摘 要 合成了聚苯胺納米纖維,直徑在50~70 nm之間;基于靜電作用構(gòu)建聚苯胺納米纖維-納米金復(fù)合膜界面,并在此界面上層層組裝修飾葉酸分子,構(gòu)建葉酸功能化傳感界面,基于葉酸分子與癌細(xì)胞表面過量表達(dá)的葉酸受體之間的特異性識別作用,將此傳感界面應(yīng)用于對癌細(xì)胞的識別和捕獲。結(jié)果表明: 葉酸功能化傳感界面能夠特異性識別和捕獲葉酸受體過量表達(dá)的癌細(xì)胞。采用電化學(xué)阻抗技術(shù),以HeLa細(xì)胞為模型,應(yīng)用于對癌細(xì)胞的識別和檢測,細(xì)胞在1.0×104~6.4×106 cells/mL濃度范圍內(nèi)與阻抗變化值ΔRct呈良好的線性關(guān)系;檢出限為2000 cells/mL。本方法簡單、快速靈敏、重現(xiàn)性和穩(wěn)定性良好;制備的傳感器可以再生使用。
關(guān)鍵詞 細(xì)胞傳感器; 聚苯胺納米纖維; 納米金; 癌細(xì)胞
1 引 言
基于電化學(xué)檢測的細(xì)胞傳感器,是通過測量電化學(xué)信號(如電流、阻抗及電容等)分析評價(jià)細(xì)胞,目前已成為生物傳感器研究領(lǐng)域的熱點(diǎn)。電化學(xué)技術(shù)可對細(xì)胞生長發(fā)育以及細(xì)胞功能變化等方面提供相關(guān)信息。近年來,一系列電化學(xué)細(xì)胞傳感器已用于對細(xì)胞的類別、濃度、活性、增殖、擴(kuò)散、調(diào)亡及細(xì)胞內(nèi)外分子的分布等的研究。電化學(xué)阻抗技術(shù)因其對細(xì)胞無創(chuàng)傷性及細(xì)胞在電極界面的高阻抗性而被用于研究細(xì)胞的生理學(xué)、形態(tài)學(xué)及細(xì)胞功能變化等。
目前,用于構(gòu)建電化學(xué)細(xì)胞傳感器界面的材料主要有殼聚糖、納米金、碳納米管等生物相容性好的材料。Chen等基于鍵合生物相容性的殼聚糖(CS)和具有良好導(dǎo)電性的碳納米管(CNF)形成復(fù)合膜,控制電沉積形成的CS-CNF納米復(fù)合物膜具有良好的生物相容性,可用于固定K562細(xì)胞。Zhang等基于功能化碳納米管(PDCNx)、硫堇(TH)和納米金(AuNPs),通過層層組裝方式形成三維結(jié)構(gòu)基底,制備了可用于評價(jià)細(xì)胞表面P-gp表達(dá)量的生物傳感器。Ding等在絲網(wǎng)印刷碳電極上電聚合聚苯胺,利用電聚合聚苯胺界面吸附細(xì)胞,通過測量細(xì)胞吸附后阻抗的變化研究和監(jiān)測K562細(xì)胞的粘附和增殖;實(shí)驗(yàn)表明,細(xì)胞可以在聚苯胺界面生長增殖,說明聚苯胺具有良好的生物相容性。目前,利用聚苯胺納米纖維(PANI-NF)作為基底材料構(gòu)建電化學(xué)細(xì)胞傳感器界面尚未見報(bào)道。 圖1 葉酸的分子結(jié)構(gòu)
Fig.1 Structure of folic acid(FA)
葉酸(FA),即維生素B9,是親水性的小分子,其分子結(jié)構(gòu)式如圖1。葉酸受體(FR)被稱作高親和性葉酸結(jié)合蛋白,膜表面的FR可與FA特異性結(jié)合。FR在正常組織表達(dá)高度保守,而在大部分惡性腫瘤中高度表達(dá), 有時(shí)比正常組織高100~300倍。
本研究將PANI-NF與AuNPs復(fù)合形成納米復(fù)合膜界面,在PANI-NF/AuNPs界面上層層組裝修飾上葉酸(FA),構(gòu)建了新的傳感界面電化學(xué)細(xì)胞傳感器(圖2)。以PANI-NF為基底,具有高的比表面積和帶正電荷,對AuNPs有較好的吸附能力,有利于界面修飾生物分子;同時(shí)用BSA封堵傳感界面上空余的活性位點(diǎn),提高傳感界面的特異性識別能力,可應(yīng)用于癌細(xì)胞的識別與檢測,進(jìn)一步應(yīng)用于其它細(xì)胞功能性研究。
2 實(shí)驗(yàn)部分
2.1 儀器、試劑與材料
CHI660a電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司);TECNAI-10透射電鏡(TEM,美國Philips公司); Autoprobe CP Research原子力顯微鏡(AFM,美國Thermo Microscopes公司)。
