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MAT1基因沉默對胰腺癌細胞生長的影響

2012-11-06 01:46:02劉建平陶永勝李輝張世能袁世珍
中華胰腺病雜志 2012年4期
關鍵詞:生長

劉建平 陶永勝 李輝 張世能 袁世珍

·短篇論著·

MAT1基因沉默對胰腺癌細胞生長的影響

劉建平 陶永勝 李輝 張世能 袁世珍

我們既往的研究證實,作為調控細胞周期循環的關鍵基因之一,人類MAT1(ménage à trios 1)基因在胰腺癌組織中表達增強,它參與胰腺癌的發生[1-2]。轉染反義MAT1基因可使胰腺癌細胞出現明顯的G1期阻滯[3]。為此,本研究應用體外轉錄法合成靶向MAT1基因的小干擾RNA(small interference RNA, siRNA),轉染胰腺癌Capan-2細胞,觀察其對細胞的生長抑制效應,探討siRNA沉默MAT1基因用于胰腺癌基因治療的可行性。

一、材料與方法

1.細胞培養及MAT1蛋白表達的檢測:人胰腺癌細胞株Capan-2從美國加州大學引進,常規培養、傳代。收集對數生長期細胞,裂解提取蛋白,常規行蛋白質印跡法檢測細胞MAT1蛋白表達。羊抗人MAT1多抗(Santa Cruz biotechnology公司)工作濃度1∶100,兔抗羊IgG單抗(Santa Cruz biotechnology公司)工作濃度1∶500,用PBS代替抗體作為陰性對照。細胞胞質或胞核出現棕黃色顆粒為陽性[2]。

2.靶向MAT1的siRNA合成及細胞轉染:參照Elbashir等[4]的哺乳動物細胞RNAi的“AA-N19”設計原則,以MAT1基因的cDNA序列為模板,篩選4條mRNA序列:序列1:5′-GGUGUUGUCCAAAUCCACAUU-3′;序列2:5′-GUCGUUCCACUUCUAAAGCUU-3′;序列3:5′-ACGUCACUGGUUUUACAGGUU-3′;序列4:5′-CUGUGGAAAACGUCA CUGGUU-3′。另設計1條陰性對照序列,5′-AGCGGAUCCAAUCUUUGUGUU-3′。 在GenBank數據庫中使用BLAST以確保目的序列與其他基因沒有同源性。然后根據堿基互補原則設計出總長度為29個堿基的脫氧核苷酸鏈,共10條,由QIAGEN-Operon公司合成。采用SilencerTMsiRNA Construction Kit(Ambion公司)在體外轉錄合成4條21-nt的靶向MAT1的siRNAs(siRNA-MAT1)和陰性對照的siRNAs(siRNA-C)。用紫外分光光度儀檢測每一條siRNA的產量和純度,用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測產物大小和完整性。用SilencerTMsiRNA Labeling Kit(cy3)(Ambion公司)標記siRNAs,用SilencerTMsiRNA Transfection Kit(Ambion公司)將5條siRNAs分別轉染Capan-2細胞,在熒光顯微鏡下直接計數判斷轉染效率[2]。應用4條siRNA-MAT1中轉染效率最高的細胞進行以下實驗。

3.細胞生長曲線繪制:取對數生長期siRNA-MAT1轉染細胞、siRNA-C轉染細胞、未轉染細胞,分別以1×105個細胞密度接種于6孔細胞培養板的各孔,其中未轉染細胞又分為Lipid對照組(培養液中加Lipid)和空白對照組。連續培養3 d,并于每天同一時間消化細胞,光鏡下直接計數活細胞數量,按我們以往的方法[2]繪制各組細胞的生長曲線圖。

4.細胞周期及增殖指數檢測: 分別取siRNA-MAT1轉染組和空白對照組細胞,連續培養3 d,按我們以往的方法[2]上流式細胞儀分析細胞周期曲線,并計算細胞增殖指數(PI)。

5.統計學處理:應用SPSS11.5統計軟件分析,計量資料用t檢驗。P<0.05為差異具有統計學意義。

二、結果

1.Capan-2細胞的MAT1蛋白表達:MAT1蛋白在胰腺癌細胞株Capan-2中呈強陽性表達(圖1)。

圖1siRNA-MAT1轉染(a)和未轉染細胞(b)MAT1表達(×200)

2.siRNA-MAT1的轉染效率:Capan-2細胞中轉染效率>90%,轉染后Cy3熒光能持續96 h(圖2)。

圖2Capan-2細胞轉染siRNA-MAT1后的光鏡(a)及熒光顯微鏡下(b)照片(×400)

3.siRNA-MAT1轉染對Capan-2細胞增殖的影響:4條設計合成的siRNAs序列中有2條(序列2和序列3)可顯著抑制Capan-2細胞的生長,其中序列2在72 h后細胞生長抑制率為21.6%,96 h后的生長抑制率為26.7%;序列3在72 h后細胞生長抑制率達38.8%,96 h后的抑制率達41.8%(圖3),二者有差異(P<0.01),故選取序列3繼續后續實驗。流式細胞儀分析顯示siRNA-MAT1(序列3)轉染組轉染48 h后G0/G1期細胞比例明顯上升,到72 h后已出現明顯的G0/G1期細胞滯留,S期細胞比例明顯下降,PI值亦明顯下降,有顯著性差異(表1)。

圖2 siRNA-MAT1(序列3)抑制BxPC3細胞增殖生長

組別轉染后24hG0/G1SPI空白對照組52.9±1.922.8±1.946.8±2.5轉染組53.5±1.926.1±1.8a47.1±1.8組別轉染后48hG0/G1SPI空白對照組54.5±1.130.6±1.245.5±1.2轉染組70.3±1.6b20.0±0.9a29.6±1.6b組別轉染后72hG0/G1SPI空白對照組57.9±1.624.3±1.942.1±1.7轉染組81.9±2.3b11.3±0.7b18.1±0.7b

