屈新輝 張昆南▲ 王衛真 梅海濤 閔生輝 曹文鋒 吳曉牧
1.江西省人民醫院神經內科,江西南昌 330006;2.江西省人民醫院超聲診斷科,江西南昌 330006;3.江西省人民醫院核醫學科,江西南昌 330006
頸動脈粥樣硬化是缺血性腦血管病的主要危險因素之一[1-2]。 神經肽Y(Neuropeptide Y,NPY)是由36個氨基酸殘基組成的神經活性肽,廣泛存在于中樞和周圍神經系統內。近年來發現,通過血管收縮作用或刺激血小板激活或胰島素抵抗,交感神經興奮所產生的NPY可間接促進動脈粥樣硬化形成[3]。本研究觀察了缺血性腦血管病患者血漿NPY水平,分析了NPY與頸動脈粥樣硬化的相關性,旨在探討在缺血性腦血管病中NPY與頸動脈粥樣硬化的關系和作用。現報道如下:
將2009年1月~2010年12月于我院神經內科住院/門診的急性頸動脈粥樣硬化性腦梗死患者116例作為急性腦梗死組,其中,男61例,女55例;年齡42~80歲,平均61歲;將同期神經內科診斷的短暫性腦缺血發作(TIA)患者48例作為TIA組,其中,男26例,女22例,年齡49~76歲,平均62歲;將同期神經內科診斷的頸動脈粥樣硬化患者92例作為頸動脈硬化組,其中,男49例,女43例,年齡52~79歲,平均61歲。另選擇同期在我院正常健康體檢者95例作為對照組,其中,男 50例,女 45例,年齡 43~75歲,平均62歲,對照組頸部血管檢查未見異常。所有入選者無口服他汀類藥物史,近期無感染病史。四組性別、年齡、吸煙、血脂、糖尿病等臨床資料比較,差異無統計學意義(P>0.05),具有可比性。
1.2.1 神經肽Y測定 清晨空腹取肘靜脈血2 mL,分別注入含40 μL 7.5%EDTA-2Na和 40 μL抑肽酶的抗凝管中混勻,4℃ 3 000 r/min離心10 min,分離血漿,-20℃保存待測。測定前將樣本置于室溫下復融,混勻,再次4℃3 000 r/min離心10 min,取上清液,采用放射免疫法測定NPY水平。放射免疫試劑盒由北京普爾偉業生物科技有限公司提供,按說明書由專人操作。試劑盒參數:靈敏度<33 pg/mL,可測范圍為33~1 200 pg/mL,批內變異系數<10%,批間變異系數<15%。
1.2.2 頸動脈超聲檢測 采用美國惠普Sonos Agilent 5500 彩色多普勒超聲診斷儀進行頸動脈超聲檢測,使用11-31 線陣探頭,測量頸總動脈內膜中層厚度(IMT):患者取仰臥位,縱向超聲顯像可表現為由相對較低回聲分隔的兩條平行亮線,兩線間垂直距離即IMT。凍結頸動脈竇以下1 cm圖像,測量3次IMT值,取3次測量值的平均值為頸總動脈IMT值。
以IMT<1.0 mm為頸動脈超聲陰性;IMT≥1.0 mm為頸動脈粥樣硬化。管腔狹窄率=[(頸總動脈管徑-最小殘存管徑)/頸總動脈管徑]×100%。狹窄程度分級按以下標準:0~49%為輕度狹窄;50%~69%為中度狹窄;70%~99%為重度狹窄;100%為完全閉塞。
采用SPSS 11.5 統計學軟件進行數據分析,計量資料數據用均數±標準差(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗;相關性分析采用Pearson檢驗;以P<0.05 為差異有統計學意義。
急性腦梗死組、TIA組、頸動脈硬化組患者NPY水平較對照組明顯升高,差異均有高度統計學意義(均P<0.01);急性腦梗死組和TIA組患者NPY水平較頸動脈硬化組明顯升高,差異有統計學意義(P<0.05);隨著缺血性腦血管病頸動脈粥樣硬化程度加重,血漿NPY水平呈現增高趨勢,頸動脈重度狹窄與輕、中度狹窄相比,NPY水平差異有統計學意義(P < 0.05)。 見表1。
急性腦梗死組、TIA組、頸動脈硬化組頸動脈IMT值差異無統計學意義 (P>0.05);三組血漿NPY水平與頸總動脈IMT值呈正相關(均P<0.05)。見表2。
NPY是由36個氨基酸殘基組成的神經活性肽,廣泛存在于中樞和周圍神經系統。NPY主要來源于交感神經,一方面可作為遞質或調質,通過影響心血管中樞神經元的活動,實現對心血管活動的調節;另一方面可直接或間接作用于血管,影響血管內皮的功能和平滑肌細胞的增殖,對動脈粥樣硬化形成起著重要作用。研究認為,NPY對血管調節的短期效應為影響血管的舒縮平衡,長期效應為調節血管壁的生長、增殖和結構重塑。NPY可能影響血管內皮細胞形態,調節內原性血管舒縮,促進單核細胞與內皮細胞的黏附,刺激血管平滑肌細胞(VSMC)發生增殖或肥大,誘導VSMC凋亡基因的表達。本研究發現,在缺血性腦血管病中隨著頸動脈粥樣硬化程度加重,血漿NPY水平呈現增高趨勢;頸動脈重度狹窄與輕、中度狹窄相比,NPY水平差異有統計學意義 (P<0.05);且血漿NPY水平與均頸總動脈IMT值呈正相關關系(P<0.05)。考慮NPY誘導動脈粥樣硬化形成的機制如下:①刺激血管平滑肌增生。Pons等[4]在離體實驗研究中發現,NPY通過刺激Y1、Y5 受體激活鼠和人的VSMC,促進細胞分裂。②激活血小板(PLT)。血管內皮損傷后,PLT聚集黏附,NPY隨之在損傷處堆積,促進PLT激活[5]。③NPY介導血管性假性血友病因子(vWF)表達和血栓形成,促進動脈粥樣硬化形成。④刺激免疫復合物形成,促進血管阻塞。NPY一方面通過激活新生血管內膜,加快其形成;另一方面,NPY與血管形成因子一起激活二肽基肽酶Ⅳ (dipeptidyl peptidaseⅣ,DPPⅣ),促進NPY轉化并參與免疫復合物的重構[6]。透明質酸酶免疫染色法已證實了NPY可促進免疫復合物沉積[7]。因此,血漿中NPY水平可以反映頸動脈粥樣硬化的程度。
