeandPasteurellamultocida

菌株MIC(μg/mL)MBC(μg/mL)MPC(μg/mL)PAE濃度(μg/mL)Expose(h)Expose(h)豬鏈球菌cvcc39280.2524MIC(0.25)0.20.42MIC(0.5)0.71.04MIC(1)1.21.4豬胸膜肺炎桿菌cvcc2680.528MIC(0.5)0.20.82MIC(1)1.41.84MIC(2)2.02.6多殺性巴氏桿菌cvcc3880.2548MIC(0.25)0.20.62MIC(0.5)0.81.84MIC(1)1.82.4

2.3 氟苯尼考對豬鏈球菌的殺菌曲線

研究表明,32MIC 2 h可將細菌全部殺滅,8MIC 4 h可將細菌全部殺滅,4 MIC 16 h可將細菌全部殺滅,2MIC 24 h可將細菌全部殺滅;而在1/4MIC、1/2MIC、1MIC和2MIC濃度時,24 h內仍不能將細菌全部殺滅。對比0MIC可知不同濃度氟苯尼考對豬鏈球菌均有一定殺滅作用,且殺菌能力隨著濃度的增加抗菌效果逐漸增強,表現出較為明顯的濃度依賴性。圖2

2.4 氟苯尼考對豬胸膜肺炎桿菌的殺菌曲線

研究表明,對比0MIC可知不同濃度氟苯尼考對豬胸膜肺炎桿菌均有一定的殺滅作用,在1/4、1/2、1、2、4、8和 32MIC濃度時,24 h內也不能將細菌全部殺滅。殺菌能力在2MIC以下時隨著暴露時間的延長其抗菌能力逐漸增強,表現出明顯的時間依賴性,而氟苯尼考濃度在2MIC以上時隨著藥物濃度的增大抗菌能力逐漸增強,這又表現出較弱的濃度依賴性特征。圖3

圖2 不同濃度氟苯尼考對豬鏈球菌cvcc 3928殺菌曲線
Fig.2 The killing-curve ofStreptococcussuiscvcc 3928 exposed to various concentration

of florfenicol

圖3 不同濃度氟苯尼考對豬胸膜肺炎桿菌cvcc 268殺菌曲線
Fig.3 The killing-curve ofActinobacilluspleuropneumoniaecvcc 268 exposed to various concentration of florfenicol

2.5 氟苯尼考對多殺性巴氏桿菌的殺菌曲線

研究表明,32MIC 1 h可將細菌全部殺滅,8MIC 2 h可將細菌全部殺滅,4 MIC 8 h可將細菌全部殺滅,2MIC 24 h可將細菌全部殺滅;而在1/4、1/2、1和2MIC濃度時,24 h內也不能將細菌全部殺滅。對比0MIC可知不同濃度氟苯尼考對多殺性巴氏桿菌均有一定殺滅作用,且殺菌能力隨著濃度的增加抗菌效果逐漸增強,說明氟苯尼考對多殺性巴氏桿菌的抗菌作用呈現明顯的濃度依賴性。圖4

圖4 不同濃度氟苯尼考對多殺性巴氏桿菌cvcc388殺菌曲線
Fig.4 The killing-curve ofPasteurellamultocidacvcc388 exposed to various concentration of florfenicol

3 討 論

氟苯尼考對試驗所選取的三種常見豬呼吸道病原菌標準株的MIC≤0.5 μg/mL,表明敏感性較好。Ueda等[11]報道了氟苯尼考對90株臨床分離的豬胸膜肺炎桿菌的MIC50值為0.39 μg/mL,Sung等[12]測定了氟苯尼考對臨床豬源和牛源的胸膜肺炎桿菌MIC90≤1 μg/mL,Saskia等[13]分析了臨床756株多殺性巴氏桿菌等常見呼吸道病原菌對氟苯尼考的MIC均≤2 μg/mL。另外,現有PK-PD模型研究表明抗菌藥對病原菌的敏感折點值(Cutoff)常分布在0.25 μg/mL左右[14-16]。試驗雖沒有進行氟苯尼考對相關病原菌的群體藥效學研究,但從MIC測定值來看研究所選取的標準菌是具有一定合理性的,可用于氟苯尼考對常見豬呼吸道病原菌標準株的抗菌類型分析。

防止病原菌被選擇性富集和擴增所需的最低抗菌藥物濃度可定義為防突變濃度,常用于評價抗菌藥物抗菌效力和抑制耐藥突變菌株生長能力[17],通常把MIC與MPC 之間的濃度范圍定義為耐藥突變窗(MSW)。研究表明,MPC值介于4~8 μg/mL,可初步將氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌的耐藥突變窗可依次定為0.25~4、0.5~8和0.25~8 μg/mL。

