多酶激活劑對小白菜生長、品質及抗氧化酶活性的影響

龐強強等

摘 要：研究了不同濃度的多酶激活劑對小白菜生長、品質及抗氧化酶活性的影響。研究結果表明，多酶激活劑處理均可提高小白菜的地上部鮮、干質量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸鹽含量，增強超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化物酶（POD）、過氧化氫酶（CAT）和谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2處理（800倍液）效果最佳。

關鍵詞：小白菜；多酶激活劑；生長；品質；抗氧化酶活性

我國農業生產已進入高產、優質、高效、生態、安全階段[1]。目前，提高作物產量的主要途徑是利用優良品種、增加化肥的投入、配合優化栽培措施以及用農藥防治病蟲害等[2，3]。隨科學技術的發展，人們根據酶學理論，研制出適用于植物的酶激活劑，可以調控植物體內的某些生理生化反應，進而達到提高作物產量及改善品質的目的。本試驗所采用的植物多酶激活劑具有增產、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體等特點，試驗旨在為多酶激活劑在蔬菜生產上的應用提供依據。

1 材料與方法

1.1 試驗設計

試驗于2014年3月20日至5月15日在華南農業大學園藝學院試驗基地進行。供試小白菜為市售四季矮腳黑葉甜白菜。 試驗所用多酶激活劑為華南農業大學資環學院提供，主要成分為蛋白質（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播種，以珍珠巖為基質進行穴盤育苗。當幼苗3葉1心時選生長一致的健壯幼苗移至栽培袋（直徑28 cm，高24 cm）中，盆中基質為泥炭∶椰糠按2∶1（體積比）的比例配制。試驗共設4個多酶激活劑濃度處理，分別為0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后進行噴施處理，對照噴施清水，其余各處理分別噴施等量相應稀釋倍數的多酶激活劑液，以后每隔10 d噴1次，共噴3次，噴霧時以葉片正反兩面均勻布滿小液滴為準。于最后一次噴施后3 d采收取樣，測定相關生長和生理指標。

1.2 測定項目及方法

地上部鮮質量用天平稱量。將地上部放入烘箱中，105℃殺青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用萬分之一分析天平稱取干質量；采用李合生[4]的方法測定硝酸鹽含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黃愛纓等[5]和鄧修惠等[6]的方法測定谷胱甘肽過氧化物酶活性。采用李合生[4]和李軍[7]的方法測定VC含量。

1.3 數據處理

試驗所得數據結果采用SPSS 17.0軟件進行統計分析，單因素分析采用Duncan's新復極差法，作圖采用Microsoft Excel 2003軟件。

2 結果與分析

2.1 多酶激活劑對小白菜生長的影響

由表1看出，與對照相比，小白菜地上部鮮質量隨處理稀釋倍數的加大呈先升高后降低的趨勢。在T2處理時地上部鮮質量最高，比對照顯著增加了33.63%；T1和T3處理小白菜地上部鮮質量分別比對照增加了17.17%和7.83%，但差異不顯著。小白菜干質量與鮮質量變化趨勢相同，地上部干質量在T2處理時最高，T3處理時最低，但各處理間差異均不顯著。

2.2 多酶激活劑對小白菜營養品質的影響

由表2可知，與對照相比，各濃度處理均可降低小白菜硝酸鹽含量，除T2處理顯著降低40.21%外，T1和T3處理分別比對照降低了13.71%和9.71%，但差異均不顯著。VC含量在T2處理時最高，比對照顯著增加了76.19%，T1和T3處理也均高于對照，分別比對照增加52.38%和19.05%，但差異不顯著。多酶激活劑處理的可溶性糖含量除T3處理顯著低于對照外，其他處理與對照相比差異均不顯著。多酶激活劑處理的小白菜可溶性蛋白含量均顯著高于對照，其中T2處理含量最高，比對照增加了36.57%，T1和T3處理分別比對照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活劑對小白菜體內抗氧化酶活性的影響