注:與空白對照組比較,aP<0.05;bP<0.001

討論既往研究早已明確細胞周期蛋白依賴性激酶(cyclin-dependent kinase, CDK )在細胞生長周期中所起的作用,而作為CDK的激活激酶(CDK activating kinase,CAK)是通過影響CDK的活性來控制細胞進程的。MAT1基因是CAK這一三聚體復合物( MAT1/CDK7/Cyclin H)的重要組成部分,對CAK的活性起著分子開關的作用。 Rossi等[7]經典的基因敲除實驗已證實,MAT1 (-/-)基因缺陷型小鼠細胞不能進入S期,從而影響細胞的增殖和生長。Wu等[8]報道,轉導反義MAT1的RNA進入骨肉瘤細胞株MG-63,72 h后細胞生長抑制率約33.3%,G0/G1期細胞比例由44.2%上升到67.0%。Zhang等[9]轉導反義MAT1的RNA進入成神經細胞瘤CHP126細胞中, 72 h后G0/G1期細胞比例由43%上升到66%。張世能等[3]證實,轉染反義MAT1的RNA進入胰腺癌BxPC3細胞后,通過CAK磷酸化Rb途徑影響細胞周期蛋白,使細胞生長阻滯于G1期的晚期。Ohkawa等[10]發現,丙肝病毒核心能使MAT1從CAK中分離,從而削弱了細胞由G1期向S期轉化的能力。基于MAT1基因在調節信號分子轉導、控制細胞周期進程、影響細胞增殖或凋亡等方面的關鍵性作用,可以推測,在未來的抗病毒治療(如艾滋病,病毒性肝炎)和腫瘤基因治療的靶目標中,MAT1基因是值得期待的一個突破口[11-13]。

我們以往的實驗結果顯示,轉染siRNA-MAT1 72 h后,胰腺癌BxPC3細胞生長明顯受抑制[2]。本實驗在Capan-2細胞中又獲得相似結果,高比例的細胞滯留于G0/G1,未見明顯凋亡峰出現,再一次證實MAT1基因的正常表達是細胞從G1期進入S期所必需的,單純下調MAT1蛋白的表達即可抑制腫瘤細胞生長,使其滯留于G0/G1期。我們以往的實驗顯示,反義MAT1的RNA在非腫瘤細胞中可誘發明顯的細胞凋亡,但在腫瘤細胞中均未見凋亡峰出現[2-3,8-9]。本實驗在Capan-2細胞中亦未誘發細胞凋亡,提示靶向MAT1基因的單純反義RNA或RNAi干擾沉默技術可能都不足以使腫瘤細胞出現明顯的凋亡。

[1] 劉建平,袁世珍,張世能,等.胰腺癌中MAT1蛋白的表達與其臨床病理特征的關系.中國病理生理雜志,2005,21:163-166.

[2] 劉建平, 袁世珍, 張世能. 小干擾RNA沉默MAT1基因治療胰腺癌的實驗研究. 中華醫學雜志,2007,87:2719-2723.

[3] 張世能,徐鳳琴,黃志清,等.反義MAT1重組腺病毒對人胰腺癌細胞BxPC-3的周期調控作用.中華醫學雜志,2005,85:1348-1351.

[4] Elbashir SM, Harborth J, Lendeckel W, et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediates RNA interference in cultured mammalian cells. Nature,2001, 411: 494-498.

[5] Plasterk RH. RNA silencing: the genome`s immune system. Science, 2002, 296:1263-1265.

[6] Harborth J, Elbashir SM, Bechert K, et al. Identification of essential genes in cultured mammalian cells using small interfering RNAs. J Cell Sci, 2001, 114: 4557-4565.

[7] Rossi DJ, Londesborough A, Korsisaari N, et al. Inability to enter S phase and defective RNA polymerase II CTD phosphorylation in mice lacking Mat1. EMBO J, 2001, 20: 2844-2856.

[8] Wu L,Chen P,Shum CH,et al.MAT1-modulated CAK activity regulates cell cycle G(1) exit.Mol Cell Biol,2001,21:260-270.

[9] Zhang S, He Q, Peng H, et al. MAT1-modulated cyclin-dependent kinase-activating kinase activity cross-regulates neuroblastoma cell G1 arrest and neurite outgrowth. Cancer Res, 2004, 64: 2977-2983.

[10] Ohkawa K, Ishida H, Nakanishi F, et al. Hepatitis C virus core functions as a suppressor of cyclin-dependent kinase-activating kinase and impairs cell cycle progression. J Biol Chem, 2004, 279:11917-11926.

[11] 劉建平, 袁世珍.“分子開關”MAT1基因的研究進展.國外醫學·生理、病理科學與臨床分冊,2004,24:306-308.

[12] Li Y, Jin G, Wang H, et al. Polymorphisms of CAK genes and risk for lung cancer: a case-control study in Chinese population. Lung Cancer, 2007, 58:171-183.

[13] Helenius K, Yang Y, Alasaari J, et al. Mat1 inhibits peroxisome proliferator-activated receptor gamma-mediated adipocyte differentiation. Mol Cell Biol, 2009,29:315-323.

10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2012.04.016

518029 深圳,廣東省邊防總隊醫院消化內科(劉建平、陶永勝、李輝);中山大學附屬第二醫院消化內科(張世能、袁世珍)

劉建平,Email: championliu@yahoo.com.cn

2011-06-24)

(本文編輯:屠振興)

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