摘 要:采用硝普鈉(Sodium nitroprusride,SNP)作為外源一氧化氮(nitric oxide,NO)供體,研究一氧化氮對(duì)靈芝產(chǎn)量、木質(zhì)素和靈芝多糖含量的影響。結(jié)果表明,5mmol/L SNP處理促進(jìn)靈芝子實(shí)體生長(zhǎng),并顯著提高靈芝多糖含量,降低木質(zhì)素含量;當(dāng)SNP處理濃度達(dá)到20mmol/L時(shí),將抑制靈芝多糖的積累。
關(guān)鍵詞:靈芝;一氧化氮;木質(zhì)素;靈芝多糖
中圖分類號(hào) S646 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號(hào) 1007-7731(2013)14-19-02
靈芝是一種藥食兼用真菌,在我國(guó)有著悠久的應(yīng)用歷史。靈芝子實(shí)體具有抑制腫瘤、抗血栓形成、防止動(dòng)脈硬化、提高人體免疫力、鎮(zhèn)痛及延遲細(xì)胞衰老等功效[1-3],其主要含有多糖和靈芝酸等其他有效化學(xué)成分[4]。與猴頭菇、灰樹(shù)花、姬松茸等肉質(zhì)化的食藥用真菌子實(shí)體相比,靈芝子實(shí)體含有高達(dá)70%以上的纖維素和木質(zhì)素,使得其不能直接食用,只能通過(guò)適當(dāng)?shù)奶崛」に囂崛《嗵呛挽`芝酸等有效藥用成分。然而,提取過(guò)程復(fù)雜,且有效成分有損失、提取不完全,從而大大限制了子實(shí)體的藥用價(jià)值和靈芝產(chǎn)業(yè)發(fā)展。因此,如何降低靈芝木質(zhì)素含量一直是靈芝產(chǎn)業(yè)所關(guān)注的重要課題。本文采用生物信號(hào)分子一氧化氮(NO)供體硝普鈉作為靈芝子實(shí)體生長(zhǎng)過(guò)程中次生代謝產(chǎn)物調(diào)節(jié)劑,研究一氧化氮對(duì)靈芝木質(zhì)素和多糖含量的影響。
1 材料與方法
1.1 材料 靈芝菌種(Ganoderma lucidum)由上海農(nóng)科院食用所提供。蔗糖、硫酸鎂、磷酸二氫鉀、乙醇、蛋白胨、葡萄糖、硝普鈉(Sodium nitroprusride,SNP,購(gòu)自Sigma公司)、氫氧化鈉、3,5-二硝基水楊酸、濃硫酸、瓊脂、苯酚、酒石酸鉀鈉、無(wú)水硫酸鈉。
1.2 儀器與設(shè)備 JA2003N型電子分析天平、756-MC型可見(jiàn)分光光度計(jì)、YXQ-LS50S11立式壓力蒸汽滅菌器、HZ-300L恒溫?fù)u床、HH·B11·420-S電熱恒溫培養(yǎng)箱、TGL-16G高速臺(tái)式離心機(jī)、HH-6恒溫水浴鍋,SW-CJ-2FD雙人單面凈化工作臺(tái)、XHF-D高速分散器、北京博醫(yī)訊冷凍干燥機(jī)。
1.3 方法
1.3.1 靈芝栽培與處理 采用棉籽殼44%,雜木屑44%,麩皮5%,玉米粉5%,蔗糖1%,石膏粉1%配方配制培養(yǎng)基。選用500mL罐頭瓶栽培,每瓶裝干料150g,常規(guī)滅菌接種后,于25℃左右條件下培養(yǎng),經(jīng)20d發(fā)菌培養(yǎng),當(dāng)菌絲長(zhǎng)至1/2瓶時(shí),可以除去封口紙,搬至子實(shí)體發(fā)生室。此時(shí)控溫25~28℃,相對(duì)濕度增至90%~95%,保持空氣清新,增強(qiáng)漫射光。待長(zhǎng)出菇蕾時(shí)每隔4d用0、0.5、1、5、10、20mmol/L濃度的硝普鈉(NO供體)進(jìn)行表面噴施,每組重復(fù)10瓶,共處理10次。在彈孢期后采收子實(shí)體,并測(cè)定相關(guān)指標(biāo)。
1.3.2 木質(zhì)素含量測(cè)定 子實(shí)體于60℃烘箱烘干后粉碎,過(guò)40目篩后,用于測(cè)定靈芝木質(zhì)素含量。木質(zhì)素含量的測(cè)定參照鞠志國(guó)等的方法[5]。按1∶10(W/V)加入沸水,冷卻后加入86%硫酸25mL,室溫下充分?jǐn)嚢?h,加入250mL dH2O煮沸1h,冷卻后用烘干至恒重的砂芯濾斗抽濾,用60℃熱dH2O洗滌至洗液與10%BaCl2反應(yīng)時(shí)不出現(xiàn)沉淀為止,砂芯濾斗烘干后稱重。按以下式計(jì)算木質(zhì)素含量:
木質(zhì)素(%)=[(抽濾后漏斗重-抽濾前漏斗重)/樣品重]×100