苯胺、過硫酸銨(廣州化學(xué)試劑廠),葉酸、谷胱甘肽、NHS、EDC(AR,Aldrich公司),其它試劑均為分析純。實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水。磷酸鹽緩沖溶液(PBS,pH 7.4,含有8 mmol/L Na2HPO4, 1.5 mmol/L KH2PO4,137 mmol/L NaCl和27 mmol/L KCl)。
HeLa細(xì)胞(中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞庫)。人淋巴細(xì)胞和血紅細(xì)胞由健康人外周血中分離獲得。細(xì)胞培養(yǎng)所用培養(yǎng)液為RPMI1640(Sigma公司);新生牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司)。RPMI1640培養(yǎng)基在使用前加入新生牛血清和雙抗儲備液(青霉素十鏈霉素),使血清的含量為10%,青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U/mL和100 mg/L。
2.2 復(fù)合膜修飾電極的制備
制備聚苯胺納米纖維和納米金參考文獻(xiàn)。取10
SymbolmA@ L 0.2 g/L PANI-NF溶液滴涂在新鮮玻碳電極表面,室溫干燥后,浸入新制納米金溶液(10-12 mol/L)即得PANI-NF/AuNPs納米復(fù)合膜;將復(fù)合膜修飾電極在谷胱甘肽(5.0 g/L)溶液中反應(yīng)后得GCE/PANI-NF/AuNPs/GSH;將此傳感界面在15 mmol/L NHS/75 mmol/L EDC存在條件下與葉酸(50 mmol/L)反應(yīng)得GCE/PANI-NF/AuNPs/GSH/FA;用5 g/L BSA封堵空余的活性位點(diǎn)(圖2)。每步處理后均用去離子水清洗,氮?dú)獯蹈伞*?/p>
2.3 HeLa細(xì)胞的培養(yǎng)
取HeLa細(xì)胞置于含有10%胎牛血清、青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U/mL和100 mg/L的RPMI 1640培養(yǎng)液中,在37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng),隔天更換培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基。取對數(shù)生長期細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn),使用前加入胰蛋白酶消化液,消化后用PBS(pH 7.4)溶液反復(fù)清洗3次,然后用PBS溶液配制成一定濃度。實(shí)驗(yàn)前用細(xì)胞計(jì)數(shù)板確定細(xì)胞的濃度。
2.4 HeLa細(xì)胞的特異性識別以及電化學(xué)檢測
取10
SymbolmA@ L一定濃度的細(xì)胞懸浮液浸潤PANI-NF/AuNPs/GSH/FA-BSA傳感界面,37 ℃條件下孵育2 h,再將所得傳感界面浸入PBS(pH 7.4)溶液2 min,除去傳感界面上沒有特異性識別的細(xì)胞。采用循環(huán)伏安法和電化學(xué)阻抗技術(shù)研究傳感界面對HeLa細(xì)胞的捕獲和特異性識別情況。
2.5 AFM研究電極界面的修飾過程
以洗凈的玻片為基底,按照2.2節(jié)的方法模擬電極修飾過程。在空氣中用AFM研究電極修飾過程界面形貌的變化情況以及修飾界面對HeLa細(xì)胞的識別情況。選用UL20B硅探針(硅探針的曲率半徑小于10 nm),接觸模式下對樣品掃描成像。細(xì)胞用4%多聚甲醛處理20 min,再用PBS和去離子水清洗,4 ℃干燥待測。所得數(shù)據(jù)用IP2.1軟件處理。3 結(jié)果和討論
3.1 PANI-NF/AuNPs復(fù)合物膜的TEM表征
