夏曉萍俸春紅葉 紅鄭彩虹劉龍孝
(1.浙江大學藥學院;2.浙江大學醫學院附屬婦產科醫院;3.中國農業科學院茶葉研究所)
茶皂苷是來源于山茶科(Theaceae)山茶屬(Camellia)植物茶(Camellia sinensis L.)的果實(茶籽)中的一類三萜皂苷。根據研究表明,茶籽中的皂苷是實現其藥理作用的主要成分。茶皂苷屬五環三萜皂苷,由苷元、糖體和有機酸三部分組成,糖體連接在3位碳的取代基上。苷元系齊墩果烷型,由苷元母核及取代基組成。基本結構如圖1。

圖1 茶皂苷的苷元母核結構
茶皂苷提取法主要是水提法和有機溶劑法,本文在傳統的有機溶劑提取法基礎上,應用超聲提取工藝,采用L9(34)正交試驗設計考察提取溶劑乙醇濃度、液料比、溫度和超聲時間對茶皂苷提取得率的影響,優選出最佳提取方案。以高效液相色譜法測定茶皂苷含量。近年來,茶皂苷藥理作用成為研究的熱點,有學者報道茶皂苷有抗菌作用,民間也有將茶籽餅粕用于治療皮膚病的經驗方。本文考察茶皂苷對臨床常見的致病性真菌(念珠菌)的體外抗菌活性。
(1)實驗材料
茶籽系2014年11月采摘自浙江杭州龍井種(Camellia sinensis cv.Longjing)的成熟果實。茶皂苷對照品:中國農業科學院茶葉研究所提供(茶皂苷純度≥95%)。RPMI—1640培養基(含L-谷酰胺而不含碳酸氫鈉,含pH指示劑)(上海生工生物);科瑪嘉顯色培養基(鄭州博賽生物技術有限公司);沙保培養基(SHAB-101101)(法國生物梅里埃);嗎啉基丙磺酸(MOPS)(上海生工生物)。甲醇(色譜純,PROLABO)其余試劑均為分析純。
(2)試驗菌株
念珠菌30株:包括標準質控菌株6株:其中白色念珠菌4株(ATCC64548,ATCC90029,ATCC64550,ATCC10231);近平滑念珠菌 1株(ATCC22019);克柔念珠菌 1株(ATCC6258)。臨床分離株24株:其中白色念珠菌(Candida albicans)12株;光滑念珠菌(Candida glabrata)6株;克柔念珠菌(Candida krusei)3株;近平滑念珠菌(Candida krusei)3株。(標準菌種由中國藥品生物制品鑒定所提供、臨床分離株由浙江大學醫學院附屬婦產科醫院臨床分離)。
(3)試驗設備與儀器
Agilent HP1100型高效液相色譜儀;超聲波清洗機(USC-702,江蘇昆山超聲儀器有限公司);水浴恒溫振蕩器(DSH2-300,江蘇太倉試驗設備廠);冷凍干燥機(VIRTIS);生物安全柜(The Baker Company);全自動微生物分析儀(VITEK-Compact,法國生物梅里埃);漩渦混合器(VORTEX-GENIE2);生化培養箱 (上海精宏實驗設備有限公司)
(1)茶皂苷的提取
茶籽脫殼、干燥、粉碎至40目篩,得淺黃色茶籽粉末。乙醚脫脂,干燥得脫脂茶籽粉。取一定量的脫脂茶籽粉按特定比例的料液比,加入乙醇溶液,超聲提取;超聲功率300W,超聲頻率40KHZ。過濾,濾液減壓回收溶劑,冷凍干燥,得茶皂苷提取物。
(2)超聲輔助提取茶皂苷的單因素試驗、正交試驗及驗證試驗
以80%乙醇、料液比1∶10,超聲提取時間20min,提取溫度30℃,超聲功率300W,超聲頻率40KHZ的提取參數為基礎,以茶皂苷提取得率為考察指標,依次進行乙醇濃度、料液比、提取時間、溫度的單因素試驗,分析各因素對提取得率的影響,進行正交試驗,并對正交試驗最優組合進行驗證。
(3)茶皂苷檢測方法
高效液相色譜法檢測。
a.標準曲線的制作
精密稱取0.1g茶皂苷對照品,置于100mL容量瓶,加適量流動相,超聲溶解,稀釋至刻度,搖勻,即得對照品儲備液。色譜柱:Agilent Zrobax SB-C18柱(4.6mm×150mm,5μm);流動相:甲醇-水(88:12);流速:0.8mL/min;檢測波長:280nm;柱溫:25℃;進樣量:10μ L。分別精密移取對照品樣儲備液適量,用流動相稀釋成濃度20μg/mL,40μg/mL,80μg/mL,160μg/mL,320μg/mL,640μg/mL系列濃度,記錄色譜峰面積。茶皂苷是由多種三萜類物質組成的混合物,對照品的濃度與峰響應值成線性,以對照品濃度X(μg/ml)對應的峰面積Y制定標準曲線,外標法定量測定茶皂苷含量。
b.茶皂苷測定
精密稱取茶皂苷提取物0.1g,置于100mL容量瓶用流動相溶解,移取5mL,稀釋至50mL即得供試液。供試液過0.45μm濾膜后進樣。每個樣品平行制備3份供試品。在上述的色譜條件下,測定峰面積,計算茶皂苷含量。
c.茶皂苷提取得率計算
茶皂苷提取得率(%)=茶皂苷質量/脫脂茶籽粉質量×100%。
(4)抗真菌作用研究
采用美國國家臨床實驗室標準化委員會(CLSI)制定的酵母菌(M—27A)方案測定抗念珠菌活性。