1.3.3 靈芝多糖提取與含量測(cè)定 (1)靈芝多糖提取。采集子實(shí)體,60℃烘箱烘干后粉碎,過(guò)40目篩后,用于測(cè)定靈芝多糖含量。稱取0.100g,加入5mL1mol/L NaOH,60℃水浴1h,然后6 000rpm離心10min,取上清液,得多糖樣品粗提液。再用Sevag法除去蛋白,在4℃用去離子水透析24h、60℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器濃縮、-45℃真空冷凍干燥36h。(2)靈芝多糖含量的測(cè)定。稱取標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖10mg,用蒸餾水定容至250mL制成40μg/mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液。取試管分別加入0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液,用ddH2O補(bǔ)齊至2.0mL;加入6.0%苯酚、1mL ddH2O、98%濃硫酸5.0mL。混勻后于485nm測(cè)定光密度值。以葡萄糖含量(μg)為橫坐標(biāo)(x),光密度值為縱坐標(biāo)(y),作出葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.009 1x-0.006 7,R2=0.993 6。取0.1mL多糖提取液,加入1.9mL ddH2O、6.0%苯酚、1mL ddH2O、98%濃硫酸5.0mL,混勻后于485nm測(cè)定光密度值。按標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算多糖含量。
1.3.4 靈芝產(chǎn)量測(cè)定 在彈孢期后采收,用電子天平稱取子實(shí)體質(zhì)量。
1.3.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì) 本實(shí)驗(yàn)各處理重復(fù)3次,試驗(yàn)結(jié)果均以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示,各樣品組間差異顯著性采用單因素方差分析(One-Way ANOVA)進(jìn)行分析處理,兩均數(shù)間差異顯著性采用雙尾t檢驗(yàn)。所用統(tǒng)計(jì)軟件為SPSS10。(下轉(zhuǎn)22頁(yè))(上兿19頁(yè))2 結(jié)果與分析
2.1 不同濃度SNP對(duì)靈芝產(chǎn)量的影響 0~20mmol/L SNP處理對(duì)靈芝子實(shí)體產(chǎn)量變化情況如圖1所示。0.5、10和20mmol/L SNP處理組子實(shí)體干物質(zhì)積累與對(duì)照無(wú)顯著差異(P>0.05)。當(dāng)SNP濃度達(dá)到1和5mmol/L時(shí)則顯著促進(jìn)靈芝菌絲生長(zhǎng)(P<0.05),5mmol/L時(shí)子實(shí)體干重達(dá)到峰值,為對(duì)照組的1.11倍,生物學(xué)效率為112%。
圖1 不同濃度SNP對(duì)靈芝子實(shí)體產(chǎn)量的影響
2.2 不同濃度SNP對(duì)靈芝木質(zhì)素含量的影響 0.5、1、10和20mmol/L SNP處理組子實(shí)體木質(zhì)素含量與對(duì)照無(wú)顯著差異(P>0.05)。當(dāng)SNP濃度達(dá)到5mmol/L時(shí)子實(shí)體木質(zhì)素含量最低,為靈芝子實(shí)體干重的10.6%,顯著低于對(duì)照組的113.6%(P<0.05)。
圖2 不同濃度SNP對(duì)靈芝子實(shí)體木質(zhì)素含量的影響
圖3 不同濃度SNP對(duì)靈芝子實(shí)體多糖含量的影響
2.3 不同濃度SNP對(duì)靈芝多糖含量的影響 0.5和10mmol/L SNP處理組子實(shí)體靈芝多糖含量與對(duì)照無(wú)顯著差異(P>0.05)。當(dāng)SNP濃度達(dá)到1和5mmol/L時(shí)多糖含量顯著高于對(duì)照組(P<0.05),分別比對(duì)照組高23.3%和34.5%。當(dāng)SNP處理濃度為10mmol/L,子實(shí)體靈芝多糖含量則顯著低于對(duì)照組(P<0.05)。
3 討論
