廖建坤,何玉華,陳亞平
武警廣東省總隊醫(yī)院番禺院區(qū)急診科,廣東廣州511430
水通道蛋白 44在大鼠腦缺血再灌注后腦水腫中的變化及意義
廖建坤,何玉華,陳亞平
武警廣東省總隊醫(yī)院番禺院區(qū)急診科,廣東廣州511430
目的基于大鼠局灶性腦損傷缺血再灌注模型,觀察水通道蛋白4(AQP4)、蛋白激酶C(PKC)的表達水平變化與腦水腫的關(guān)系。方法線栓法復制大腦中動脈缺血再灌注模型,大鼠隨機分為正常對照組、假手術(shù)組和缺血再灌注(CIR)組。通過綠色熒光蛋白GFP標識的AQP4示蹤系統(tǒng)評價大鼠星形膠質(zhì)細胞的水通透性,同時檢測腦組織含水量和進行神經(jīng)功能缺損評分。AQP4和PKC的表達使用免疫組織化學方法檢測。結(jié)果CIR后6 h大鼠開始出現(xiàn)神經(jīng)功能缺損,腦組織含水量在CIR 12 h明顯升高,24 h~3 d時達到高峰;AQP4表達在早期水平降低,從12 h逐漸升高,至CIR 24 h明顯升高,3 d達高峰;PKC在CIR 6 h后緩慢增加,連續(xù)5 d維持較高水平。結(jié)論腦水腫可能和PKC、AQP4的升高相關(guān),PKC可能在CIR早期通過磷酸化AQP4以降低AQP4的表達以延緩腦水腫進程。
水通道蛋白4;蛋白激酶C;水通透性;腦水腫
外傷性腦水腫通常繼發(fā)于腦挫裂傷,腦出血病灶之中,同時也是造成顱內(nèi)高壓、腦疝以及創(chuàng)傷傷殘的主要原因,如何減輕該情況的發(fā)生,一直是神經(jīng)外科、急診科的研究方向。顱腦損傷后腦水腫的形成有多種細胞信號參與[1-5],這些細胞信號之間的關(guān)聯(lián)研究是當前國內(nèi)外的熱點和難點。已有研究表明水通道蛋白4(AQP4)、蛋白激酶C(PKC)與腦水腫關(guān)系密切[6-9]。但PKC與AQP4在腦水腫變化各個階段的關(guān)聯(lián)研究鮮見文獻報道。本實驗通過觀察大鼠大腦中動脈缺血再灌注(MCAO/R)模型AQP4、PKC的不同時相動態(tài)變化與腦水腫的關(guān)系,進一步闡明AQP4在腦水腫發(fā)生發(fā)展中的作用及其機理,為今后顱腦損傷的治療提供理論依據(jù)。
1.1 實驗對象
大鼠144只(南方醫(yī)科大學實驗動物養(yǎng)殖中心提供),鼠齡,4~5個月,體質(zhì)量300~330 g,等級:cl,出現(xiàn)的死亡及神經(jīng)功能評分未達要求者由備用組補充,實驗動物隨機對照分為3組:正常對照組、假手術(shù)組、缺血再灌注(CIR)組。缺血再灌注組分別在6、12 h、1、3、5 d給予免疫組織化學染色及腦組織含水量檢測,每時間點12只大鼠;正常對照組和假手術(shù)組每6只大鼠亦分別給予免疫組織化學染色及腦組織含水量測量。
1.2 試劑和儀器
國產(chǎn)手術(shù)顯微鏡與光學顯微鏡、80~100°C干燥箱、免抗鼠單克隆體PKC、生物素化二抗、SABC免疫組化試劑盒。鈣黃綠素-AM、pMD?20-T Vector、特異性PCR引物、硅膠模型TM質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒。
1.3 方法
線栓法制作大鼠大腦MCAO/R模型,缺血2 h后再灌注。假手術(shù)組實施相同手術(shù),線栓置入深度<10 mm。神經(jīng)功能評分采用Garcia JH法[10],依照Elliot公式計算腦組織含水量。SABC行免疫組化染色用于檢測PKC、AQP4的表達水平。以GFP-C1-AQP4-M23的 CTX-TNA2細胞為觀察對象,記錄GFP熒光圖像并進行圖像重建,了解AQP4在星形膠質(zhì)細胞膜上的分布。試驗數(shù)據(jù)采用統(tǒng)計分析軟件SPSS 19.0分析并進行統(tǒng)計學處理,多組均數(shù)間比較用q檢驗,雙變量關(guān)系用相關(guān)分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
分析3組觀察指標AQP4、PKC、腦含水量及神經(jīng)功能缺損評分情況(表1),因?qū)φ战M組與假手術(shù)組在6、12 h、1、3、5 d這5個時間節(jié)點的數(shù)據(jù)差異無統(tǒng)計學意義,故只選擇6 h這一時間節(jié)點值與CIR組進行比較。
表1 3組各觀察指標的變化(±s)

表1 3組各觀察指標的變化(±s)
*P<0.05 vs對照組.