a.試藥稀釋
先配制高濃度貯存液。實驗時,再以RPMI液體培養基稀釋成終濃度的2倍。其終濃度分別為1269.76μg/mL,634.88μg/mL,317.44μg/mL,158.72μg/mL, 79.36μg/mL,39.68μg/mL,19.84μg/mL,9.92μg/mL,4.96μg/mL。
b.試驗培養基
按CLSI方案的要求采用RPMI—1640培養基。稱取RPMI—1640粉10.4g,MOPS34.53g,加入去離子水900mL,用1M NaOH調pH7.0(25℃),定容至1L。MOPS終濃度為:0.165mol/L,0.22μm微孔濾膜過濾除菌,4℃保存備用。
c.菌懸液制備
念珠菌在沙保培養基上連續轉種2次,以確保純度和活力。經28℃培養48h,取5個直徑大于1mm的菌落于5mL無菌生理鹽水中震蕩15s,制成菌懸液。用血細胞計數板將其濃度調至菌濃度為1~5×106CFU/mL。然后用RPMI液基1∶50稀釋后再1∶20稀釋,(即共稀釋1000倍),至菌濃度1~5×103CFU/mL。
d.接種、培養
取微孔96孔板,1~9列孔中由高濃度至低濃度分別加0.1mL藥液,再加0.1mL菌懸液。11號孔加0.2mL菌懸液(陽性孔),12號孔加0.2mL空白對照。(不加藥物的液基)。
藥敏板用塑料包裹后,念珠菌35℃培養48h。觀察結果。
e.結果判讀
按照CLSI制定的標準進行結果判讀。最小抑菌濃度(MIC)為肉眼直接觀察到的真菌生長的完全被抑制時的藥物濃度。在一批實驗中,所有被測菌株得到的MIC值為MIC范圍;能抑制50%或80%受試菌所需的MIC值,分別為MIC50值和MIC80值。
按色譜條件對照樣系列溶液進樣分析,分別以對照樣系列溶液的峰面積為縱坐標,以對照品樣系列溶液的質量濃度X(μg/mL),繪成標準曲線對峰面積Y進行線性回歸,得回歸方程:X=0.239Y-14.336,r=0.9998。結果表明在濃度20~640μg/mL范圍內呈良好的線性關系。
精密度試驗:取160μg/mL的對照品溶液,連續進樣6次,記錄保留時間和峰面積,RSD(n=6)分別為1.97%和1.73%。
重現性試驗:取制備的茶皂苷提取物,共6份,平行制備供試液,進樣體積10μL,記錄色譜峰面積,RSD為2.95%(n=6)
(1)溫度對茶皂苷提取得率的影響
分別選擇30℃、40℃、50℃、60℃和70℃ 5個溫度,以80%乙醇為提取溶劑,料液比1∶10,超聲時間20min,超聲功率300W,超聲頻率40KHZ為參數。考察溫度對茶皂苷提取得率的影響。圖2A顯示:溫度升高有利于茶皂苷的提取,但當溫度升至70℃的提取得率與溫度60℃的相比,無統計學差異,且溫度過高,易引起茶皂苷結構的變化。因此,選擇40℃、50℃、60℃作為正交試驗因素水平。
(2)乙醇濃度對茶皂苷提取得率的影響
分別選擇50%、60%、70%、80%、90%乙醇水溶液5個濃度提取溶劑,以料液比1∶10,超聲時間20min,超聲功率300W,超聲頻率40KHZ為參數,考察不同濃度的乙醇提取溶劑,對茶皂苷提取得率的影響。圖2B顯示:隨著提取溶劑含水量增加,茶皂苷提取得率增加。80%乙醇的茶皂苷提取得率顯著高于90%乙醇(P<0.01);70%乙醇茶皂苷提取得率高于80%的乙醇提取得率(P<0.05);但60%乙醇和70%乙醇的茶皂苷提取得率無統計學差異。且當乙醇濃度為60%時,茶皂苷提取得率較高但雜質增加。故選擇70%、80%、90%乙醇作為正交試驗的因素水平。
(3)超聲時間對茶皂苷提取得率的影響
提取時間分別選擇 10 min、20 min、30 min、40 min、50min,以80%乙醇為提取劑,料液比1∶10,超聲功率300W,超聲頻率40KHZ為參數。考察超聲時間對茶皂苷提取得率的影響。圖2C顯示:初始,隨著超聲時間增加,茶皂苷提取得率隨之增加,但時間超過30min,得率不增加。因此:選擇20min、30min、40min為正交試驗因素水平。
(4)料液比對茶皂苷提取得率的影響
分別選擇1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30料液比,以80%乙醇作為提取溶劑,超聲時間20min,超聲功率300W,超聲頻率40KHZ為參數。考察不同料液比,對茶皂苷提取得率的影響。圖2D顯示:隨著料液比提高,茶皂苷提取得率并沒有相應增加。因此選擇1∶10、1∶15、1∶20為正交試驗因素水平。
為了全面考察茶皂苷提取得率的影響因素,根據單因素試驗結果,選取4因素3水平,即L9(34)正交表進行正交試驗。試驗因素見表1,L9(34)正交試驗見表2,每個水平重復試驗3次。通過極差比較和F檢驗法對正交試驗結果進行方差分析,結果見表3。