一氧化氮(NO)是一種氣體生物信號(hào)分子,廣泛參與真菌生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程和環(huán)境因子脅迫條件下次生代謝產(chǎn)物的積累[6-8]。Zheng等[9]的研究發(fā)現(xiàn),一定濃度的NO能夠誘導(dǎo)樺褐孔菌酚類化合物的積累。Kong等[10]報(bào)道,37℃熱脅迫刺激深層發(fā)酵白靈菇菌絲體NO的產(chǎn)生,外源NO供體硝普鈉能誘導(dǎo)白靈菇菌絲細(xì)胞內(nèi)海藻糖生物合成相關(guān)酶基因的表達(dá)而降低細(xì)胞內(nèi)膜脂過(guò)氧化產(chǎn)物丙二醛含量,從而增強(qiáng)耐熱性。本研究發(fā)現(xiàn),5mmol/L SNP能顯著提靈芝子實(shí)體產(chǎn)量、提高靈芝多糖含量,降低木質(zhì)素含量;當(dāng)SNP處理濃度達(dá)到20mmol/L時(shí),將抑制靈芝多糖的積累。有關(guān)NO降低靈芝木質(zhì)素含量而誘導(dǎo)靈芝多糖合成的生物化學(xué)機(jī)理正在進(jìn)一步研究之中。
參考文獻(xiàn)
[1]林志彬.靈芝的現(xiàn)代研究[M].3版.北京:北京大學(xué)醫(yī)學(xué)出版社,2007,1-359.
[2]Tang YJ ,Zhong JJ.Fed-batch fermentation of Ganoderma lucidum for hyperproduction of polysaccharide and ganoderic acid[J].Enzyme and Microbial Technology,2002,31(1): 20-28.
[3]李明春,雷林生,王慶彪.靈芝多糖對(duì)小鼠T細(xì)胞胞漿游離Ca2+濃度和胞內(nèi)pH的影響[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2001,17(2):167-170.
[4]藺麗,方能虎,吳旦.靈芝的主要生物活性研究概況[J].中國(guó)食用菌,2002,21(3):38-40.
[5]鞠志國(guó),劉成兵,原永兵.萊陽(yáng)仕梨酚類物質(zhì)合成的調(diào)節(jié)及其對(duì)果實(shí)品質(zhì)的影響[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),1993,26(4):44-48.
[6]You BJ,Chang W,Chung KR.Effect of solid-medium coupled with reactive oxygen species on ganoderic acid biosynthesis and MAP kinase phosphorylation in Ganoderma lucidum[J].Food research int,2012,49: 634-640.
[7]Jayashree T,Subramanyam C.Oxidative stress as a prerequisite for aflatoxin production by Aspergillus parasiticus[J].Free radical biology medicine,2000,29(10): 981-985.
[8]Aguirre J,Hansberg W,Navarro R.Fungal responses to reactive oxygen species [J].Medical Mycology,2006,44: 101-107.
[9]Zheng WF,Liu YB,Pan SY,Yuan WH.Involvements of S-nitrosylation and denitrosylation in the production of polyphenols by Inonotus obliquus[J].Appl Microbiol Biotechnol,2011,90: 1 763-1 772.
[10]Kong WW,Huang CY,Chen Q,Zou YJ,Zhang JX.Nitric oxide alleviates heat stress-induced oxidative damage in Pleurotus eryngii var tuoliensis[J].Fungal Genet Biol,2012,49: 15-20.