分組CIR組6 h CIR組12 h CIR組24 h CIR組3 d CIR組5 d對照組假手術(shù)組F P例數(shù)(n)24 24 24 24 24 12 12 AQP4 2.90±0.55* 4.30±0.53 5.30±0.52* 6.30±0.53* 6.17±0.42* 3.89±0.12 3.62±0.53 21.5<0.05 PKC 5.49±0.53* 5.51±0.45* 5.95±0.81* 6.21±0.85* 6.42±0.53* 4.10±0.02 3.65±0.59 32.4<0.05腦含水量(%)79.12±0.31 80.16±0.21* 82.59±0.78* 82.87±0.56* 83.15±0.72* 77.98±0.48 77.69±0.53 18.3<0.05神經(jīng)功能缺損評分10.92±0.72* 10.21±0.77* 9.19±2.16* 8.12±2.11* 10.29±1.11* 18.32±0.13 17.65±0.54 85.7<0.01
缺血致腦水腫的發(fā)病機理十分復雜,AQP4、PKC等細胞信號在腦缺血再灌注不同階段的表達升高與腦水腫形成有關(guān)。大腦星形膠質(zhì)細胞的關(guān)鍵作用是調(diào)節(jié)腦內(nèi)水平衡[11-13],可能是表達于星形膠質(zhì)細胞的AQP4因其水通透性改變而釋放入腦組織,水通過AQP的轉(zhuǎn)運快速入腦。AQP4在中樞廣泛分布,與中樞水代謝的調(diào)節(jié)密切相關(guān),參與腦損傷等繼發(fā)腦水腫的形成過程[14]。本研究中CIR組除6 h檢測AQP4含量顯著低于正常對照組和假手術(shù)組外,其余12、24 h、3、5 d這4個時間節(jié)點AQP4的含量均高于對照組,3 d達到峰值,5 d下降不多。分析其原因,可能是缺血再灌注造成了大鼠大腦的持續(xù)性損傷,這種損傷隨時間的延續(xù)有加重的傾向。
PKC的表達變化情況也和AQP4相似,6、12、24 h、3、5 d這5個時間節(jié)點的含量持續(xù)且明顯增加,到第5天達到最高水平。與此情況相似的還有神經(jīng)功能缺損評分,在相同的時間節(jié)點評分持續(xù)且明顯增加,說明神經(jīng)功能缺損5 d達到高峰。AQP4、PKC和神經(jīng)功能缺損評分的同向增加是否說明AQP4與PKC在腦水腫中具有疊加效應尚不得而知。AQP4與PKC之間可能存在的關(guān)聯(lián)也不清楚。有關(guān)研究表明:PKC可使AQP4磷酸化以達到調(diào)節(jié)AQP4活性的目的[15]。Manley[12]發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)的大鼠星形膠質(zhì)細胞敲除AQP4基因后水的通透性比正常星形膠質(zhì)細胞水通透性降低了7.1倍,本實驗早期也發(fā)現(xiàn)AQP4明顯低于正常對照組。鑒于PKC可使AQP4磷酸化而失活,早期AQP4水平降低可能表明PKC對AQP4活性的抑制效應,PKC的移位激活不但降低AQP4基因表達和蛋白含量,而且還對AQP4進行磷酸化修飾,導致AQP4活性降低,減輕腦水腫及神經(jīng)功能損害[16]。CIR組6-12h水腫已發(fā)生,而此時AQP低表達,提示PKC可能已參與腦水腫的形成。分析其原因,可能是PKC被激活后促進興奮性氨基酸的釋放從而加重神經(jīng)元的缺血性損傷,引起腦水腫。
綜上所述,本研究認為在CIR早期,機體本能地調(diào)節(jié)PKC表達增加以通過磷酸化AQP4而減輕腦水腫及神經(jīng)功能損害,這一點可從CIR組6 h時AQP4顯著低于對照組和假手術(shù)組,而PKC明顯高于對照組得到體現(xiàn)。隨著缺血再灌注時間的加長,一方面PKC激活后興奮性氨基酸釋放加重神經(jīng)元細胞的損傷,另一方面PKC不能有效減少AQP4的表達,AQP4的增多引起嚴重的腦水腫和神經(jīng)功能的嚴重損害。我們由此推測,外源性PKC和PKC激活劑可減少AQP4表達從而減輕腦水腫和神經(jīng)功能損害,這將為揭示顱腦損傷后細胞毒性腦水腫發(fā)病機制和顱腦損傷的防治提供重要的理論依據(jù)。PKC在CIR后期(1~5 d)是否因為調(diào)控AQP4失效而與AQP4協(xié)同加重腦水腫和神經(jīng)功能損害尚需進一步研究以明確。
[1]Chen Y,Swanson RA SR.Astrocytes and brain injury[J].J Cereb Blood Flow Metab,2003,23(2):137-49.
