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煙草土壤微生物與土壤酶活性分析

2012-12-31 00:00:00張翼曹仕明史俊孟貴星譚軍趙秀云
湖北農業科學 2012年19期

摘要:從湖北省恩施咸豐縣煙田采集煙草(Nicotiana tabacum L.)不同生長時期的土壤樣品,采用稀釋平板涂布法進行細菌、放線菌、氨化細菌、硝化細菌、真菌的分離并對土壤蔗糖酶、脲酶、磷酸酶、過氧化氫酶進行酶活性的測定。試驗結果表明,①土壤中氨化細菌數量最多,真菌數量最少。各種類群微生物在煙草整個生育期間變化波動較大,不同類群微生物消長趨勢不同,整體呈上升趨勢;其中,煙草生長旺盛期微生物數量最多。②在煙草生長前期,土壤脲酶活性較高;磷酸酶活性在前、中期均處于比較高的水平;在后期,隨著土壤熟化程度的提高,蔗糖酶活性增強較明顯;過氧化氫酶活性在各個時期的變化較平穩。

關鍵詞:煙草(Nicotiana tabacum L.);土壤微生物;土壤酶活性

中圖分類號:S572 文獻標識碼:A 文章編號:0439—8114(2012)19—4229—04

煙草(Nicotiana tabacum L.)是一種特殊的葉用經濟作物,其生長發育和質量形成與土壤生物學特性和生態環境有著密切的關系。土壤微生物是土壤的重要組成部分,它對土壤肥力的形成和植物營養的轉化起著積極的作用[1]。土壤微生物種類、數量可以作為評價土壤肥力的指標[2]。土壤酶活性與土壤微生物類群密切相關,土壤酶活性反映了土壤微生物群落的代謝狀況。土壤微生物和土壤酶既是土壤有機物轉化的執行者,又是植物營養元素的活性庫[3]。此外,酶是土壤組分中最活躍的有機成分之一,土壤酶活性反應了土壤的生物學活性。研究煙草土壤中微生物類群和數量以及土壤酶活性隨著煙草不同生長時期的變化動態有助于分析影響煙草生長發育的土壤生態因子。本試驗對湖北省恩施咸豐縣煙田不同生長時期的土壤微生物進行分離,并對土壤酶活性進行測定,分析了土壤微生物數量和土壤酶活性在煙草不同時期的差異和變化動態,探索土壤微生物、酶活與煙草生長的關系。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

供試樣品采自湖北省恩施咸豐縣高樂山鎮小模村煙田。土壤類型為黃棕壤,質地疏松,通透性好。年平均氣溫15~17 ℃,年降水量為1 300~1 500 mm,相對濕度80%。栽培煙草品種為云煙87,使用肥料為烤煙專用復合肥。供試細菌、放線菌、真菌、氨化細菌、硝化細菌所用培養基分別為LB培養基、高氏一號培養基、PDA培養基、蛋白胨氨化培養基、硝化細菌培養基。供試儀器為720型分光光度計、恒溫培養搖床、恒溫培養箱。供試試劑為0.3%過氧化氫、3,5—二硝基水楊酸、蔗糖、磷酸苯二鈉、4—氨基安替吡啉、鉀鋁礬等。

1.2 試驗方法

1.2.1 采樣方法 分別在煙草施用基肥前1 d(移栽前)、移栽當天,移栽后15、30、45、60、75、90 d和采收完畢后采集土樣,共9次。挖取煙株之間壟上土壤耕層0~20 cm表層、中層和底層的土壤,混勻,用保鮮袋裝好,貼好標簽。