由表3可知，多酶激活劑各處理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于對照，但不同處理提高程度有所不同，除T1處理的POD活性和T3處理的SOD活性與對照相比差異不顯著外，其余處理差異均顯著。與對照相比，各處理的CAT活性增幅為47.11%～70.42%，T3處理的CAT活性最高，但與T2處理差異不顯著。POD活性呈現先增加后降低趨勢，但所有處理均高于對照，增幅為12.76%～25.54%，其中T2處理活性最高。各處理SOD活性與對照相比分別提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2處理最高。多酶激活劑各處理均顯著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅為72.12%～104.33%，T1處理活性最大，但與T2、T3處理差異不顯著。

3 討論與結論

生物體內一切生理生化反應都是在酶的作用下進行的。許多酶在進行催化反應時需要有些物質存在，使其激活或增加其活性，這些物質統稱為激活劑（或活化劑）[8]。激活劑包括無機離子、輔酶或輔基以及一些大分子蛋白等。本試驗所用的多酶激活劑含有蛋白質和一些中微量元素。本試驗結果表明，小白菜施用多酶激活劑后，可增加小白菜的產量并改善小白菜品質，其中T2處理（800倍稀釋液）增產和改善品質的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂過氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株體內的活性氧自由基，當其作用失衡時會導致膜脂過氧化產物的積累。SOD主要作用是將超氧化物催化分解為基態氧和H2O2，產生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物體內重要的含硒抗氧化酶[10]，它能將脂質過氧化物和過氧化氫還原成相應的醇和水，并與VE協同作用，阻止脂質過氧化的鏈式反應，具有抗氧化功能，可保護細胞膜免受過氧化物的刺激和損傷。當GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂質過氧化物則在體內堆積，導致細胞損害[11]。本試驗所用的多酶激活劑富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體，可激活這4種酶的活性。本試驗研究發現，當葉面噴施該激活劑后，小白菜中這4種酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分別高達70.42%和104.33%。

綜上所述，多酶激活劑對小白菜產量和品質具有明顯的促進作用，并且對小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有顯著影響，本試驗中以T2（800倍稀釋液）處理效果最佳。

參考文獻

[1] 汪家銘.新型肥料開發進展[J].化學工業，2012（9）：26-32.

[2] 梅紹祥，楊映環，何慶元.作物產量的遺傳基礎和實現產量突破的途徑研究[J].安徽農業科學，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物產量的途徑[J].農技服務，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黃愛纓，吳珍齡.水稻谷胱甘肽過氧化物酶的測定法[J].西南農業大學學報，1999，21（4）：24-27.

[6] 鄧修惠，黃學梅，李偉道，等.改良DTNB比色法測定血清GSH-Px活力[J].重慶醫學，2000，29（5）：445.

[7] 李軍.鉬藍比色法測定還原型維生素C[J].食品科學，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陳貴，謝甫綈，王海英，等.SN-924酶激活劑在大豆上的應用效果分析[J].沈陽農業大學學報，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜寧，張愛忠，等.谷胱甘肽生物學功能的研究進展[J].飼料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.

摘 要：研究了不同濃度的多酶激活劑對小白菜生長、品質及抗氧化酶活性的影響。研究結果表明，多酶激活劑處理均可提高小白菜的地上部鮮、干質量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸鹽含量，增強超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化物酶（POD）、過氧化氫酶（CAT）和谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2處理（800倍液）效果最佳。

關鍵詞：小白菜；多酶激活劑；生長；品質；抗氧化酶活性

我國農業生產已進入高產、優質、高效、生態、安全階段[1]。目前，提高作物產量的主要途徑是利用優良品種、增加化肥的投入、配合優化栽培措施以及用農藥防治病蟲害等[2，3]。隨科學技術的發展，人們根據酶學理論，研制出適用于植物的酶激活劑，可以調控植物體內的某些生理生化反應，進而達到提高作物產量及改善品質的目的。本試驗所采用的植物多酶激活劑具有增產、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體等特點，試驗旨在為多酶激活劑在蔬菜生產上的應用提供依據。

