,2*(.四川農業大學動物醫學院 動物生物技術中心,四川 成都 630;2. 四川農業大學動物醫學院 動物疫病與人類健康四川省重點實驗室,四川 成都 630)
2014—2016年四川省豬瘟、豬繁殖與呼吸綜合征病毒的血清學調查
楊 凡1,呂文婷1,許思遙1,毛汐語1,殷 玥1,徐志文1,2*
(1.四川農業大學動物醫學院 動物生物技術中心,四川 成都 611130;2. 四川農業大學動物醫學院 動物疫病與人類健康四川省重點實驗室,四川 成都 611130)

欄目協辦
為掌握近年來四川省現有防控體系下豬瘟(CSF)、豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)的感染和流行情況,對2014年1月—2016年6月采集于四川省共16個地區的6 489份血樣,運用 ELISA方法進行CSFV和PRRSV血清學調查。結果顯示,2014—2016年CSFV抗體陽性率分別為78.70%、80.25%和82.08%,PRRSV抗體陽性率分別為75.97%、87.16%和88.31%;綿陽、眉山、樂山和宜賓等地的CSFV或PRRSV抗體水平低于60%,與另一種相比差異較大,可能存在免疫干擾或野毒感染;哺乳仔豬和斷奶仔豬的CSFV抗體陽性率偏低,各日齡段豬群PRRSV抗體水平較理想。結果提示,四川地區豬群的CSFV、PRRSV抗體陽性率良莠不齊,有必要對飼養管理方式和免疫程序等做適當調整,以防控臨床野毒的感染。
豬瘟;豬繁殖與呼吸綜合征;ELISA;血清學調查
豬瘟(Classical swine fever, CSF)和豬繁殖與呼吸綜合征(Porcine repro ductive and respiratory syndrome, P RRS)是危害我國養豬業的重大病毒性傳染病,均可引起母豬繁殖障礙、仔豬高發病率和死亡率、隱性感染豬生長不佳等癥狀[1,2],豬場一旦感染發病將損失慘重。為掌握四川省現有防控體系下CSFV和PRRSV的感染和免疫情況,本研究對2014年1月-2016年6月采集自成都、眉山和遂寧等四川省共16個地區的大/中/小型養殖場、散養戶和屠宰場的6 489份血清樣品,以IDEXX公司ELISA抗體檢測試劑盒開展CSFV和PRRSV血清學調查工作,為科學防控疫病感染提供依據,為后期開展流行病學調查奠定基礎。
1.1 樣品來源
本研究于2014年1月—2016年6月,從成都、眉山和遂寧等四川省共16個地區的大/中/小型養殖場、散養戶和屠宰場共采集血清樣品6 489份(大豬前腔靜脈采血,仔豬耳緣靜脈采血),其中哺乳仔豬857份,斷奶仔豬724份,保育豬1 446份,育肥豬697份,經產母豬1 963份,后備母豬375份,種公豬427份。
將采集血樣于室溫靜置1 h[3],析出血清后,轉移至滅菌EP管中,盡快送回實驗室檢測。
1.2 主要材料與試劑
IDEXX-CSFV/PRRSV抗 體檢測試劑盒(四川佑策農業技術咨詢有限公司);BIO-RAD酶標儀(成都百樂科技有限公司);Thermo Micro21R微量離心機(賽默飛成都分公司);10/200/1000 μL單道微量加樣器(賽默飛成都分公司)。
1.3 CSFV抗體檢測
嚴格按照IDEXX-CSFV抗體檢測試劑盒說明書操作,運用阻斷ELISA方法檢測待檢血清中的CSFV抗體。僅當陰性對照的平均A450值大于0.50,陽性對照的阻斷率大于50%,試驗結果才成立。阻斷率=(陰性對照平均A450值-樣品A450值)/陰性對照平均A450值×100%。若被檢樣品阻斷率≤30%,判定該樣品為CSFV抗體陰性;若被檢樣品阻斷率≥40%,判定該樣品為CSFV抗體陽性;若阻斷率介于30%和40%之間,檢測結果可疑,需重新測定。
1.4 PRRSV抗體檢測
嚴格按照IDEXX-PRRSV抗體檢測試劑盒說明書操作,運用間接ELISA方法檢測待檢血清中的PRRSV抗體。當陽性對照的平均A650值減去陰性對照的平均A650值大于或等于0.150,且陰性對照的平均A650值小于或等于0.150,試驗結果才可信。S/P值=(樣本A650值-陰性對照平均A650值)/(陽性對照平均A650值-陰性對照平均A650值)。若被檢樣品S/P值<0.40,判定該樣品為PRRSV抗體陰性;若被檢樣品阻斷率≥0.40,判定該樣品為PRRSV抗體陽性。
2.1 2014-2016年四川省血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果
對采集2014年(2 301份)、2015年(2 648份)和2016年(1 540份)的血清樣品分別進行CSFV和PRRSV抗體檢測,發現近年來CSFV、PRRSV血清抗體陽性率呈現緩慢增長,2016年達到82.08%和88.31%(表1、圖1),且兩者平均抗體水平相差不大,從一定層面反映出目前四川地區大多數養殖場已逐漸重視和加強對CSFV和PRRSV的防控。