1.2.2 樣品處理 土樣采回后立即對土壤微生物進行分離。用于土壤酶活性測定的土樣及時風干、過篩,放置于室溫保存。

1.2.3 測定方法

1)土壤微生物的分離及數量測定。采用稀釋涂布平板法進行土壤微生物的分離[4,5]。稱取10 g土壤樣品,放入90 mL無菌水中,攪拌均勻。將土壤懸液進行10倍系列梯度(10—3、10—4、10—5、10—6、10—7)稀釋,吸取不同稀釋濃度的土壤懸液進行各種微生物的分離。將分離培養的細菌放入37 ℃培養箱中培養2 d;放線菌放入28 ℃培養箱中培養7 d;氨化細菌放入28 ℃培養箱中培養5 d;硝化細菌放入28 ℃培養箱中培養7 d;真菌放入28 ℃ 培養箱培養7 d。菌落數量采用平板菌落計數法,每個稀釋度做3次重復。計算公式:微生物數量(CFU/g)=同一稀釋度3次重復平均菌落數×稀釋倍數×100。

2)蔗糖酶活性的測定。采用3,5—二硝基水楊酸比色法[6,7]。以蔗糖為基質,根據酶促產物葡萄糖與3,5—二硝基水楊酸生成有色化合物3—氨基—5—硝基水楊酸的量進行比色測定。同時做標準曲線、無基質對照和無土壤對照試驗。蔗糖酶活性(mg/g)以24 h后每克土樣所產生葡萄糖的質量來表示。

3)脲酶活性的測定。采用比色法[6,7]。以尿素為基質,酶促水解后生成的氨在強堿性溶液中與苯酚鈉及次氯酸鈉作用生成藍色的靛酚,以其生成數量與氨濃度成正比來進行定量分析。同時做標準曲線、無基質對照和無土壤對照試驗。土壤脲酶活性(mg/100 g)以100 g土中NH3—N的含量表示。

4)磷酸酶活性的測定。采用磷酸苯二鈉比色法。其原理是磷酸苯二鈉作為基質被土壤磷酸酶水解后生成酚,測定酚的質量即可確定磷酸酶的活性[6,7]。磷酸酶活性(mg/g)以每克風干土壤中的酚含量來表示。

5)過氧化氫酶活性的測定。采用紫外分光光度計法[8]。基于過氧化氫酶能酶促過氧化氫分解生成水和氧氣,通過加入等量過量的過氧化氫與土壤作用一段時間,加入量與剩余量之差即為被酶催化反應消耗的過氧化氫,以此表示酶活性。過氧化氫在240 nm處有強烈吸收,通過測定與土壤反應后溶液在此波長下的吸光度,即可得到溶液中過氧化氫的濃度,計算酶的活性。過氧化氫酶的活性(mg/g)用每20 min內每克土壤分解的過氧化氫的量表示。

2 結果與分析

2.1 土壤微生物數量的變化

從試驗結果(表1)可見,土壤中氨化細菌數量最多,真菌數量最少。煙草生長中期(移栽后45 d)土壤微生物數量最多,達到了4.7×107 CFU/g,早期(移栽當天)和末期(采收后)土壤微生物數量較少,說明煙草生長旺盛期土壤具有豐富的微生物。移栽前微生物數量較多,而移栽時數量減少,這可能是由于施肥、翻土等農事操作對土壤中微生物的生長環境影響較大。

不同種類的微生物數量在煙草不同生育期的變化趨勢不同。其中,土壤中細菌數量移栽前最多,達4.2×106 CFU/g土,移栽當天數量急劇下降。在煙草生長前期土壤中細菌數量(移栽當天至移栽后30 d)變化較小、中期(移栽后45 d)明顯上升,移栽后60 d又明顯下降,之后一直呈上升趨勢。土壤中真菌數量除早期(移栽時)較少外,其余時期均較多,尤其是中、后期真菌數量最多。土壤中放線菌數量在生長前、中期數量較多,后期數量明顯上升,移栽后90 d達到最高值,為2.2×106 CFU/g 土。土壤中硝化細菌數量變化不明顯,在生長中、后期有緩慢增加的趨勢。土壤中氨化細菌數量隨著時間的推移變化幅度比較大,在煙草不同生長時期出現兩次高峰,分別是移栽后15 d和45 d,在煙草生長后期氨化細菌數量也較多。

