兩種消毒方法對殼聚糖溫敏凝膠物理性能及生物學特性影響的研究

彭 博，臧圣奇，劉敏杰，馬志偉，王新文，劉玲俠，王勤濤

(第四軍醫大學口腔醫學院，陜西西安 710032)

牙周病是危害人類口腔和全身健康的主要口腔疾病，其所導致牙周支持組織喪失，是成年人牙齒喪失的主要原因之一。牙周治療的目標不僅是控制炎癥，更在于使已破壞的牙周組織再生以形成新附著。傳統的牙周治療和引導組織再生技術雖取得一定的臨床效果，但尚不能達到上述目的。隨著組織工程技術的發展，為牙周病的治療開辟了新的思路和方法，而具有良好生物性能的支架材料一直是組織工程學研究的重點。

殼聚糖溫敏凝膠是一種天然來源的聚陽離子生物聚合體，由于其來源廣泛，且具有無毒性［1］、良好的生物相容性［2］和可降解性［3－4］、抗菌活性［5］、粘附性［6］以及促進組織再生等良好性能［7］，已作為藥物緩釋系統［8］和支架材料［9］在醫學、生物學領域得到了深入的研究和廣泛的應用。

然而，傳統的消毒方法會導致殼聚糖凝膠的物理性能不穩定，從而限制了在牙周組織工程中的應用，本研究通過改變殼聚糖的消毒方法，檢測其凝膠化時間和粘度，并觀察人牙周膜細胞在凝膠表面和凝膠浸提液中增殖情況，為其能作為更穩定的牙周組織工程支架材料提供實驗室依據。

1 材料和方法

1.1 主要材料和儀器

殼聚糖(448877，DD≥85%，sigma公司，美國);β－甘油磷酸鈉(β－GP;醫藥級，Merck公司，德國);α－MEM 培養基(Hyclone，美國);胎牛血清(北京賽默飛世爾生物化學制品有限公司);電子天平(JY2002，上海良平儀表);0.22 μm 除菌濾器、酶標儀(TECAN sunrise，奧地利);倒置熒光顯微鏡(Leica DM6000B，德國 )。

1.2 兩種消毒方法制備殼聚糖溫敏凝膠

1.2.1 傳統消毒方法制備殼聚糖溫敏凝膠

稱取0.2 g殼聚糖粉置于試劑瓶內，室溫下逐步加入9 mL稀鹽酸(0.1 mol/L)，磁力攪拌器攪拌2 h，直至殼聚糖粉完全溶解，配制成的殼聚糖－鹽酸液，經高溫高壓消毒(120℃，10 min)后作為A液;另取0.56 g β－GP溶解于1 mL雙蒸水中，配制成濃度為560 g/L的 β－GP液，超凈臺內用0.22 μm 除菌濾器過濾消毒作為B液;A、B兩種溶液冰浴15 min后，超凈臺內將B液逐滴加入A液中，攪拌10 min，即獲得終濃度為20 g/L的殼聚糖溫敏凝膠。

1.2.2 改進消毒法制備殼聚糖溫敏凝膠

稱取0.2 g殼聚糖粉置于試劑瓶內，先單獨進行高溫高壓消毒(120℃/10 min)后，再加入9 mL鹽酸液，磁力攪拌器攪拌2 h直至完全溶解配成A液，然后再按1.2.1相同的方法制備B液和溫敏凝膠。

1.3 殼聚糖溫敏凝膠凝膠化效果觀察

凝膠化效果采用倒置法觀察，分別將裝有不同消毒方法制備的殼聚糖溶膠的燒杯置于37℃水浴箱內，每1 min倒置觀察1次，燒杯倒置30 s之內凝膠無流動為凝膠化成功。

1.4 殼聚糖溫敏凝膠粘度檢測

取兩種消毒方法配制的殼聚糖溫敏凝膠各10 mL，分別置于粘度測試儀內(Brookfield HBT)，將粘度儀溫度設為37℃，轉子(1號轉子)轉速設定為 1.0 r/min，分別于 0、1、3、5、10、15、20、30 min各測試一次粘度。

1.5 超微結構觀察

分別取兩種消毒方法配制的殼聚糖溫敏凝膠，梯度脫水、抽真空、凍干、噴金，掃描電鏡下觀察。

1.6 殼聚糖溫敏凝膠生物相容性實驗

1.6.1 人牙周膜細胞體外培養

取18歲以上志愿者因正畸減數拔除的前磨牙，刮取根中1/3處牙周膜，采用酶消化法原代培養牙周膜細胞，3 d換培養液1次常規傳代后，取生長良好的第三代細胞用于實驗。

1.6.2 牙周膜細胞在兩種溫敏凝膠表面生長情況觀察

取生長良好的第3代人牙周膜細胞，以1×104/cm2接種在兩種消毒方法制備的凝膠表面，放入孵箱內，37℃，50 mL/L CO2，飽和濕度條件下培養。每3 d換培養液1次，7 d后分別取出凝膠，用40 g/L多聚甲醛液固定，避光條件下DAPI染色，熒光倒置顯微鏡觀察。

