林凡 王敏 洪曉泉 周偉 王欣 秦仁義
·短篇論著·
miR-146b-5p異常表達對胰腺癌細胞生物學特性的影響
林凡 王敏 洪曉泉 周偉 王欣 秦仁義
MicroRNAs(miRNAs) 是由一類內源性的非編碼RNA組成,長度大約20~24 nt,來源于長的前體pri-miRNA和pre-miRNA[1-3]。在多細胞生物體中,它通過不完全堿基互補配對的方式識別靶位點,轉錄后調控基因的表達[4-5]。盡管過去的幾年中通過基因芯片篩查腫瘤特異性miRNA有很大的進展[6],但miRNA影響腫瘤形成和發展的機制仍不清楚。本研究檢測6株胰腺癌細胞miR-146b-5p的表達,觀察其對胰腺癌細胞生物學特性的影響。
1.細胞培養和轉染:人胰腺癌細胞系MIA PaCa-2、BxPC-3、AsPC-1、PANC1、SW1990、PC-3為同濟醫院膽胰外科實驗室保存,3例正常胰腺組織為膽管腫瘤行胰十二指腸切除術的手術標本。取對數生長期miR-146b-5p表達最低的MIA PaCa-2細胞,采用lipofectamineTM2000將miR-146b-5p mimics和陰性對照miRNA(廣州銳博公司)分別轉染細胞,按照lipo2000轉染試劑盒說明書操作。
2.qRT-PCR檢測miR-146b-5p的表達:應用Trizol(Invitrogen公司)提取細胞或組織中的總RNA。分光光度計(Eppendorf BioPhotometer)測RNA的純度和濃度。應用ReverTra Ace?qPCR RT Kit(FSQ-101,TOYOBO公司) 二步法合成cDNA。應用SYBR?Green Realtime PCR Master Mix(TOYOBO公司)行實時熒光定量PCR。miR-146b-5p莖環狀逆轉錄引物,上、下游引物和內參RNA U6引物均購自廣州銳博公司。PCR反應條件:95℃ 3 min,95℃ 15 s、60℃ 1 min,40次循環。獲得的數據運用公式RQ=2-△△Ct的方法計算mRNA表達量。實驗重復3次,取均值。
3.MTT法檢測細胞增殖:直接在96孔板轉染細胞,24、36、48、60、72 h時分別每孔加入20 μl MTT(5 g/L,Sigma公司)繼續培養4 h,棄去液體,加入150 μl DMSO,震蕩10 min,酶標儀測定各孔490 nm 處的吸光值(A490值)。每個時間點設5個復孔,實驗重復3次,取均值。
4.流式細胞儀檢測細胞凋亡率和細胞周期:取轉染48 h細胞,消化后用預冷的PBS洗2次,部分細胞用500 μl Binding Buffer 重懸細胞于流式管中,加入5 μl Annexin Ⅴ/FITC(南京凱基公司),再加入5 μl PI,混勻后室溫避光15 min,上流式細胞儀檢測細胞凋亡率;部分細胞用PBS重懸,加入兩倍體積在-20℃預冷的70%乙醇4℃固定過夜。PBS洗滌2次后加100 μl RNase A,37℃水浴 30 min,再加入400 μl PI混勻,4℃避光30 min,上機檢測細胞周期。實驗重復3次,取均值。
5.細胞劃痕實驗檢測細胞遷移能力:MIA PaCa-2細胞轉染48 h后,用100 μl的消毒槍頭進行人工劃痕,用無血清培養液洗滌2次去除細胞碎片,倒置顯微鏡下(Nikon,日本)測量劃痕區相對距離。繼續培養24 h后,新鮮培養基洗滌2次,鏡下觀察細胞向劃痕區遷移的數目。每組設3個平行孔,每孔隨機選取3個視野進行細胞計數。
6.Transwell小室侵襲實驗檢測細胞侵襲能力:應用基質膠包被Transwell小室(Corning公司)微孔膜。上室加入用無血清RPMI-1640培養液重懸的轉染48 h的MIA PaCa-2細胞200 μl(含10萬個細胞),下室內加入600 μl含20% FBS的RPMI-1640完全培養液。培養24 h后吸去室內液體,用棉棒擦去微孔膜上室面的細胞,甲醛固定15 min,PBS洗2遍后晾干,5 μg/ml DAPI(上海碧云天公司)染色30 min,PBS洗2遍,熒光顯微鏡下隨機選取3個視野計穿膜細胞數。實驗做3個小室,取均值。

