大棗中環磷酸腺苷的提取及體外抗過敏活性研究

王維有，曹晨晨，歐 赟，馬秋月，王 宇，周 婕，任迪峰，* ，魯 軍

(1.北京林業大學生物科學與技術學院，北京林業大學林業食品加工與安全北京市重點實驗室，北京100083;2.中國食品發酵工業研究院，北京市蛋白功能肽工程技術研究中心，北京100027)

大棗(Fructus jujubae)為鼠李科植物，我國棗樹種植面積占世界的98%以上［1］，資源相當豐富。環磷腺苷酸(cyclic adenosine monophosphate，cAMP)是一種重要的生物活性物質，廣泛存在于植物細胞中［2］，具有重要的生理調節作用［3－4］，可用于調節免疫［5－6］、抑制哮喘［7］，并能有效治療心肌梗塞、冠心病、牛皮癬等疾病。目前，國內外研究者對cAMP的應用表示出極大興趣，正積極尋找獲取這種天然藥物的手段。針對棗中cAMP的提取，目前已建立了微波輔助萃?。?］、水提［9］等方法，但這些方法存在能耗大、時間長等不足。閃式提取是一種依靠高速機械剪切力和超動力分子滲濾的技術［10］，其通過強大的剪切力加速細胞破碎，以使其中的小分子溶出，因此具有操作簡單、快速高效的特點。目前，還未有利用閃式提取技術分離大棗中cAMP的報道。另外，盡管國內外有不少關于cAMP的研究，但鮮有關于其抗過敏活性的報道。為了充分開發利用棗中的cAMP，本研究利用閃式提取法，通過正交實驗確定大棗cAMP的最優提取工藝。在對提取液粗品進行純化的基礎上，進一步采用透明質酸酶體外抑制實驗，對cAMP抗過敏活性進行初步探討，旨在為大棗cAMP的深入開發和抗過敏應用打下基礎。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

大棗 早脆王棗(充分成熟)，采自北京林業大學滄州棗園基地;cAMP標準品(純度99%)、甲醇(色譜純)、無水乙醇(分析純)、磷酸二氫鉀(色譜純)北京化學試劑公司;D101型大孔樹脂 天津南開大學化工廠;透明質酸酶(分析純)、透明質酸鉀(分析純)德國Sigma公司;對－二甲氨基苯甲醛、鹽酸、硼酸、乙酰丙酮、碳酸鈉等 均為分析純，北京化工廠。

島津LC－10A高效液相色譜儀 含LC－10ATvp泵，SPD－10A紫外檢測器，C－R8A色譜數據處理儀，日本島津;Venusil MP C18色譜柱 天津博納艾杰爾科技有限公司;冷凍離心機 Sigma公司;KQ－500E型超聲清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;RE－5203旋轉蒸發儀 上海亞榮生化儀器廠;SHZ－88A往復式水浴恒溫震蕩器 太倉市實驗設備廠;SHB－Ⅲ循環式多用真空泵 鄭州長城科工貿有限公司;PL403儀器電子天平 梅特勒－托利多;DZF－6050真空干燥機 深圳市三諾儀表有限公司;FA1604N電子分析天平 上海精密儀器廠。

1.2 實驗方法

1.2.1 制作標準曲線 將準確稱取的標準品配成濃度分別為 1、3、5、10、15μg/mL 的溶液。分別取上述溶液各15μL注入高效液相色譜儀進行分析，色譜條件:色譜柱采用Venusil MP C18;流動相:20mmol/L磷酸二酸鉀－乙醇(80∶20);流速1mL/min;溫度為室溫;檢測波長256nm;進樣量為15μL。按照色譜峰面積作出標準曲線。

1.2.2 提取大棗cAMP單因素實驗 將早脆王棗清洗，去核，切片后真空干燥(70℃，95kPa)，粉碎過60目篩。準確稱取早脆王棗粉10.0g，加入適量體積、適當濃度的乙醇混勻，按照料液比、乙醇體積分數、提取時間、提取次數等條件進行閃式提取，提取液以8000r/min離心兩次，合并上清液后過0.45μm濾膜，采用高效液相色譜法測定cAMP含量，cAMP提取率計算公式如下:

cAMP提取率(μg/g)=提取液中cAMP質量(μg)/早脆王棗棗粉質量(g)式(1)

1.2.2.1 提取溶劑濃度的影響 10.0g棗粉加入150mL乙醇中，設定料液比1∶15，提取10s，提取2次，乙醇體積分數分別為0、15%、30%、45%、60%、75%、90%，按照1.2.2的操作方法測定cAMP含量。

1.2.2.2 料液比的影響 10.0g棗粉分別按1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30 加入乙醇，設定乙醇體積分數60%、提取10s、提取2次，按照1.2.2的操作方法測定cAMP含量。

1.2.2.3 提取時間的影響 10.0g棗粉加入150mL乙醇中，設定料液比1∶15、乙醇體積分數60%、提取2次，提取時間分別為20、40、60s，按照1.2.2的操作方法測定cAMP含量。