用TEM觀察制備的PANI-NF的形貌。由圖3a可見,PANI-NF呈均一的纖維狀結(jié)構(gòu),其直徑在50~70 nm范圍,分散性良好。由圖3b可見,合成的AuNPs呈球狀且大小均一,其直徑約為15 nm。PANI-NF浸泡在AuNPs溶液2 h后,AuNPs大量吸附在PANI-NF表面(圖3c和圖3d)。這是由于在酸性介質(zhì)條件下,合成的PANI-NF帶有正電荷,用檸檬酸還原法合成的AuNPs帶有負(fù)電荷,AuNPs通過靜電作用吸附在PANI-NF表面。AuNPs的吸附一方面有利于增加傳感界面的表面積,促進(jìn)電子在溶液和電極間的傳遞;另一方面,AuNPs的引入有利于進(jìn)一步在界面上修飾特定生物分子。
圖3 PANI-NF(a),AuNPs(b)和PANI-NF/AuNPs(c, d)的TEM圖
Fig.3 TEM characterization of PANI-NF(a), AuNPs(b) and PANI-NF/AuNPs(c, d)
3.2 PANI-NF/AuNPs復(fù)合物膜界面的電化學(xué)性質(zhì)
以3-/4-為探針,對納米復(fù)合膜的電化學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究。如圖4所示,PANI-NF和AuNPs引入到電極界面后,峰電流增加,峰電位差減少,這說明納米材料對氧化還原探針有明顯的電催化作用。
比較了納米材料修飾前后電位掃描速度對峰電流的影響。在納米復(fù)合膜界面上,氧化還原探針的峰電流與掃描速率的平方根成正比,說明此時(shí)電極表面反應(yīng)動力學(xué)過程是受參與反應(yīng)離子的擴(kuò)散控制。對于可逆過程,由Randles-Sevcik公式 計(jì)算得電極有效面積A:
ipc=(2.69×105)n3/2AD1/2υ1/2C0(1)
由n=1,D=6.5×106 cm2/s,計(jì)算GCE、GCE/PANI-NF和GCE/PANI-NF/AuNPs的電極有效面積分別為0.15, 0.24和0.27 cm2; 修飾電極的表面積約是GCE的2倍,說明納米材料增大了電極界面的有效面積。
3.3 PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜界面葉酸功能化過程的電化學(xué)表征
采用循環(huán)伏安法(CV)對復(fù)合膜界面葉酸功能化過程進(jìn)行表征(圖5)。在PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜界面, GSH與納米金通過AuS鍵結(jié)合,由于GSH為非電活性物質(zhì),降低了界面的導(dǎo)電能力,峰電流明顯下降;其次,在生物偶聯(lián)劑EDC和NHS作用下,GSH的NH2與葉酸的COOH形成酰胺鍵,界面的導(dǎo)電能力和峰電流進(jìn)一步下降;為減少細(xì)胞在界面上的非特異性吸附,用BSA封堵傳感界面上未修飾的空余位點(diǎn),BSA同樣為非電活性物質(zhì),峰電流繼續(xù)下降。將葉酸功能化傳感界面用于特異性識別HeLa細(xì)胞,可觀察到峰電流明顯下降,表明HeLa細(xì)胞被成功捕獲到傳感器復(fù)合膜界面。
采用電化學(xué)阻抗技術(shù)考察復(fù)合膜界面葉酸功能化過程阻抗的變化情況。如圖6所示,當(dāng)電極形成PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜后,氧化還原探針Fe(CN)63-/4- 在溶液/電極界面上的電荷轉(zhuǎn)移電阻Rct明顯減少,這同樣是由于納米材料的引入引起界面性質(zhì)的變化。當(dāng)GSH和FA偶聯(lián)到界面后,界面Rct顯著增大,電化學(xué)阻抗值增大;BSA封堵未修飾傳感界面上空余位點(diǎn)后,阻抗值進(jìn)一步增大。將葉酸功能化復(fù)合膜界面用于特異性識別HeLa細(xì)胞,阻抗值增大,表明細(xì)胞被成功捕獲到傳感界面,EIS結(jié)果與循環(huán)伏安法所得結(jié)果一致。