1.6.3 兩種溫敏凝膠浸提液對牙周膜細胞增殖的影響

分別取兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠各5 mL，置于50 mL無菌試劑瓶中，加入45 mL含100 mL/L胎牛血清的α－MEM細胞培養液，37℃下浸提24 h后吸取培養液作為浸提液用于實驗。

取生長良好的第三代牙周膜細胞，制成細胞密度為1×104/mL的單細胞懸液，以200 μL/孔接種于96孔板，置37℃ 、50 mL/L CO2的培養箱中孵育，24 h后，棄原培養液，并將細胞隨機分為2個實驗組和1個空白對照組，每組復5個孔。2個實驗組分別加入2種消毒方法制備的凝膠浸提液;空白對照組加入含100 mL/L胎牛血清的α－MEM培養液繼續培養。3 d換液1次，分別于培養后的1、2、3、4、5、6、7 d 取出各組細胞，于每孔中加入 20 μL MTT液，繼續培養4 h后，小心吸去孔內液體，每孔加入150 μL二甲基亞砜，震蕩10 min，用酶標儀測定各孔490 nm處的吸光值(OD)。

1.7 統計學分析

2 結果

2.1 兩種消毒方法殼聚糖溫敏凝膠溫敏特性比較

兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠pH均在6.8～7.2，凝膠化前均呈微黃色、透明、可流動溶膠狀(圖1a)，置于37℃水浴箱內，常規消毒組凝膠化時間為10～30 min，改進消毒組凝膠化時間為5～6 min，凝膠化后呈微黃色半透明不可流動膠凍狀(圖1b)，兩種殼聚糖溫敏凝膠凝膠化后均不會變回可流動溶膠狀。

2.2 兩種消毒方法殼聚糖溫敏凝膠粘度比較

改進消毒法組殼聚糖溫敏凝膠初始粘度為(9.94 ±0.38)Pa.s，隨著在 37 ℃水浴箱內的時間增長，其粘度逐漸升高，10 min時達到峰值(50.25 ±0.96)Pa.s，此后不再隨著時間而有明顯變化;常規消毒法組殼聚糖溫敏凝膠初始粘度為(0.90 ±0.45)Pa.s，在37 ℃水浴箱內，其粘度隨時間延長稍有增加，但變化不明顯，15 min時僅為(4.05 ±0.72)Pa.s，此后趨于平穩，兩組各時間點粘度差異均有統計學意義(P＜0.05)(圖2)。

2.3 兩種消毒法殼聚糖溫敏凝膠超微結構

兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠均呈三維立體網狀多孔結構，內有大量排列不規則的微孔隙，常規消毒法殼聚糖溫敏凝膠孔徑為10～48.33 μm(圖3a);改進消毒法殼聚糖溫敏凝膠孔徑為0.385 ～2 μm(圖3b)。

圖1 殼聚糖溫敏凝膠凝膠化前后一般性狀

圖2 兩組殼聚糖溫敏凝膠粘度變化曲線

圖3 兩組殼聚糖溫敏凝膠電鏡下超微結構(×10000)

2.4 人牙周膜細胞在兩種溫敏凝膠表面生長情況

在兩種消毒法制備的殼聚糖溫敏凝膠表面培養7 d的牙周膜細胞，經dapi染色后倒置熒光顯微鏡下觀察，細胞核呈藍色熒光，胞核大小均一，數量眾多(圖4)，表明生長情況良好，提示兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠與牙周膜細胞相容性均良好。

圖4 人牙周膜細胞在兩組殼聚糖溫敏凝膠表面生長情況

2.5 兩種溫敏凝膠浸提液對人牙周膜細胞增殖的影響

通過MTT檢測，兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠浸提液組在培養后 1、2、3、4、5、6、7 d 各時間點的增殖情況相近，且均與空白對照組無顯著性差異(P ＞0.05)，3組生長曲線均呈“S”形(圖5)。

圖5 兩種溫敏凝膠浸提液對人牙周膜細胞增殖的影響

3 討論

殼聚糖溫敏凝膠材料因其具有流動性好，可與生長因子、種子細胞混合，植入時手術創傷小等諸多優點，而成為牙周組織工程領域的一個研究熱點［10］。作為溫敏型的凝膠材料，其在室溫下或者低于室溫時可保持流動性，而溫度達到體溫時則可凝膠化，這種體溫固化的自適應性能，是其他支架材料不可比擬的。