圖1 四川省不同年份血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果

圖2 四川省不同地區血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果

表1 2014-2016年四川省血清樣品的抗體檢測結果

表2 四川省不同地區血清樣品的抗體檢測結果
2.2 四川省不同地區豬群血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果
統計四川成都、眉山和遂寧等共16個地區的大/中/小型養殖場、散養戶和屠宰場血清樣品的CSFV和PRRSV抗體檢測結果(表2、圖2),發現阿壩州CSFV和PRRSV血清抗體陽性率均達100%;樂山、德陽的CSFV抗體陽性率最低僅達55.52%和65.57%;南充、廣安和攀枝花的PRRSV陽性率達100%,而宜賓、綿陽和眉山的抗體陽性率僅為51.61%、54.10%和59.58%。綜合比對各地區的CSFV和PRRSV抗體陽性率,發現綿陽、眉山、樂山和宜賓共4個地區的CSFV和PRRSV抗體水平差異約達20%以上,考慮到各地區、各階段豬群基本按等比例采樣,不排除有兩種疫苗的免疫干擾或野毒感染的可能性。
2.3 不同日齡豬群血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果
比對不同日齡豬群血清樣品的CSFV和PRRSV抗體檢測結果(表3、圖3),從哺乳仔豬和斷奶仔豬來看,由于喂食初乳或實行超前免疫(一般為PRRSV),所以抗體陽性率可達65%以上,隨著母源抗體的衰減,CSFV抗體水平會在21~30 d左右降到低谷,此時經首免后回升;而PRRSV抗體水平在此階段相對較高,超前免疫和母源抗體都起到一定作用。隨后豬群進入保育豬和育肥豬階段,此時可選后備豬供生殖繁育,豬只在此階段由于二免(部分豬場可做三免)其體內抗體水平可持續上升,包括先前部分免疫失敗或免疫質量差的豬。經產母豬和種公豬其CSF一般施行普免和跟胎免疫,PRRS疫苗則不免,以防引起新生胎兒帶毒感染,因而此時CSFV抗體水平相對較高。
CSF是由世界動物衛生組織(OIE)定性的A類傳染病,急性型可導致感染豬迅速死亡,慢性型和遲發型主要影響生長發育,感染豬可長期向外排毒。我國于1955年研發的兔化弱毒苗在CSF的控制和凈化上做出了很大貢獻,但近幾年非典型CSF的出現給養豬業帶來了極大挑戰。機體的細胞免疫應答可能因為感染豬的胸腺萎縮而被抑制[4],同時由CSFV弱毒持續隱性感染形成的疫苗免疫耐受[5,6]而導致的中和抗體滴度低于保護水平,最終導致CSF免疫失敗。PRRS最早是在20世紀80年代末期的美國中西部發現,國內首株病毒是由郭寶清于1996年在流產胎兒中分離獲得。PRRSV有經典藍耳(C-PRRSV)和高致病性藍耳(H-PRRSV)之分,國內的H-PRRSV分離株在NSP2蛋白上相對于經典株均有將近30個氨基酸殘基的缺失,其他蛋白基因位點也存在一定變異[7]。有研究表明,PRRSV弱毒疫苗在感染豬體內增殖時可朝H-PRRSV定向突變,且自然環境中的PRRSV野毒之間、疫苗毒和野毒之間都存在一定的重組現象[8],這些變異均可能提高PRRSV的致病力,以抵抗機體免疫。PRRSV可靶向侵染豬的肺泡巨噬細胞,或在感染早期通過誘導分化抑制性T細胞來克制輔助性T細胞的活性,間接阻遏機體細胞免疫,以此引起免疫抑制[9],使病毒進一步逃脫機體免疫。正是這一系列免疫逃避機制,形成了CSFV和PRRSV兩種病毒對我國養豬業的威脅。