2.2 土壤酶活性的變化

2.2.1 蔗糖酶活性 蔗糖酶能酶促蔗糖水解成葡萄糖和果糖。隨著土壤熟化程度的提高,蔗糖酶的活性亦增強。常用土壤蔗糖酶活性表征土壤的熟化程度和肥力水平。土壤中蔗糖酶活性在前期(移栽前至移栽后15 d)緩慢下降;移栽后30~60 d蔗糖酶活性較低,移栽后75 d蔗糖酶活性顯著上升,移栽后90 d蔗糖酶活性最高,為11.49 mg/g(圖1)。表明在后期,隨著土壤熟化程度的提高,蔗糖酶活性增強較明顯。

2.2.2 脲酶活性 脲酶是一種酰胺酶,能酶促有機質分子中肽鍵的水解。土壤中脲酶活性在前期變化較大,在移栽后15 d上升至最高值,為538.89 mg/100 g土,此后脲酶活性下降至較低水平,后期脲酶活性又緩慢上升(圖2)。

2.2.3 磷酸酶活性 土壤中磷酸酶活性在前、中期(移栽前至移栽后60 d)均處于比較高的水平;移栽后60 d磷酸酶活性最高,為26.34 mg/g ;移栽后75 d磷酸酶活性急劇下降;此后,磷酸酶活性上升至之前水平(圖3)。總體來說,土壤磷酸酶活性較高。

2.2.4 過氧化氫酶活性 土壤中過氧化氫酶活性在各個時期變化較平穩,移栽前酶活最高,為0.99 mg/g;此后過氧化氫酶活性緩慢下降,在中、后期(移栽后45 d至采收完畢)酶活變化不明顯(圖4)。土壤過氧化氫酶的活性代表了土壤的呼吸強度,表明土壤呼吸強度較穩定,在煙草的整個生育期變化不明顯。

3 小結與討論

3.1 土壤微生物在煙草不同生長時期的變化

煙草根際土壤中氨化細菌數量最多,真菌數量最少。煙草生長中期(移栽后45 d)土壤微生物數量最多,早期(移栽當天)和末期(采收后)土壤微生物數量最少,說明煙草生長旺盛期土壤微生物類群豐富,種群數量大。

土壤中各種類群微生物在整個生育期間變化波動較大,不同類群微生物消長趨勢不同,整體呈上升趨勢。放線菌數量在生長前、中期數量較多,后期數量明顯上升。土壤中的放線菌多數可產生抗生素,拮抗土壤中的病原菌,煙草根際土壤中放線菌數量在煙草生長后期增加將有益于防治煙草病害。土壤中的氨或銨鹽在硝化細菌(亞硝酸細菌、硝酸細菌)的作用下轉變為硝酸鹽,NO3—N是作物良好的有效態養分,增加了植物可利用的氮素營養,土壤中硝化細菌的活動可提高土壤肥力[6]。土壤中硝化細菌數量在煙草生長中、后期增加,可促進煙草對氮肥的吸收利用。土壤中含氮的有機物在氨化細菌作用下分解釋放出氨,氨與土壤中的酸根結合成銨鹽,再經硝化細菌的作用轉化成硝酸鹽,增強土壤肥力。氨化細菌數量與土壤肥力成正相關,土壤中氨化細菌數量在煙草生長中、后期較多,可促進土壤肥力及煙草的生長。

3.2 土壤酶活性在煙草不同生長時期的變化

土壤中不同種類酶活在煙草不同生長時期變化趨勢不同,煙草生長前期的脲酶、過氧化氫酶、磷酸酶活性較高。土壤中脲酶活性可用于表征土壤中的氮素狀況,土壤中脲酶活性在煙草生長早期較高將有利于氮元素的吸收和利用。磷酸酶能促進有機磷化合物的水解,表征土壤磷的肥力狀況。磷酸酶活性在前、中期均處于比較高的水平,表明土壤磷的肥力良好。隨著土壤熟化程度的提高,后期蔗糖酶活性增強較明顯。

參考文獻:

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[6] 關松萌.土壤酶及其研究法[M].北京:農業出版社,1986.

[7] 周禮愷.土壤酶學[M].北京:科學出版社, 1987.254—260.

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[9] 陳紅軍,孟 虎,陳鈞鴻.兩種生物農藥對土壤蔗糖酶活性的影響[J].生態環境,2008,17(2):584—588.

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