殼聚糖溫敏凝膠中殼聚糖的濃度多為1.80% ～2.35%，能被 0.1 mol/L 的鹽酸液溶解，β－GP液濃度一般為45% ～56%(w/v)，殼聚糖溫敏凝膠溫敏自凝化機制的產生在pH值為6.8～7.2時，一般認為是由于甘油磷酸鈉的加入，直接影響了殼聚糖分子鏈之間的靜電力、疏水作用和氫鍵的結果，甘油磷酸鈉的弱堿性和殼聚糖上的胺基相互作用、吸引，使甘油部分暴露，殼聚糖鏈分解，在室溫或者低于室溫下，殼聚糖水凝膠保持液態;當溫度提高至接近人體體溫(37℃)時，由于疏水鍵和氫鍵的引力大于鏈間靜電排斥力，殼聚糖分子鏈間的部分片段發生物理結合，從而出現凝膠化。而pH值較低時由于存在鏈間靜電排斥力，阻礙了氫鍵形成，使得凝膠化所需的初始溫度較高。殼聚糖水凝膠在低溫(4℃)時也可以凝膠，只不過凝膠時間很長，最長可達3個月。

目前對殼聚糖溫敏凝膠的消毒方法，一般采用將殼聚糖溶解于鹽酸液后再高溫高壓消毒(120 ℃，10 min)，β－GP 液用0.22 μm 除菌濾器過濾消毒，然后將再兩種溶液混合的方案。Jarry等［11－12］發現殼聚糖鹽酸液經高溫高壓消毒后會導致最終殼聚糖凝膠分子質量損失30%，動態粘度降低3～10倍，力學性能明顯降低，雖然添加多元醇可以消除部分高溫高壓消毒帶來的負面影響，添加葡萄糖可以提高凝膠粘度和強度，但程度有限，且不適用于糖尿病病人。本研究發現，采用常規消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠，其凝膠化時間不穩定，甚至有長時間不凝膠化等現象。

殼聚糖的脫乙酰度也是影響殼聚糖溫敏凝膠凝膠化的重要因素，關于殼聚糖溫敏凝膠文獻報道中，殼聚糖脫乙酰度多為 85% ～95%。Chenite［13］、Ruel－Gariepy 等［14］在比較不同脫乙酰度和相對分子量的殼聚糖制備的溫敏凝膠流變學特性時發現，脫乙酰度越高則凝膠化溫度越低，凝膠化時間縮短，反之則凝膠化所需溫度升高，時間延長;而相對分子量對凝膠溫度影響不大;此外，脫乙酰度還是影響炎性反應的關鍵因素，脫乙酰度越低，炎性反應越大，脫乙酰度越高，炎性反應越小。但殼聚糖脫乙酰度為平均值，同批次產品有不同差異，從而導致殼聚糖凝膠化時間不穩定，如果凝膠時間過長，殼聚糖溫敏凝膠在體內未凝膠化之前容易被體液或者血液稀釋，不易滯留患處，凝膠化后，其力學強度也降低，從而影響支架材料的效果。

本研究對殼聚糖溫敏凝膠的消毒方法進行了改進，先單獨對殼聚糖粉進行高溫高壓消毒(120℃，10 min)，然后再用鹽酸液溶解。用此法制備的殼聚糖溫敏凝膠粘度有明顯的增加，從初始粘度到終粘度，均較常規消毒法殼聚糖溫敏凝膠組有明顯提高。這可能由于殼聚糖在高溫狀況下，鏈與鏈之間發生聚合，相對分子質量增大所致。另有文獻報道高溫高壓消毒對殼聚糖的其他理化性質影響不大［15］。改進消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠的凝膠化時間為5～6 min，比傳統消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠凝膠化時間(10～30 min)明顯縮短，且凝膠時間更加穩定，使材料注入體內后更易駐留，同時還可作為生物粘合劑與其他顆粒狀固體材料(如骨移植材料)附合，使植入物更牢固的固定于受植區而不易脫落。

此外掃描電鏡觀察發現，兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠均呈三維立體網狀多孔結構，含大量孔隙，但改進消毒方法組殼聚糖溫敏凝膠的孔徑明顯小于常規消毒方法組。

Christiane等［16］報道，人 BMSCs細胞在殼聚糖支架材料表面伸展良好，生長較快。Ashkan等［17］也證實，人成骨細胞和軟骨細胞在殼聚糖支架上生長良好。牙周膜細胞是牙周組織的主要功能細胞，在牙周組織再生中起到了重要的作用，是具有多種生物學功能和分化潛能的細胞群，是牙周組織再生修復的重要細胞，本研究分別觀察了兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠及其浸提液對第三代人牙周膜細胞增殖的影響，結果顯示，人牙周膜細胞在兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠表面及其浸提液中均生長良好，說明兩種消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠均具有良好的生物相容性。采用改進消毒方法制備的殼聚糖溫敏凝膠凝膠化時間更短、粘度更大，且與常規消毒方法一樣擁有良好的生物相容性。

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