以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,電化學(xué)阻抗技術(shù)和循環(huán)伏安法均能監(jiān)測到傳感器對HeLa細(xì)胞的特異性識別。比較兩種方法,對HeLa細(xì)胞特異性識別后,循環(huán)伏安氧化還原峰形變差,峰電流值靈敏度下降;而電化學(xué)阻抗變化值明顯。同時(shí)電化學(xué)阻抗測量過程中沒有電流通過界面,對界面的生物分子和細(xì)胞無損傷作用。因此,本實(shí)驗(yàn)采用電化學(xué)阻抗技術(shù)對細(xì)胞的特異性識別和檢測進(jìn)行研究。
3.4 細(xì)胞傳感器復(fù)合膜界面AFM的表征
傳感界面的層層修飾和分子組裝可通過AFM探測進(jìn)行可視化表征。在PANI-NF-NF/AuNPs復(fù)合膜界面修飾上GSH與FA后,界面粗糙度略有降低;平均高度明顯增大(圖7a~7c)。將葉酸功能化復(fù)合膜界面用于特異性識別HeLa細(xì)胞,AFM觀察結(jié)果表明,細(xì)胞被成功捕獲到傳感界面(圖7d)。
3.5 葉酸功能化界面構(gòu)建過程的實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化及其對HeLa細(xì)胞的識別
3.5.1 PANI-NF膜厚度的優(yōu)化 PANI-NF膜的厚度決定AuNPs的吸附量,進(jìn)而影響FA的修飾量。本實(shí)驗(yàn)改變PANI-NF滴涂濃度,從而改變PANI-NF膜的厚度。實(shí)驗(yàn)表明,低濃度PANI-NF能夠促進(jìn)電子在溶液的電極間的傳遞,高濃度阻礙電子的傳遞。為了能吸附更多的AuNPs,同時(shí)得到最優(yōu)的阻抗信號;綜合考慮,取10
SymbolmA@ L 0.2 g/L PANI-NF滴涂在電極表面。室溫干燥后再浸入新制AuNPs溶液(10-12mol/L)2 h,即得PANI-NF/AuNPs納米復(fù)合膜界面。
3.5.2 PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜修飾GSH時(shí)間的優(yōu)化 考察PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜修飾GSH時(shí)間對阻抗信號的影響。結(jié)果表明,反應(yīng)3 h后, 阻抗值變化趨于平穩(wěn)。本研究中修飾GSH的時(shí)間選擇為3 h。
3.5.3 FA偶聯(lián)時(shí)間的優(yōu)化 在生物偶聯(lián)劑EDC和NHS作用下,GSH的-NH2與葉酸的-COOH發(fā)生偶聯(lián)反應(yīng),當(dāng)反應(yīng)2 h后,阻抗值變化趨于平穩(wěn)。本研究GSH與FA的偶聯(lián)反應(yīng)時(shí)間選擇2 h。
3.5.4 HeLa細(xì)胞特異性識別的作用時(shí)間 PANI-NF/AuNPs復(fù)合膜界面修飾的FA與HeLa細(xì)胞表面大量表達(dá)的FR之間能夠特異性的結(jié)合,從而達(dá)到識別檢測癌細(xì)胞的目的。當(dāng)HeLa細(xì)胞的濃度為5.0×104 cells/mL,隨著傳感界面與HeLa細(xì)胞孵育時(shí)間的增加,阻抗值增加,2 h后,阻抗值趨于穩(wěn)定,說明傳感界面對HeLa細(xì)胞的識別捕獲達(dá)到飽和。本研究選擇2 h作為HeLa細(xì)胞特異性識別的時(shí)間。
3.6 葉酸功能化傳感界面對癌細(xì)胞識別的特異性
為了考察葉酸功能化傳感界面對癌細(xì)胞識別的特異性,比較了人淋巴細(xì)胞、血紅細(xì)胞和HeLa細(xì)胞在傳感界面識別后阻抗的變化情況。當(dāng)傳感界面與人淋巴細(xì)胞、血紅細(xì)胞孵育后,界面阻抗未發(fā)生明顯的變化,說明界面未能捕獲到細(xì)胞;而傳感界面與HeLa細(xì)胞孵育后,阻抗明顯增加,表明所構(gòu)建的葉酸功能化傳感界面對HeLa細(xì)胞具有良好的特異性識別及捕獲能力。
3.7 葉酸功能化傳感界面對HeLa細(xì)胞濃度的檢測