1.2.2.4 提取次數的影響 10.0g棗粉加入150mL乙醇中，設定料液比1∶15、乙醇體積分數60%、提取10s，提取次數分別為 1、2、3、4 次，按照1.2.2 的操作方法測定cAMP含量。

1.2.3 正交實驗 在單因素實驗的基礎上，選定乙醇體積分數、提取時間、料液比和提取次數做正交實驗(表1)，以cAMP提取率為指標，獲得cAMP的最優提取工藝。

表1 正交實驗設計表Table 1 Design of the orthogonal experiment

1.2.4 大棗cAMP粗提物的純化 研究表明，D101型大孔樹脂適合大棗cAMP提取液的純化［11］。取適量D101型大孔吸附樹脂，用95%乙醇浸泡12h后水洗至中性;繼續用5%HCl浸泡6h，水洗至中性;再用5%NaOH浸泡6h，水洗至中性;最后用蒸餾水洗至中性。將處理好的樹脂用乙醇濕法裝柱，隨后，分別對最大上樣體積、洗脫液濃度、洗脫流速進行考察。

首先將 cAMP提取液濃縮至 20μg/mL，以1.5BV/h的流速上樣，每1h收集一管，每管9mL，收集各時期洗脫液，過0.45μm微孔濾膜，進行cAMP含量測定并繪制泄露曲線。

再取過量cAMP提取液，上樣后靜置吸附12h。以10%乙醇洗脫樣品，流速分別采用0.5、1、1.5BV/h，收集各時期洗脫液，過0.45μm微孔濾膜，進行cAMP含量測定。

最后，取適量cAMP提取液上樣6h后靜置吸附12h，改變乙醇體積分數分別為20%、30%、40%和50%，以1BV/h的流速洗脫樣品，收集各時期洗脫液，過0.45μm微孔濾膜，進行cAMP含量測定。

1.2.5 大棗cAMP提取物抗過敏活性的測定

1.2.5.1 透明質酸酶體外抑制率的測定 采用透明質酸酶體外抑制實驗法(E1son－Morgan法)測定提純后的cAMP提取物的抗過敏活性。將2.5mmol/L的CaCl20.1mL加入0.5mL透明質酸酶(500U/mL)中，37℃保溫20min;加入待測液0.5mL，37℃保溫20min;加入0.4mg/mL透明質酸鈉液0.5mL，37℃保溫40min后常溫放置5min，加入0.4mol/L NaOH溶液0.1mL，水浴10min，加入乙酰丙酮碳酸鈉溶液0.5mL，沸水浴15min，用水冷卻;加入3mL無水乙醇10mL，再加入埃爾利試劑1.0mL，混勻，常溫放置20min后，于530nm處測定吸光值。

透明質酸酶抑制率計算公式為:

透明質酸酶抑制率(%)=［(a－b)－(c－d)］/(a－b)×100 式(2)

其中，a為透明質酸酶+樣品+透明質酸酶鉀的吸光度值，b為醋酸緩沖液+樣品+醋酸緩沖液的吸光度值，c為透明質酸酶+蒸餾水+透明質酸酶鉀的吸光度值，d為醋酸緩沖液+蒸餾水+醋酸緩沖液的吸光度值。

1.2.6 數據分析 所有實驗均至少重復三次，結果以“平均值±標準偏差”表示。利用 Excel和SPSS 16.0軟件對獲得的數據進行統計分析。

2 結果與討論

2.1 單因素實驗

乙醇體積分數對cAMP提取率的影響如圖1(a)所示。該圖表明，在0～60%范圍內，cAMP提取率隨著乙醇體積分數的增大而增加，但當乙醇體積分數大于60%時，提取率不但沒有增加，反而有所下降。王立霞［12］等人也得出類似結論。這可能是由于在某一特定濃度下，cAMP分子與乙醇分子間相互吸引力最大，排斥力最小;當乙醇濃度繼續增加時，cAMP溶解處于過飽和狀態，有少量分子結晶析出而使溶解度下降。選乙醇體積分數45%、60%和75%作為正交實驗的一組因素。

料液比對cAMP提取率的影響如圖1(b)所示。如圖所示，cAMP提取率隨料液比從1∶5到1∶30逐漸增大。料液比在1∶5至1∶20范圍內，cAMP提取率增長明顯;而當料液比繼續增加時，提取率增長則十分緩慢。選料液比1∶10、1∶15 和1∶20 作為正交實驗的一組因素。

提取時間對cAMP提取率的影響如圖1(c)所示。由該圖可以看出，cAMP提取率在提取時間0～40s范圍內逐漸增大;在40s后，提取率增加趨于平緩。出于節約能源與提高效率的考慮，40s即可定為最佳提取時間。選提取時間20、40、60s作為正交實驗的一組因素。

提取次數對cAMP提取率的影響如圖1(d)所示。由該圖可以看出，cAMP提取率隨著提取次數的增加而逐漸提高，但增加趨勢不明顯。當提取次數為4次時，提取率僅比提取3次時高1.6μg/g。綜合考慮，選擇提取次數1，2，3三個水平作為正交實驗的一組因素。