1.6株胰腺癌細胞的miR-146b-5p表達:以3例正常胰腺組織miR-146b-5p的表達均值為對照,U6為內參, MIA PaCa-2、BxPC-3、AsPC-1、PANC1、SW1990和PC-3細胞miR-146b-5p表達量均低于正常胰腺組織,其中以MIA PaCa-2細胞表達最低(圖1)。
2.轉染后MIA PaCa-2細胞的miR-146b-5p表達:轉染48 h后,MIA PaCa-2細胞miR-146b-5p表達量較對照組細胞升高306.5倍。
3.細胞增殖變化:轉染 miR-146b-5p的MIA PaCa-2細胞與對照組細胞的生長曲線幾乎一致,差異無統計學意義(P>0.05,圖2)。
4.細胞周期及凋亡率的變化:轉染 miR-146b-5p與對照組MIA PaCa-2細胞的凋亡率和細胞周期差異均無統計學意義(P>0.05,表 1)。
5.細胞遷移和侵襲力的變化:轉染miR-146b-5p組MIA PaCa-2細胞的遷移細胞為(36±4 )個,細胞穿膜數為(35±3)個,均較對照組的(165±10)個及(140±9)個顯著減少(圖3;t=79.00、19.17,P<0.05)。

圖1 正常胰腺組織及6株胰腺癌細胞的miR-146b-5p表達

圖2 轉染組與對照組MIA PaCa-2細胞的生長曲線

表1 兩組的細胞凋亡率和細胞周期

圖3轉染組(a)與對照組(b)MIA PaCa-2細胞的遷移(上)和穿膜細胞(下)
討論近年來一類長度約為22nt的miRNAs受到了人們的廣泛關注,它是一種廣泛存在的對基因進行微調的分子,約占人類基因組的1%。miRNAs不直接編碼蛋白,其與目的基因結合降解mRNA和(或)抑制其翻譯,對細胞的分化、增殖和凋亡等起著極為重要的調控作用[7]。研究表明,miRNAs和腫瘤的發生、發展密切相關,多個miRNA被證實為癌基因和抑癌基因[8]。
Taganov等[9]研究發現,miR-146通過負反饋調節降低IL-1受體相關激酶1、TNF受體相關因子6蛋白水平而抑制天然免疫反應。Hurst等[10]證實,乳腺癌轉移抑制因子1(BRMS1)上調miR-146,從而抑制乳腺癌細胞轉移。Xia等[11]發現,miR-146b 通過靶向基質金屬蛋白酶抑制神經膠質瘤細胞的遷移和侵襲。之前我們應用miRNAs 芯片技術比較了胰腺癌干細胞(CD24+CD44+ESA+)與非干細胞miRNAs表達譜的差異,發現miR-146b-5p在胰腺癌干細胞中的表達顯著降低。本研究應用qRT-PCR檢測了6株胰腺癌細胞中miR-146b-5p的表達,結果發現,6株胰腺癌細胞miR-146b-5p表達均較正常胰腺組織下調,以MIA PaCa-2細胞的表達最低。
為了明確miR-146b-5p對胰腺癌生物學特性的影響,本研究將miR-146b-5p mimics轉染MIA PaCa-2細胞。結果顯示,轉染miR-146b-5p mimics后,MIA PaCa-2細胞miR-146b-5p表達水平顯著升高,細胞增殖能力、細胞凋亡率、細胞周期無明顯改變,但細胞遷移和侵襲能力明顯降低,表明miR-146b-5p可能對胰腺癌細胞的遷移和侵襲有調控作用。但是miRNAs的作用是協同的,網絡式的,將某一個miRNA挑出來研究可能會孤立地片面的看問題。miR-146b-5p不是胰腺癌中惟一異常表達的小RNA分子,所以應該找出更多異常表達的小RNA分子,發現它們之間的聯系,以便更好地理解胰腺癌的發生機制。
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10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2012.02.020
國家自然科學基金(81071775)
430030 武漢,華中科技大學同濟醫學院附屬同濟醫院膽胰外科
秦仁義,Email:ryqin@tjh.tjmu.edu.cn
2011-03-03)
(本文編輯:呂芳萍)