體內外抗菌曲線是目前判定抗菌藥抗菌類型最常用的方法[4, 5, 10, 15],研究表明,氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌及多殺性巴氏桿菌的抗菌能力均隨著藥物濃度的增大而增強,顯示出了氟苯尼考對常見豬呼吸道病原菌具有很強的濃度依賴性。Sidhu等[18]報道了氟苯尼考對牛源多殺性巴氏桿菌具有明顯的濃度依賴,Potter等[19]也分析出氟苯尼考具有很強的濃度依賴性,均與研究結果一致。濃度依賴性藥物的抗菌效果與血藥濃度成正比[20],這就提示臨床使用氟苯尼考時應適當提高氟苯尼考的血藥濃度,而不宜延長氟苯尼考的給藥時間,這就提示在臨床上長期使用氟苯尼考防治畜禽呼吸道疾病效果不佳時可考慮換用其他藥物或應用氟苯尼考聯合用藥。另外,如果氟苯尼考的臨床給藥間隔過小而長時間給藥導致動物機體內長時間存在亞劑量的氟苯尼考濃度,便會極大的增加病原菌對氟苯尼考的耐藥風險。

4 結 論

PAE結果顯示氟苯尼考對豬鏈球菌、豬胸膜肺炎桿菌以及多殺性巴氏桿菌均隨暴露濃度的增大和時間的延長其抗菌后效應明顯延長,體外殺菌曲線表明氟苯尼考對病原菌的抗菌效應隨藥物濃度的增大而明顯增強。初步斷定氟苯尼考對常見豬呼吸道病原菌的抗菌類型為濃度依賴型。

References)

[1] Hansen, M. S., Pors, S. E., Jensen, H. E., Bille-Hansen, V., Bisgaard, M., & Flachs, E. M., et al. (2010). An investigation of the pathology and pathogens associated with porcine respiratory disease complex in denmark.JournalofComparativePathology, 143(3):120-131.

[2] Li, X., Xie, S., Pan, Y., Wei, Q., Tao, Y., & Chen, D., et al. (2016). Preparation, characterization and pharmacokinetics of doxycycline hydrochloride and florfenicol polyvinylpyrroliddone microparticle entrapped with hydroxypropyl-β-cyclodextrin inclusion complexes suspension.Colloids&SurfacesBBiointerfaces, 141:634-642.

[3] Xiao, X., Sun, J., Chen, Y., Huang, R. J., Huang, T., & Qiao, G. G., et al. (2015). In vitro, dynamic pharmacokinetic/pharmacodynamic(pk/pd) modeling and pk/pd cutoff of cefquinome against haemophilus parasuis.BMCVeterinaryResearch, 11(1): 1-7.

[4]Sang, K., Hao, H., Huang, L., Wang, X., & Yuan, Z. (2015). Pharmacokinetic-pharmacodynamic modeling of enrofloxacin against escherichia coli in broilers.FrontiersinVeterinaryScience, 2(7).

[5] Wang, J., Hao, H., Huang, L., Liu, Z., Chen, D., & Yuan, Z. (2016). Pharmacokinetic and pharmacodynamic integration and modeling of enrofloxacin in swine for escherichia coli.FrontiersinMicrobiology, 7.

[6] Zhang, B. X., Lu, X. X., Gu, X. Y., Li, X. H., Gu, M. X., & Zhang, N., et al. (2014). Pharmacokinetics and ex vivo pharmacodynamics of cefquinome in porcine serum and tissue cage fluids.VeterinaryJournal, 199(3): 399-405.

[7] Barbour, A. M., Schmidt, S., Zhuang, L., Rand, K., & Derendorf, H. (2014). Application of pharmacokinetic/pharmacodynamic modelling and simulation for the prediction of target attainment of ceftobiprole against meticillin-resistant staphylococcus aureus using minimum inhibitory concentration and time-kill curve based approaches.InternationalJournalofAntimicrobialAgents, 43(1):60-67.

[8] Mckellar, Q. A., Sanchez Bruni, S. F., & Jones, D. G. (2004). Pharmacokinetic/pharmacodynamic relationships of antimicrobial drugs used in veterinary medicine.JournalofVeterinaryPharmacologyandTherapeutics, 27(6): 503-514.

[9] Potter, T., Illambas, J., Pelligand, L., Rycroft, A., & Lees, P. (2013). Pharmacokinetic and pharmacodynamic integration and modelling of marbofloxacin in calves for mannheimia haemolytica and pasteurella multocida.VeterinaryJournal, 195(1):53-58.

[10] Ahmad, I., Hao, H., Huang, L., Sanders, P., Xu, W., & Chen, D., et al. (2015). Integration of pk/pd for dose optimization of cefquinome against staphylococcus aureus causing septicemia in cattle.FrontiersinMicrobiology, (6): 588.

[11] Ueda, Y., & Suenaga, I. (1995). In vitro antibacterial activity of florfenicol against actinobacillus pleuropneumoniae.JournalofVeterinaryMedicalScience, 57(2):363-364.

[12] Shin, S. J., Kang, S. G., Nabin, R., Kang, M. L., & Yoo, H. S. (2005). Evaluation of the antimicrobial activity of florfenicol against bacteria isolated from bovine and porcine respiratory disease.VeterinaryMicrobiology, 106(1-2): 73-77.

[13] Priebe, S., & Schwarz, S. (2003). In vitro activities of florfenicol against bovine and porcine respiratory tract pathogens.AntimicrobialAgents&Chemotherapy, 47(8):2,703-2,705.