1 材料與方法

1.1 試驗設計

試驗于2014年3月20日至5月15日在華南農業大學園藝學院試驗基地進行。供試小白菜為市售四季矮腳黑葉甜白菜。 試驗所用多酶激活劑為華南農業大學資環學院提供，主要成分為蛋白質（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播種，以珍珠巖為基質進行穴盤育苗。當幼苗3葉1心時選生長一致的健壯幼苗移至栽培袋（直徑28 cm，高24 cm）中，盆中基質為泥炭∶椰糠按2∶1（體積比）的比例配制。試驗共設4個多酶激活劑濃度處理，分別為0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后進行噴施處理，對照噴施清水，其余各處理分別噴施等量相應稀釋倍數的多酶激活劑液，以后每隔10 d噴1次，共噴3次，噴霧時以葉片正反兩面均勻布滿小液滴為準。于最后一次噴施后3 d采收取樣，測定相關生長和生理指標。

1.2 測定項目及方法

地上部鮮質量用天平稱量。將地上部放入烘箱中，105℃殺青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用萬分之一分析天平稱取干質量；采用李合生[4]的方法測定硝酸鹽含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黃愛纓等[5]和鄧修惠等[6]的方法測定谷胱甘肽過氧化物酶活性。采用李合生[4]和李軍[7]的方法測定VC含量。

1.3 數據處理

試驗所得數據結果采用SPSS 17.0軟件進行統計分析，單因素分析采用Duncan's新復極差法，作圖采用Microsoft Excel 2003軟件。

2 結果與分析

2.1 多酶激活劑對小白菜生長的影響

由表1看出，與對照相比，小白菜地上部鮮質量隨處理稀釋倍數的加大呈先升高后降低的趨勢。在T2處理時地上部鮮質量最高，比對照顯著增加了33.63%；T1和T3處理小白菜地上部鮮質量分別比對照增加了17.17%和7.83%，但差異不顯著。小白菜干質量與鮮質量變化趨勢相同，地上部干質量在T2處理時最高，T3處理時最低，但各處理間差異均不顯著。

2.2 多酶激活劑對小白菜營養品質的影響

由表2可知，與對照相比，各濃度處理均可降低小白菜硝酸鹽含量，除T2處理顯著降低40.21%外，T1和T3處理分別比對照降低了13.71%和9.71%，但差異均不顯著。VC含量在T2處理時最高，比對照顯著增加了76.19%，T1和T3處理也均高于對照，分別比對照增加52.38%和19.05%，但差異不顯著。多酶激活劑處理的可溶性糖含量除T3處理顯著低于對照外，其他處理與對照相比差異均不顯著。多酶激活劑處理的小白菜可溶性蛋白含量均顯著高于對照，其中T2處理含量最高，比對照增加了36.57%，T1和T3處理分別比對照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活劑對小白菜體內抗氧化酶活性的影響

由表3可知，多酶激活劑各處理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于對照，但不同處理提高程度有所不同，除T1處理的POD活性和T3處理的SOD活性與對照相比差異不顯著外，其余處理差異均顯著。與對照相比，各處理的CAT活性增幅為47.11%～70.42%，T3處理的CAT活性最高，但與T2處理差異不顯著。POD活性呈現先增加后降低趨勢，但所有處理均高于對照，增幅為12.76%～25.54%，其中T2處理活性最高。各處理SOD活性與對照相比分別提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2處理最高。多酶激活劑各處理均顯著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅為72.12%～104.33%，T1處理活性最大，但與T2、T3處理差異不顯著。

3 討論與結論

生物體內一切生理生化反應都是在酶的作用下進行的。許多酶在進行催化反應時需要有些物質存在，使其激活或增加其活性，這些物質統稱為激活劑（或活化劑）[8]。激活劑包括無機離子、輔酶或輔基以及一些大分子蛋白等。本試驗所用的多酶激活劑含有蛋白質和一些中微量元素。本試驗結果表明，小白菜施用多酶激活劑后，可增加小白菜的產量并改善小白菜品質，其中T2處理（800倍稀釋液）增產和改善品質的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂過氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株體內的活性氧自由基，當其作用失衡時會導致膜脂過氧化產物的積累。SOD主要作用是將超氧化物催化分解為基態氧和H2O2，產生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物體內重要的含硒抗氧化酶[10]，它能將脂質過氧化物和過氧化氫還原成相應的醇和水，并與VE協同作用，阻止脂質過氧化的鏈式反應，具有抗氧化功能，可保護細胞膜免受過氧化物的刺激和損傷。當GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂質過氧化物則在體內堆積，導致細胞損害[11]。本試驗所用的多酶激活劑富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體，可激活這4種酶的活性。本試驗研究發現，當葉面噴施該激活劑后，小白菜中這4種酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分別高達70.42%和104.33%。

綜上所述，多酶激活劑對小白菜產量和品質具有明顯的促進作用，并且對小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有顯著影響，本試驗中以T2（800倍稀釋液）處理效果最佳。

參考文獻

[1] 汪家銘.新型肥料開發進展[J].化學工業，2012（9）：26-32.

