多發性骨髓瘤中p15基因甲基化及其mRNA表達的研究

李燦美，楊 凌，劉 琳，李一輝，楊善蘭，金美四，賀振新

（1．大理州人民醫院 血液腫瘤科，云南 大理 671000；2．昆明醫科大學第一附屬醫院 血液科，云南 昆明 650032；3．昆明醫科大學第二附屬醫院 血液科，云南 昆明 650101）

多發性骨髓瘤（multiple myeloma,MM）是起源于B淋巴細胞的惡性克隆性疾病，其具體發病機制尚未闡明，常規化療效果差，迫切需要探索其發病機制，尋找新的治療途徑。近年來國內外的大量研究均已證實DNA甲基化是血液腫瘤抑癌基因失活的常見機制。p15基因都是細胞周期蛋白依賴性激酶抑制劑（CDKI）家族的重要成員，是目前研究較多的抑癌基因。近十年來的文獻報道中，MM患者p15基因甲基化的陽性率在1.8%～75%之間[1,2]。各家的結果很不一致。為了探討p15基因甲基化與MM發生、發展及預后的關系，我們采用甲基化特異性聚合酶鏈反應（MSP） 研究MM中p15基因甲基化與其mRNA轉錄阻抑的關系，為該病的治療提供一定的理論基礎。

資料與方法

一、臨床資料 選取2009年1月～2011年6月確診的54例多發性骨髓瘤患者骨髓標本，標本來自昆明醫學院第一附屬醫院血液科和第二附屬醫院血液科，其中男性35例，女性19例，年齡38～79歲，中位年齡64歲，平均年齡（63.44±8.94）歲，包括初診患者27例，復發患者27例。Druie-Salmon分期：I期A組2例，II期A組16例，II期B組16例，III期A組19例，III期B組13例。所有病例診斷均符合標準[3]。對照組為非血液腫瘤患者骨髓標本（主要為營養不良性性貧血和免疫性血小板減少癥患者），共40例。

二、試劑和儀器 DNA提取試劑盒，RNA提取試劑盒為杭州Axygen Bioscigens公司產品。EZ DNA Methylation-GoldTM Kit，Zymo Taq PreMix TM Kit為美國ZYMO Research公司產品。 TRIzol Reagent抽提液，Platinum SYBR Green qPCR SuperMix-UDGKit等購自美國Invitrogen公司。PCR擴增儀，qPCR擴增儀和全自動凝膠圖像分析儀均為美國Bio-rad公司的產品。p15基因甲基化的引物序列（參照文獻[4）]由上海invitrigen公司合成。qPCR引物采用primer3.0軟件設計，產物長度控制在100-150bp，并用NCBI primer blast進行引物檢測，確認為單一性產物。所有引物具體序列、產物長度及退火溫度見附表。

三、DNA與RNA的提取 基因組DNA的提取、DNA亞硫酸氫鹽修飾、修飾后模板的純化按Herman[4]方法。RNA的提取采用杭州Axygen Bioscigens公司的RNA提取試劑盒，按試劑盒操作步驟提取，并用分光光度儀測定RAN濃度。

四、MSP法檢測p15基因啟動子區的甲基化狀態 1．已修飾并純化的DNA2μl，加入上下游引物各1μl，熱啟動酶Zymo Taq Pre Mix25μl，加入RNase-Free＆DNase-Free ddH2O21μl，構成總體積50μl的反應體系。在反應條件是95℃預變性10min，95℃變 性30s，58℃退 火30s，72℃延 伸30s，共35個循環，72℃鏈接7mim。最后進行結果判定，取PCR產物5μl，2%瓊脂糖凝膠TBE電泳。電泳完畢后，取下凝膠，紫外線燈下觀察結果。以DNA marker2000bp標準分子質量，泳動位置與預期片段長度相符的特異性產物判斷為陽性，拍片記錄。2．將MSP擴增產物50μl冰盒保存，送上海Invitrogen公司行全自動測序技術測序，測序結果運用DNAstar軟件進行拼接，BiQAnalyzer軟件進行比對分析。