[2]Gunnarson E,Zelenina M,Aperia A.Regulation of brain aquaporins[J].Neuroscience,2004,129(4):947-55.
[3]Tang Z,Liao Z,Shi Q,et al.Blocking p38 signal pathway lowers MMP-9 expression and reduces brain edema in rats with traumatic brain injury[J].J South Med Univ,2012,32(7):928-31.
[4]Bouzat P,Francony G,Thomas S,et al.Reduced brain edema and functional deficits after treatment of diffuse traumatic brain injury by carbamylated erythropoietin derivative[J].Crit Care Med,2011, 39(9):2099-105.
[5]Lopez AB,Acaz FE,Viveros MP,et al.Changes in cannabinoid receptors,aquaporin 4 and vimentin expression after traumatic brain injury in adolescent male mice,association with edema and neurological deficit[J].PLoS One,2015,10(6):e0128782-8.
[6]Yao XM,Derugin N,Manley GT,et al.Reduced brain edema and infarct volume in aquaporin-4 deficient mice after transient focal cerebral ischemia[J].Neurosci Lett,2015,584(4):368-72.
[7]Deng JS,Zhao F,Yu XY,et al.Expression of aquaporin 4 and breakdown of the Blood-Brain barrier after Hypoglycemia-Induced brain edema in rats[J].PLoS One,2014,9(9):e107022-7.
[8]Rao KV,Verkman AS,Curtis KM.Aquaporin-4 deletion in mice reduces encephalopathy and brain edema in experimental acute liver failure[J].Neurobiol Dis,2014,63(3):222-8.
[9]Fazzina G,Amorini AM,Marmarou CR,et al.The protein kinase C activator phorbol myristate acetate decreases brain edema by aquaporin 4 downregulation after middle cerebral artery occlusion in the rat[J].J Neurotrauma,2010,27(2):453-61.
[10]Garcia JH,Wagner S,Liu KF,et al.Neurological deficit and extent of neuronal necrosis attributable to middle cerebral artery occlusion in rats:Statistical validation[J].Stroke,1995,26(4):627-35.
[11]Pasantes MH,Cruz RS.Brain volume regulation:osmolytes and aquaporin perspectives[J].Neuroscience,2010,168(4):871-84.
[12]Manley GT,Binder DK,Papadopoulos MC,et al.New insights into water transport and edema in the central nervous system from phenotype analysis of aquaporin-4 null mice[J].Neuroscience, 2004,129(4):983-91.
[13]Vajda Z,Pedersen M,Doczi T,et al.Studies of mdx mice[J]. Neuroscience,2004,129(4):993-8.
[14]Hoshi A,Yamamoto TK.Chemical preconditioning induced reactive astrocytosis contributes to the reduction of post ischemic edema throngh aquaporin_4 downregulation[J].Exp Neurol,2011,227(1): 89-95.
[15]Harada K,Maekawa T,Shama KM,et al.Translocation and down regulation of protein kinase C alpha,beta,and gamma isoforms during ischemia_reperfusion in rat brain[J].Neurochem,1999,72 (6):2556-64.
[16]孫國柱.水通道蛋白-4在脊髓空洞前狀態(tài)的表達變化及甲基強的松龍干預作用研究[D].石家莊:河北醫(yī)科大學,2006.
Change of aquaporin-4 in brain edema after cerebral ischemia reperfusion in rats
LIAO Jiankun,HE Yuhua,CHEN Yaping
Department of emergency,Armed Police Corps Hospital of Guangdong,Guangzhou 511430,China
Objective To explore the relationship between expression level of aquaporin-4(AQP4),protein kinase C(PKC)and brain edema based on the focal cerebral ischemia reperfusion rat model.Methods The rat model of middle cerebral artery (MCA)was duplicated by suture method.The rats were randomly divided into normal control group,sham-operated group and cerebral ischemia reperfusion(CIR)group.Water permeability for rat astrocytes was evaluated by the green fluorescent protein(GFP)labeled AQP4 tracing system.Scores of neurofunctional defect were graded and water content in brain tissues was measured.Expression of AQP4 and PKC in brain tissue was detected by immunohistochemistry.Results Neurofunctional defect occurred at 6 h after CIR.Water content in brain tissue increased at 12 h after CIR,reached peak at day 1-3.The expression levels of AQP4 were decreased first,then increased gradually at 12 h later,obviously increased at 24 h after CIR and reached to highest point at day 3.While PKC increased gradually at 6 h after CIR,kept high level for 5 days.Conclusion Brain edema may relate to the rise of PKC and AQP4,PKC may reduce the expression of AQP4 via phosphorylation in the early stage of CIR in order to delay the process of brain edema.
aquaporin4;protein kinase C;water permeability;brain edema
2016-08-16
廣東省醫(yī)學科研基金(A20124521)
廖建坤,碩士,副主任醫(yī)師,E-mail:liaofang_1997@126.com