[2] 梅紹祥，楊映環，何慶元.作物產量的遺傳基礎和實現產量突破的途徑研究[J].安徽農業科學，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物產量的途徑[J].農技服務，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黃愛纓，吳珍齡.水稻谷胱甘肽過氧化物酶的測定法[J].西南農業大學學報，1999，21（4）：24-27.

[6] 鄧修惠，黃學梅，李偉道，等.改良DTNB比色法測定血清GSH-Px活力[J].重慶醫學，2000，29（5）：445.

[7] 李軍.鉬藍比色法測定還原型維生素C[J].食品科學，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陳貴，謝甫綈，王海英，等.SN-924酶激活劑在大豆上的應用效果分析[J].沈陽農業大學學報，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜寧，張愛忠，等.谷胱甘肽生物學功能的研究進展[J].飼料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.

摘 要：研究了不同濃度的多酶激活劑對小白菜生長、品質及抗氧化酶活性的影響。研究結果表明，多酶激活劑處理均可提高小白菜的地上部鮮、干質量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸鹽含量，增強超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化物酶（POD）、過氧化氫酶（CAT）和谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2處理（800倍液）效果最佳。

關鍵詞：小白菜；多酶激活劑；生長；品質；抗氧化酶活性

我國農業生產已進入高產、優質、高效、生態、安全階段[1]。目前，提高作物產量的主要途徑是利用優良品種、增加化肥的投入、配合優化栽培措施以及用農藥防治病蟲害等[2，3]。隨科學技術的發展，人們根據酶學理論，研制出適用于植物的酶激活劑，可以調控植物體內的某些生理生化反應，進而達到提高作物產量及改善品質的目的。本試驗所采用的植物多酶激活劑具有增產、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體等特點，試驗旨在為多酶激活劑在蔬菜生產上的應用提供依據。

1 材料與方法

1.1 試驗設計

試驗于2014年3月20日至5月15日在華南農業大學園藝學院試驗基地進行。供試小白菜為市售四季矮腳黑葉甜白菜。 試驗所用多酶激活劑為華南農業大學資環學院提供，主要成分為蛋白質（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播種，以珍珠巖為基質進行穴盤育苗。當幼苗3葉1心時選生長一致的健壯幼苗移至栽培袋（直徑28 cm，高24 cm）中，盆中基質為泥炭∶椰糠按2∶1（體積比）的比例配制。試驗共設4個多酶激活劑濃度處理，分別為0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后進行噴施處理，對照噴施清水，其余各處理分別噴施等量相應稀釋倍數的多酶激活劑液，以后每隔10 d噴1次，共噴3次，噴霧時以葉片正反兩面均勻布滿小液滴為準。于最后一次噴施后3 d采收取樣，測定相關生長和生理指標。

1.2 測定項目及方法

地上部鮮質量用天平稱量。將地上部放入烘箱中，105℃殺青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用萬分之一分析天平稱取干質量；采用李合生[4]的方法測定硝酸鹽含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黃愛纓等[5]和鄧修惠等[6]的方法測定谷胱甘肽過氧化物酶活性。采用李合生[4]和李軍[7]的方法測定VC含量。

1.3 數據處理

試驗所得數據結果采用SPSS 17.0軟件進行統計分析，單因素分析采用Duncan's新復極差法，作圖采用Microsoft Excel 2003軟件。

2 結果與分析

2.1 多酶激活劑對小白菜生長的影響

由表1看出，與對照相比，小白菜地上部鮮質量隨處理稀釋倍數的加大呈先升高后降低的趨勢。在T2處理時地上部鮮質量最高，比對照顯著增加了33.63%；T1和T3處理小白菜地上部鮮質量分別比對照增加了17.17%和7.83%，但差異不顯著。小白菜干質量與鮮質量變化趨勢相同，地上部干質量在T2處理時最高，T3處理時最低，但各處理間差異均不顯著。