五、RT-qPCR檢測p15基因mRNA表達情況1．RT-qPCR反應體系，將提取的RNA用Easy Script First-Strand cDNA Synthesis SuperMix Kit將其逆轉錄為cDNA保存。取cDNA4μl，加入上下游引物 各1μl，Platinum SYBR Green qPCR Super-Mix-UDG 25μl，加 入RNase-Free＆DNase-Free ddH2O 19μl，構成總體積50μl的反應體系。在反應條件是50℃、95℃預變性各2mim，95℃變性15s，60℃退火30s，共40個循環，65-95℃溶解曲線1min下進行PCR反應。實驗中以GAPDH作為內標基因，以標準化各個標本中p15基因相對表達量，以Hela及HEPG2為質控，以P15基因作為目的基因。2．結果判定標準，反應的數據由Bio-Rad CFX軟件進行收集及分析。通過目的基因和內參基因拷貝數的比值進行樣本間相對定量的比較。所有數值以相對于GAPDH基因升高或減少的倍數(Fold)表示。所有標本的基因復制的數值均以閾值循環(Cycle threshold Ct)表達[3]。具體如下：目的基因的表達量=2-△△Ct，△△Ct=(Ct目的基因-Ct內標基因)實驗組-(Ct目的基因-Ct內標基因)對照組，表示的是實驗組目的基因相對于對照組的變化倍數，使用這一方法可直接得到目的基因相對于內參基因組的定量[4]。

附表 引物序列及退火溫度

六、統計學方法 甲基化情況分析采用四格表χ2檢驗，基因表達分析以中位數加減四分位數間距進行描述，兩組間采用隨機樣本秩和檢驗統計分析，均以P≤0.05時有統計學差異（統計用SPSS17.0統計軟件包）。

結 果

一、MM患者p15基因的甲基化狀態 54例MM患者的MSP檢測結果為：p15基因啟動子區CpG島甲基化陽性者有15例，甲基化率是27.778%，其檢測結果通過電泳均可見到一條148bP的甲基化陽性PCR擴增產物，大多數同時伴有154bp的甲基化陰性PCR擴增產物（如圖1所示）。其余的39例多發性骨髓瘤患者只檢測到一條154bP的甲基化陰性PCR擴增產物。40例正常人及非累及骨髓的血液病患者僅檢測到154bp的甲基化陰性PCR擴增產物，均無甲基化。MM患者p15基因的甲基化率與對照組比較差異有統計學意義（P＜0.05）。

二、p15基因CpG島甲基化與多發性骨髓瘤某些臨床特征之間的關系

1．根據病程階段將所收集的多發性骨髓瘤患者分為初發及復發兩組。結果為初發組27例中9例p15基因甲基化，陽性率為33.333%；而復發組27例中9例發現甲基化，陽性率22.22%。初發和復發兩組多發性骨髓瘤患者P15基因CpG島甲基化率呈逐漸降低趨勢，初發組＞復發組。但統計學分析顯示初發組患者的p15基因甲基化率雖然高于復發組，但無顯著性差異(P>0.05)。

2．根據所收集資料將多發性骨髓瘤患者以65歲的年齡分為兩組。結果為年齡≥65的組p15基因甲基化率為26.923%，而年齡＜65的組p15基因甲基化率28.571%對多發性骨髓瘤患者進行年齡分組對p15基因CpG島甲基化率進行比較，統計學分析顯示均無顯著性差異(P>0.05)。

3．根據所收集資料我們將多發性骨髓瘤患者以性別分為兩組。結果為男性的組p15基因甲基化率為26.923%，而女性組p15基因甲基化率28.571%。對多發性骨髓瘤患者進行性別分組對p15基因CpG島甲基化率進行比較，統計學分析顯示均無顯著性差異(P>0.05)。

4．不同臨床分期，分組間多發性骨髓瘤患者p15基因CpG島甲基化狀態。對I，Ⅱ及Ⅲ期多發性骨髓瘤患者p15基因CpG島甲基化率進行比較，統計學分析顯示均無顯著性差異(P>0.05)。對A組和B組多發性骨髓瘤患者p15基因CpG島甲基化率進行比較，統計學分析顯示均無顯著性差異(P>0.05)。

5．甲基化與非甲基化標本測序結果分析。將MSP擴增陽性及陰性標本進行測序，測序結果運用DNAstar軟件進行拼接，測序結果用BIQanalyzer軟件進行分析，比對分析分析具體甲基化位點。結果顯示（見圖2）：在p15基因啟動子區5’端產物檢測出19處堿基發生甲基化。

圖1 MSP檢測多發性骨髓瘤患者P15基因Cp G島甲基化狀態

圖2 p15啟動子區5'端甲基化與非甲基化序列比較圖

6．p15基因甲基化與其mRNA表達結果分析。對實驗數據進行正態性檢驗，偏度（Skewness，Sk）、峰度（Kutosis，Ku） 均＞0，提示實驗數據呈正偏態分布。隨后對實驗組和對照組、甲基化組和非甲基化組進行Wilcoxon兩樣本秩和檢驗。P15基因在mRNA表達水平上，實驗組：28.64±28.77Fold；對照組：25.79±78.16Fold，實驗組與對照組之間比較，差異無統計學意義（P＞0.05）。甲基化組：28.64±19.13Fold；非甲基化組：29.86±29.24Fold；甲基化組與非甲基化組比較，差異無統計學意義（P＞0.05）；初診組：23.92±26.46Fold；復發組：36.13±27.65 Fold；甲基化組與非甲基化組比較，差異無統計學意義（P＞0.05）。