圖2 單因素對茶皂苷得率的影響
表2中的R值顯示:4種因素對茶皂苷提取得率的影響程度依次為B>A>C>D,其中B因素的影響遠大于其他3種因素。超聲提取茶皂苷的最佳方案:B1D2C3D3,即70%乙醇濃度,料液比1∶15,超聲時間40分鐘,提取溫度60℃。
表3的F檢驗結果顯示:乙醇濃度(B因素)、液料比(D因素)、超聲時間(C因素)、提取溫度(A因素)均對茶皂苷提取得率具有顯著的影響。

表1 茶皂苷提取的正交試驗設計因素及水平設置

表2 茶皂苷提取的L9(34)正交試驗設計及結果

表3 茶皂苷提取的正交試驗的方差分析
按優選的最佳工藝條件,提取茶皂苷并重復試驗3次。結果為提取得率:18.06%,RSD:2.78%。提取得率大于正交試驗中的組合。
微孔藥敏板35℃培養48h。將每孔生長情況與陽性孔和空白對照孔相比較,可見陽性孔念珠菌生長良好,空白對照孔無念珠菌生長。茶皂苷對念珠菌體外抗菌活性見表4。結果顯示:茶皂苷體外抗念珠菌活性顯著。

表4 茶皂苷抗念珠菌活性 (μg/mL)
1.超聲提取技術是利用超聲波輻射產生的空化效應、機械振動、乳化作用、擴散作用等增加物質分子運動的頻率和速度,增大溶劑的穿透力,加速目標成分進入溶劑,快速、高效提取細胞內容物。與傳統的萃取提取技術比較,能顯著地提高提取效率。本試驗得到了較優的提取工藝參數:70%乙醇濃度,料液比1∶15,超聲時間 40min,提取溫度60℃,提取得率達18.06%;溶劑用量(料液比)顯示并不與提取得率成正比。
2.念珠菌(假絲酵母菌)是引起真菌病中最常見的機會致病性真菌。念珠菌可引起淺部真菌感染,也會引起深部真菌感染。白色念珠菌在念珠菌屬中最為常見,致病性最強。基于環境、氣候因素,尤其是臨床廣譜抗生素、皮質類固醇、免疫抑制劑等的廣泛使用,導致念珠菌感染臨床高發。臨床上現有的抗真菌藥物如唑類抗真菌藥、兩性霉素B等在高效低毒、耐藥性方面的評價不能令人滿意。本試驗研究結果顯示:茶皂苷有較好的體外抗念珠菌活性,其中對光滑念珠菌的抗菌活性最強MIC80僅79.36μg/mL,白色念珠菌、熱帶念珠菌、近平滑念珠菌克的柔念珠菌MIC80值317.44μg/mL,茶皂素是山茶屬植物重要活性成分,茶皂苷抗真菌活性顯著,其藥理活性值得進一步研究。