2.2 多酶激活劑對小白菜營養品質的影響

由表2可知，與對照相比，各濃度處理均可降低小白菜硝酸鹽含量，除T2處理顯著降低40.21%外，T1和T3處理分別比對照降低了13.71%和9.71%，但差異均不顯著。VC含量在T2處理時最高，比對照顯著增加了76.19%，T1和T3處理也均高于對照，分別比對照增加52.38%和19.05%，但差異不顯著。多酶激活劑處理的可溶性糖含量除T3處理顯著低于對照外，其他處理與對照相比差異均不顯著。多酶激活劑處理的小白菜可溶性蛋白含量均顯著高于對照，其中T2處理含量最高，比對照增加了36.57%，T1和T3處理分別比對照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活劑對小白菜體內抗氧化酶活性的影響

由表3可知，多酶激活劑各處理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于對照，但不同處理提高程度有所不同，除T1處理的POD活性和T3處理的SOD活性與對照相比差異不顯著外，其余處理差異均顯著。與對照相比，各處理的CAT活性增幅為47.11%～70.42%，T3處理的CAT活性最高，但與T2處理差異不顯著。POD活性呈現先增加后降低趨勢，但所有處理均高于對照，增幅為12.76%～25.54%，其中T2處理活性最高。各處理SOD活性與對照相比分別提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2處理最高。多酶激活劑各處理均顯著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅為72.12%～104.33%，T1處理活性最大，但與T2、T3處理差異不顯著。

3 討論與結論

生物體內一切生理生化反應都是在酶的作用下進行的。許多酶在進行催化反應時需要有些物質存在，使其激活或增加其活性，這些物質統稱為激活劑（或活化劑）[8]。激活劑包括無機離子、輔酶或輔基以及一些大分子蛋白等。本試驗所用的多酶激活劑含有蛋白質和一些中微量元素。本試驗結果表明，小白菜施用多酶激活劑后，可增加小白菜的產量并改善小白菜品質，其中T2處理（800倍稀釋液）增產和改善品質的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂過氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株體內的活性氧自由基，當其作用失衡時會導致膜脂過氧化產物的積累。SOD主要作用是將超氧化物催化分解為基態氧和H2O2，產生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物體內重要的含硒抗氧化酶[10]，它能將脂質過氧化物和過氧化氫還原成相應的醇和水，并與VE協同作用，阻止脂質過氧化的鏈式反應，具有抗氧化功能，可保護細胞膜免受過氧化物的刺激和損傷。當GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂質過氧化物則在體內堆積，導致細胞損害[11]。本試驗所用的多酶激活劑富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4種酶的受體，可激活這4種酶的活性。本試驗研究發現，當葉面噴施該激活劑后，小白菜中這4種酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分別高達70.42%和104.33%。

綜上所述，多酶激活劑對小白菜產量和品質具有明顯的促進作用，并且對小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有顯著影響，本試驗中以T2（800倍稀釋液）處理效果最佳。

參考文獻

[1] 汪家銘.新型肥料開發進展[J].化學工業，2012（9）：26-32.

[2] 梅紹祥，楊映環，何慶元.作物產量的遺傳基礎和實現產量突破的途徑研究[J].安徽農業科學，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物產量的途徑[J].農技服務，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黃愛纓，吳珍齡.水稻谷胱甘肽過氧化物酶的測定法[J].西南農業大學學報，1999，21（4）：24-27.

[6] 鄧修惠，黃學梅，李偉道，等.改良DTNB比色法測定血清GSH-Px活力[J].重慶醫學，2000，29（5）：445.

[7] 李軍.鉬藍比色法測定還原型維生素C[J].食品科學，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陳貴，謝甫綈，王海英，等.SN-924酶激活劑在大豆上的應用效果分析[J].沈陽農業大學學報，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜寧，張愛忠，等.谷胱甘肽生物學功能的研究進展[J].飼料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.