2.2 正交實驗結果及最優提取工藝

提取大棗中cAMP的正交實驗按L9(34)的正交實驗表進行，共9組，其結果見表2，方差分析見表3。從表2實驗結果及極差分析可以看出:極差大小依次為RA＞RC＞RB＞RD，四個因素對cAMP提取率影響的主次順序是A＞C＞B＞D，大棗cAMP的最佳提取工藝為A2B2C2D3，即60%乙醇、料液比1∶20、提取時間40s和提取次數3次。表3方差分析表明，乙醇體積分數、料液比對cAMP提取率的影響極顯著，提取時間對cAMP提取率的影響顯著，而提取次數對cAMP提取率的影響不顯著。

圖1 單因素實驗結果Fig.1 The results of single factor experiments

對優化提取工藝條件(60%乙醇、料液比1∶20、提取次數3次、提取時間40s)進行驗證實驗，重復三次，此條件下cAMP的提取率為(149.5±3.6)μg/g。

2.3 純化結果

2.3.1 泄露曲線 圖2為cAMP提取液泄露曲線，從圖中可以看出，當收集流份數大于9時，cAMP含量明顯升高，故確定其為漏點。因此對于D101型大孔吸附樹脂來說，20μg/mL的cAMP提取液最大上樣體積為70mL。

2.3.2 洗脫流速的影響 圖3顯示出洗脫液流速對cAMP純化結果的影響。從圖3(a)中可以看到，洗脫流速為0.5BV/h時洗脫時間最長，而與其他兩個流速相對應的洗脫時間基本相等;從圖3(b)中可以看到，樹脂中cAMP提取物在洗脫流速為1BV/h洗脫效果最好。綜合考慮，選擇1BV/h作為洗脫流速。

表2 正交實驗結果表Table 2 Result of the orthogonal experiment

表3 正交實驗方差分析Table 3 Analysis of variance of the orthogonal experiment

圖2 cAMP提取液泄露曲線Fig.2 The leaking curve of cAMP extracts

2.3.3 乙醇濃度的影響 圖4顯示出洗脫液濃度對cAMP提取物純化結果的影響。由圖可知，在20%～40%范圍內，乙醇濃度越大，洗脫液中cAMP含量越高，分離效果越明顯。而乙醇濃度高于40%時，洗脫液中cAMP的含量有所下降，洗脫效果變差。這可能是由于乙醇為介于極性和非極性之間的溶劑［13］，當乙醇濃度增大到一定程度時，越來越多的羥基與H2O形成氫鍵，導致溶液極性增大，不利于cAMP這種弱極性物質的洗脫。由此可知，乙醇濃度為40%時分離純化效果最佳。

圖3 洗脫液流速的影響Fig.3 Effect of the elution rate

圖4 乙醇濃度的影響Fig.4 Effect of the ethanol concentration

2.3.4 純化結果 依照上述確定的cAMP最優純化條件，將20μg/mL的大棗 cAMP提取液70mL，上樣于D101型大孔樹脂，控制流速1.5BV/h;上樣完畢后，用40%乙醇以1BV/h流速洗脫180min。將洗脫液真空冷凍干燥，最終可獲得純度為68.5% ±3.4%的cAMP提取物樣品。與王荔［14］等人的研究相比，此純化方法可得到純度更高的cAMP提取物，為將來的實際應用奠定了基礎。

2.4 抗過敏實驗結果

對1.2.4中純化得到的cAMP提取物進行透明質酸酶抑制實驗，結果如圖5所示。

圖5表明，cAMP提取物對透明質酸酶活性的抑制隨前者濃度的提高而逐漸增大，最大抑制率達96.2% ±4.1%。用SPSS Statistic軟件分析數據，建立回歸方程:y=－2.156x2+26.667x+19.716，R2=0.9871，回歸方程p＜0.01。此方程可靠性較高，計算透明質酸酶抑制率為50%時所需的cAMP提取物質量濃度IC50=0.91mg/mL。大棗cAMP的抗過敏活性檢測結果與黃皮葉不同溶劑提取物［15］的抗過敏相比還要高，說明cAMP也是一種具有較強抗過敏活性的天然物質，具有很好的應用前景。

圖5 cAMP提取物對透明質酸酶活性的抑制作用Fig.5 The inhibitory effect of cAMP extracts on the activity of hyaluronidase

3 結論

本研究通過單因素和正交實驗獲得了應用閃提法獲取大棗中cAMP的最優工藝:以60%乙醇為溶劑，料液比1∶20，提取3次，每次提取40s，在該工藝條件下 cAMP提取率達(149.5±3.6)μg/g。利用D101型大孔樹脂純化cAMP提取物的結果表明:20μg/mL cAMP提取液以1.5BV/h流速上樣70mL，用40%乙醇以1BV/h流速洗脫，此手段純化cAMP提取物純度可達68.5%±3.4%。

利用Elson－Morgan法對純化后的cAMP提取物進行抗過敏性測定，其透明質酸酶抑制率最大可達96.2% ±4.1%，顯示出良好的抗過敏活性，說明具有潛在的功能應用價值。

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