討 論

DNA甲基化是哺乳動物遺傳外修飾的重要調控方式，在基因表達調控，基因結構的穩定等方面有重要作用。研究表明，DNA甲基化模式改變與腫瘤形成有密切關系[5]。p15基因（又名CDKN2B cyclin-dependent kinase inhibitor 2B，inhibits CDK4） 是定位于人類第9號染色體9p21上的抑癌基因，是細胞周期素依賴激酶抑制劑（CDKI） 家族的重要成員。p15基因抑制細胞周期素依賴激酶（CDK4/6） 的活性，阻止Rb（視網膜母細胞瘤蛋白） 基因磷酸化，抑制轉錄因子E2F解離，使細胞周期在G→S轉換中停滯，導致細胞惡性轉化。研究發現，多種血液系統惡性腫瘤都存在p15基因的甲基化失活現象，在各種類型的急性白血病、慢性髓細胞性白血病、前髓性白血病、成人淋巴細胞性白血病和淋巴瘤中都有p15基因啟動子區的甲基化[6-7]；Martin等[8]發現p15基因的異常與漿細胞疾病有關，在多發性骨髓瘤中p15基因高甲基化是重要的事件。但Galm[1]等人的結論與之相反，他們在53例患者中僅發現1例p15基因啟動子區的甲基化。

我們的研究顯示，p15基因啟動子區的異常甲基化比例明顯高于對照組，表明p15基因異常甲基化可能在MM發生中為重要失活機制。電泳發現有甲基化等位基因(M)擴增的腫瘤標本中往往可見非甲基化等位基因(U)的同時擴增，考慮原因可能為多發性骨髓瘤細胞中混有正常細胞，難以排除正常DNA的干擾，在行MSP時非甲基化DNA和甲基化DNA的p15基因同時被擴增，或者腫瘤細胞中P15基因的兩個等位基因有一個未發生甲基化之故，這兩種原因在電泳中難以區分。所以，我們對MSP產物進行測序，其結果顯示：在p15啟動子區5’端產物檢測出19處堿基位點發生甲基化。這表明p15啟動子區異常甲基化是存在的。

我們試圖尋找p15基因甲基化與MM臨床特征和預后的關系。但研究表明，性別，年齡，I，Ⅱ及Ⅲ期和A，B組的多發性骨髓瘤患者的p15基因CpG島甲基化率無統計學差異，與Esteban等的結論一致[9]。提示p15基因甲基化可能是多發性骨髓瘤發病中的一個早期作用環節。我們的研究表明，初發及復發兩組多發性骨髓瘤患者p15基因CpG島甲基化率呈降低趨勢，尤其初發組甲基化率略高于和復發組，但統計上并無顯著性差異(P>0.05)，這種降低趨勢提示p15基因甲基化可能與多發性骨髓瘤患者的化療反應有關，但這種推測有待于進一步增加樣本量來證實，因為傳統的化療藥物很少具有逆轉甲基化的作用，因此該結論的可信性有待進一步論證。

雖然甲基化直接與基因的轉錄有關，但是遺傳物質DNA到蛋白質經歷轉錄、翻譯特別是轉錄過程中所轉錄的mRNA的多少直接影響著相關最終蛋白質的多少。因此本研究采用RT-qPCR檢測轉錄抑制狀態來了解MM的進展程度，治療效果及預后的判斷。研究結果顯示多發性骨髓瘤患者的骨髓液中p15基因mRNA的表達水平與對照組之間無統計學差異（P>0.05） ,甲基化組與非甲基化組，初診與復發組亦無統計學差異（P>0.05）。提示尚不能根據p15基因mRNA的表達水平判斷多發性骨髓瘤的病理分期、進展情況等。此結果不排除標本量不足產生的結果偏差，需加大標本量進一步研究。同時該研究結果與王明鳴等[10]報道的U266細胞株接近，提示甲基化并非唯一調控p15mRNA表達的因素，其翻譯為蛋白的過程中還受到其他機制的調控。

總之，p15基因作為與細胞周期調控有關的重要抑癌基因，其甲基化的異常在多發性骨髓瘤中確實存在，MSP方法靈敏性高，因此使用MSP方法檢測p15基因的甲基化狀態將有可能成為檢測MM微小殘留病的一個指標[11]，去甲基化的藥物可能是一種有效的治療方法[12]。

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