表1 各組血漿神經肽Y水平比較(±s,ng/L)

表1 各組血漿神經肽Y水平比較(±s,ng/L)
注:與對照組比較,*P<0.01;與頸動脈硬化組比較,△P<0.05;與同組輕、中度狹窄比較,#P<0.05
組別例數 血漿NPY水平急性腦梗死組重度狹窄輕、中度狹窄TIA組重度狹窄輕、中度狹窄頸動脈硬化組重度狹窄輕、中度狹窄對照組116 44 72 48 18 30 92 22 70 95 264.18 ±39.63*△268.32 ±41.52#255.10 ±27.18 261.31 ±38.57*△265.64 ±40.06#244.83 ±26.19 248.14 ±30.42*256.43 ±30.47#240.74 ±25.80 230.35 ±23.19
表2 血漿神經肽Y水平與各組頸總動脈內膜中層厚度的相關性分析(±s)

表2 血漿神經肽Y水平與各組頸總動脈內膜中層厚度的相關性分析(±s)
組別例數 頸總動脈IMT值(mm)血漿NPY水平(ng/L) r值 P 值急性腦梗死組TIA組頸動脈硬化組116 48 92 1.23 ±0.22 1.21 ±0.20 1.19 ±0.18 264.18 ±39.63 261.31 ±38.57 248.14 ±30.42 0.163 0.245 0.179 0.037 0.046 0.043
在動脈粥樣硬化逐漸形成的基礎上,動脈內膜損傷裂解形成潰瘍后,血小板及纖維素等有形成分黏附、聚集、沉著形成血栓。PLT聚集時又釋放大量的NPY,血循環中NPY作用于心腦血管系統,產生收縮效應,并作用于中樞系統使心率變緩,血壓下降,減少腦灌注,造成TIA及腦梗死。本研究結果顯示,缺血性腦血管病(包括急性腦梗死、TIA、頸動脈硬化)患者NPY水平明顯較對照組升高(P<0.01),急性腦梗死和TIA組血漿NPY水平較單純頸動脈硬化組高,差異有統計學意義(P<0.05)。提示NPY參與了頸動脈粥樣硬化繼發腦缺血、腦梗死的病理生理過程,檢測血漿NPY水平有利于對腦缺血病情的判斷。
總之,筆者認為,檢測缺血性腦血管病患者血漿NPY水平,可以反映頸動脈粥樣硬化的程度,對探討頸動脈粥樣硬化造成缺血性腦血管病的發病機制,判斷病情和指導臨床治療提供參考依據。
[1] Linfante I,Andreone V,Akkawi N,et al.Internal carotid artery stenting in patients over 80 years of age:singlecenter experience and review of the literature[J].J Neuroimaging,2009,19:158-163.
[2] Hunt KJ,Evans GW,Folsom AR,et al.Acoustic shadowing on B-mode ultrasond of the carotid artery predicts ischemic stroke:the Atherosclerosis Risk in Communities(ARIC)study[J].Stroke,2001,32:1120-1126.
[3] Esler M,Kaye D.Sympathetic nervous system activation in essential hypertension,cardiac failure and psychosomatic heartdisease[J].J Cardiovasc Pharmacol,2000,35:1-7.
[4] Pons J,Kitlinska J,Ji H,et al.Neuropeptide Y and vascular growth:role of Y1 and Y5 receptors and adrenergic activation[J].Can J Pharmacol,2003,81:177-185.
[5] Ignarro LJ.Nitric oxide:a unique endogenous signalingmolecule in vascularbiology[J].Biosci Rep,1999,19:51-71.
[6] Ghersi G,Dong H,Goldstein LA,et al.Regulation of fibroblastmigration on collagenousmatrixby a cell surface peptidase complex[J].J Biol Chem,2002,277:29231-29241.
[7] Ward MR,Tsao PS,Agrotis A,et al.Low blood flow after angioplasty augments mechanisms of restenosis:inward vessel remodeling,cellmigration,and activity of genes regulating migration[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2001,21:208-213.