表3 不同日齡豬群血清樣品的抗體檢測結果

圖3 不同日齡豬群血清樣品的CSFV、PRRSV抗體檢測結果
同時,CSFV和PRRSV常形成混合感染。2008年王波等[10]對陜西省收集的146份樣品進行CSFV、PRRSV、PRV和PCV2病原檢測,發現“CSFV+PRRSV”混合感染率高達25%;2011年舒相華等[11]對云南收集的1 164份血清樣品應用ELISA和RT-PCR進行PRV gE、PCV2抗體和CSFV、PRRSV抗原檢測,結果發現“CSFV+PRRSV”混合感染率達5.79%;2014年,張裕祺[12]對江西地區546份保育豬樣品進行CSFV、PRRSV、PCV2和PRV分子流行病學調查,發現“CSFV+PRRSV”感染率達31.8%。由此可見,二者混合感染的形勢也不容小覷。
針對CSFV和PRRSV免疫抑制和混合感染對養豬業造成的巨大威脅,科學合理的免疫防控措施舉足輕重,而ELISA技術可準確反映出機體免疫或疾病的感染狀況,被用作日常監測豬群抗體水平的首選方法。此次對四川省成都、眉山和遂寧等共16個地區的大/中/小型養殖場、散養戶和屠宰場的6 489份血清樣品進行CSFV和PRRSV抗體檢測,發現在2014—2016年內兩者抗體陽性率均在70%以上,達到農業部基本要求,且呈逐年上升趨勢,一定程度反映出四川地區養殖業對二者防控的日漸重視。
從單一層面看不同地區的調查結果,樂山和德陽地區CSFV免疫效果較差,宜賓、綿陽和眉山地區的PRRSV免疫效果較差;綜合看來,綿陽、眉山、樂山和宜賓共4個地區的CSFV和PRRSV抗體水平差異過大(20%以上)。據此分析可能有2個原因:一方面是免疫程序、疫苗質量和飼養管理等問題,另一方面可能由于兩者免疫時間間隔不合理,從而導致免疫干擾現象的產生,甚至有野毒隱性感染,在臨床生產中應當加強重視、注意調整。
對于不同日齡豬群的檢測結果,可通過與臨床檢測血清樣品的平均陽性率范圍相比較,大致評估CSFV和PRRSV的免疫和感染情況。就CSFV分析,哺乳仔豬和斷奶仔豬在30 d左右豬群抗體陽性率可能在20%左右(母源抗體衰減),若陽性率高達80%以上,考慮有野毒感染,也不排除垂直傳播感染;隨著日齡的不斷增加,保育豬、育肥豬、后備豬經過二免,經產母豬和種公豬經普免,體內抗體可達到較高水平,群體陽性率自然會升高,若出現陽性率較低的狀況,則應當考慮免疫不合格。就PRRSV抗體水平分析,很多豬場對新生仔豬實行超前免疫,加上一直從初乳中獲得天然被動免疫,哺乳仔豬和斷奶仔豬出現較高抗體陽性率應屬正常;經產母豬和種公豬由于未免PRRSV弱毒疫苗,其抗體陽性率維持在70%左右比較合理。目前臨床上使用的CSFV和PRRSV抗體檢測試劑盒尚無法區分疫苗抗體和野毒抗體,若想避免病毒垂直傳播給胎兒,可活體采集扁桃體樣本或公豬精液進行RT-PCR檢測,從而淘汰隱性感染豬。
總體來看四川地區的CSFV和PRRSV免疫效果并不樂觀,可適當調整免疫程序和飼養管理模式。從疫苗上講,要甄選疫苗種類、嚴格把控疫苗質量(抗原含量是否達標、疫苗是否真空、是否從正規渠道購買)等,市售的疫苗種類繁多、免疫效果不盡相同,比如用于CSFV免疫的細胞苗和脾淋苗[13]、用于PRRSV防疫的弱毒苗和滅活苗[14],應當結合臨床免疫效果進行篩選或者混合使用,但值得注意的是PRRSV弱毒疫苗可能存在毒力返強和垂直傳播的風險,因此對于無PRRSV豬場和經產母豬、后備母豬及種公豬應當慎用。疫苗的使用劑量也尤為重要,劑量過低無法刺激機體產生合格的中和抗體水平,劑量太高容易導致豬只后期免疫耐受。從免疫時間上講,豬場可借助ELISA方法監測仔豬母源抗體消長規律以確定首免、二免等日齡,并定期采血監測抗體水平以進行補免,同時考慮到兩種疫苗之間的免疫干擾[15],可間隔7 d以上免疫,且PRRSV疫苗可先于CSFV疫苗免疫。從飼養管理方面講,養殖人員應當合理搭配日糧,做好圈舍的日常清洗消毒工作,實時觀測記錄豬群生長情況以利于及時防控疫情、防止繼發感染;對不同日齡段豬群,甚至不同胎次仔豬,嚴格分群飼養,避免種豬垂直傳播CSFV或PRRSV造成隱性感染豬只,再經排毒感染其他健康豬群;飼養豬只全進全出,避免交叉感染;待引進豬只應當隔離飼養并做好疫病檢測工作,防止引入外來病原;定期開展血清學抗體監測工作,對抗體水平不合格豬只及時補免,防止出現免疫空窗期。