[14] Maaland, M. G., Papich, M. G., Turnidge, J., & Guardabassi, L. (2013). Pharmacodynamics of doxycycline and tetracycline against staphylococcus pseudintermedius: proposal of canine-specific breakpoints for doxycycline.JournalofClinicalMicrobiology, 51(11):3,547-3,554.

[15] Zhang, P., Hao, H., Li, J., Ahmad, I., Cheng, G., & Chen, D., et al. (2016). The epidemiologic and pharmacodynamic cutoff values of tilmicosin against haemophilus parasuis.FrontiersinMicrobiology,(7).

[16] Papich, M. G. (2014). Pharmacokinetic-pharmacodynamic (pk-pd) modeling and the rational selection of dosage regimes for the prudent use of antimicrobial drugs ☆.VeterinaryMicrobiology, 171(4): 480-486.

[17] Zhou, J., Dong, Y., Zhao, X., Lee, S., Amin, A., & Ramaswamy, S., et al. (2000). Selection of antibiotic-resistant bacterial mutants: allelic diversity among fluoroquinolone-resistant mutations.TheJournalofInfectiousDiseases, 182(2):517-525.

[18] Sidhu P, Rassouli A, Illambas J, Potter T, Pelligand L, Rycroft A, et al (2014). Pharmacokinetic-pharmacodynamic integration and modelling of florfenicol in calves.JournalofVeterinaryPharmacologyandTherapeutics, 37(3): 231-242.

[19] Potter, T. J., Illambas, J., Sidhu, P. K., Rassouli, A., Rycroft, A., & Lees, P. (2010). Integration of pharmacokinetic and pharmacodynamic data for florfenicol in calves.JournalofVeterinaryInternalMedicine, 24(3): 716-716.

[20] Sargsyan, H., Gabrielyan, L., & Trchounian, A. (2014). Concentration-dependent effects of metronidazole, inhibiting nitrogenase, on hydrogen photoproduction and proton-translocating atpase activity of rhodobacter sphaeroides.InternationalJournalofHydrogenEnergy, 39(1): 100-106.

[21] Ahmad, I., Huang, L., Hao, H., Sanders, P., & Yuan, Z. (2016). Application of pk/pd modeling in veterinary field: dose optimization and drug resistance prediction.BiomedResearchInternational, (8):1-12.

[22] Rottb?ll, L. A., Skovgaard, K., Barington, K., Jensen, H. E., & Friis, C. (2015). Intrabronchial microdialysis: effects of probe localization on tissue trauma and drug penetration into the pulmonary epithelial lining fluid.Basic&ClinicalPharmacology&Toxicology, 117(4): 19-21.

Supported by: National Natural Science Fundation "Pharmacokinetic and pharmacodynamic integration and modeling of florfenicol in swine for Streptococcus suis" (31660729); Tarim University president's Fund-Youth Innovation Fund Project "Preparation and characterizationof florfenicol inclusion complexes nanosuspension"(TDZKQN201603)

In Vitro Study on Antimicrobial Type of Florfenicol against Three Standard Porcine Respiratory Pathogens

LI Xian-qiang, ZHAO Li, LIU Jun-feng, GUO Xun-feng, JIANG Chun-yu, LIU Yong-hong

(KeyLaboratoryofTarimAnimalHusbandryScienceandTechnology,XinjaingProductionandConstructionCorps/CollegeofAnimalScience,TarimUniversity,AlarXinjiang843300,China)

【Objective】 The purpose of the present study is to investigate the antimicrobial type of florfenicol against the main primary causative bacteria of pig pneumonia. 【Method】The minimum inhibitory concentration (MIC), minimal bactericidal concentration (MBC) and post-antibiotic effect (PAE) of florfenicol againstStreptococcussuis,PasteurellamultocidaandActinobacilluspleuropneumoniaewere determined. 【Result】The MIC and MBC of florfenicol against the above pathogenic bacterias were 0.25~0.5 μg/mL and 2~4 μg/mL, respectively. The results have shown that the PAE increased with the increasing of drug concentration and extension of expose time, and time-kill curve also demonstrated that the antibacterial ability increased with the increasing of florfenicol concentration. 【Conclusion】According to the results of PAE and time-kill curve in this study, we concluded that the florfenicol is typically concentration dependent against the main primary causative bacteria.

florfenicol; pig respiratory pathogens; antimicrobial type; post antibiotic effect; time-kill curve; concentration dependent

10.6048/j.issn.1001-4330.2017.03.021

2016-11-18

國家自然科學基金“氟苯尼考對豬鏈球菌的藥動學-藥效學同步模型研究”(31660729);塔里木大學校長基金-青年創新資金項目“氟苯尼考包合物微球納米混懸劑的制備”(TDZKQN201603)

李先強(1989-),男,安徽馬鞍山人,講師,研究方向為獸醫藥理學及藥動學,(E-mail)lixianqiang89@sina.com

劉永宏(1981-),男,內蒙古武川人,副教授,博士,研究方向為家畜病理學和臨床疾病診治,(E-mail)lyhdky@126.com

S855.3

A

1001-4330(2017)03-0557-07

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