參考文獻
[1] 劉坤,蘭鄒然,姜平. 豬瘟病毒分子生物學及檢測技術研究進展[J]. 動物醫學進展,2012,33(10): 99-104.
[2] 黃庭汝,孫彥偉,宋長緒,等. 豬偽狂犬病、豬瘟、豬繁殖與呼吸綜合征、圓環病毒2型的相關性研究[J].華南農業大學學報,2009,30(2): 94-96.
[3] 張麗娟,張桂芳,于憲倉,等.動物的血樣采集和血清分離技術[J].中國動物保健,2011(7):33-34.
[4] EJ V D M, VAN OIRSCHOT J T. Congenital persistent swine fever (hog cholera).I.Pathomorphological lesions in lymphoid tissues, kidney and adrenal[J]. Journal of Veterinary Medicine,1981,28(2):89-101.
[5] OIRSCHOT J T V. Persistent and inapparent infections with swine fever virus of low virulence: Their eff e c t s o n t h e i m m u n e s y stem[D]. State Univ Utrecht,1980.
[6] 寧宜寶,王琴,丘惠深,等. 豬瘟病毒持續感染對母豬繁殖性能及仔豬豬瘟疫苗免疫效力的影響[J].畜牧獸醫學報,2004, 35(4): 449-453.
[7] 李建玲,楊小亮. 高致病性豬藍耳病的研究進展[J].中國獸醫雜志,2014,50(6):61-63.
[8] 張青嫻,王克領,張立憲,等.高致病性藍耳病的研究進展[J]. 中國畜牧獸醫,2008,35(9):105-107.
[9] LUNNEY J K, FANG Y, LADINEG A, et al. Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus (PRRSV): Pathogenesis and Interaction with the Immune System[J]. Annual Review of Animal Biosciences, 2016, 4(1): 129-154.
[10] 王波,張鵬,楊增岐,等. 陜西省PRRSV與CSFV、PCV2、PRV混 合感染的檢測[J].西北農業學報,2009,18(5):27-30.
[11] 舒相華,尹革芬,楊志雷,等. 云南地區部分豬場豬呼吸道疾病綜合癥(PRDC)患病豬群中PRRSV、PCV2、CSFV、PRV混合感染調查[J].云南農業大學學報,2011, 26(1): 54-58.
[12] 張裕祺. 2014年江西地區保育豬CSFV、PRRSV、PCV2和PRV的分子流行病學調查[D].南昌:江西農業大學, 2015.
[13] 冷和平,鐘超武,曾俊霞,等. 豬瘟細胞苗與脾淋苗的免疫效果對比試驗[J]. 養豬, 2009(5): 73-74.
[14] 吳佳俊,趙婷,遇秀玲,等. 豬繁殖與呼吸綜合征弱毒疫苗研究進展[J]. 中國預防獸醫學報, 2010, 32(8): 650-654.
[15] 杜喜忠,胡旭進,樓芳芳,等.豬瘟和藍耳病母源抗體消長規律及疫苗免疫的干擾作用[J].浙江農業科學,2010 (5):1118-1120.
2016-10-22)
四川省科技支撐計劃(2014NZ0043)。
楊凡(1992-),男,漢族,四川南充,在讀碩士研究生,主要從事動物傳染病病原分子生物學研究。
徐志文,Tel: 13981604765;E-mail: abtcxzw@126.com。