在優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件下,將所構(gòu)建的傳感器對不同濃度HeLa細(xì)胞進(jìn)行檢測。如圖8所示,隨著HeLa細(xì)胞濃度的增加,阻抗值線性增大。以葉酸功能化傳感界面的阻抗值為Rct(0),以測得對應(yīng)濃度HeLa細(xì)胞識別后的阻抗值為Rct(c),以阻抗的變化值ΔRct(ΔRct=Rct(c)-Rct(0))對細(xì)胞濃度的對數(shù)值logCcell作圖,細(xì)胞在1.0×104~6.4×106 cells/mL濃度范圍內(nèi)與ΔRct呈良好的線性關(guān)系,線性方程為ΔRct=-2.4174×105+6.2895×103logCcell,R=0.9905;檢出限可達(dá)2000 cells/mL(圖8內(nèi)插圖)。
用倒置顯微鏡觀察修飾界面對不同濃度癌細(xì)胞的識別情況,隨著癌細(xì)胞濃度的增加,界面上捕獲的癌細(xì)胞的數(shù)目也隨之增多。同時(shí),這也說明阻抗的增加是由于界面上識別了更多的癌細(xì)胞引起的。
本研究構(gòu)建的傳感界面能特異性識別表面葉酸受體超量表達(dá)的細(xì)胞;且與文獻(xiàn)報(bào)道的電化學(xué)細(xì)胞傳感器相比,具有較高的靈敏度(表1)。
3.8 傳感器的重現(xiàn)性、穩(wěn)定性和再生
利用構(gòu)建的傳感器連續(xù)10次測定2000 cells/mLHeLa細(xì)胞識別后的電化學(xué)阻抗譜,ΔRct的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.9%,說明所構(gòu)建的傳感器具有良好的重現(xiàn)性。將構(gòu)建的傳感器放置4 ℃冰箱保存?zhèn)溆茫? 星期后傳感器Rct未發(fā)生明顯變化,
說明所構(gòu)建的傳感器具有良好的穩(wěn)定性。用0.1 mol/L檸檬酸-氨基乙酸-鹽酸(pH 3.0)溶液洗脫傳感界面上已捕獲的細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)表明,細(xì)胞被洗脫后,與原修飾傳感界面相比,阻抗未發(fā)生明顯變化,說明所構(gòu)建的傳感器經(jīng)處理后可以再生利用,且效果良好。
References
1 Du D, Liu S L, Chen J, Ju H X, Lian H Z, Li J X. Biomaterials, 2005, 26(33): 6487~6495
2 Du D, Cai J, Ju H X, Yan F, Chen J, Jiang X Q, Chen H Y. Langmuir, 2005, 21(18): 8394~8399
3 Yan F, Chen J, Ju H X. Electrochemistry Communications, 2007, 9(2): 293~298
4 Cheng W, Ding L, Lei JP, Ding S J, Ju H X. Anal. Chem., 2008, 80(10): 3867~3872
5 Chen H, Ding L, Zhang X J, Ju H X. Anal. Chem., 2007, 79(12): 4442~4447
6 ZHOU Y M, Zhang X B, Tan W H. Sci. China Chem., 2011, 54(8): 1218~1226
7 Shen Q, You S K, Park S G, Jiang H, Guo D D, Chen B A, Wang X M. Electroanalysis, 2008, 20(23): 2526~2530
8 Jia X E, Tan L, Zhou Y P, Jiang X F, Xie Q J, Tang H, Yao S Z. Electrochemistry Communications, 2009, 11(1): 141~144
9 Zhong X, Bai H J, Xu J J, Chen HY , Zhu Y H. Adv. Funct. Mater., 2010, 20(6): 992~999
10 Weng J, Zhang Z, Sun L, Wang J A. Biosensors and Bioelectronics, 2011, 26(5): 1847~1852
11 Zhang J J, Cheng F F, Zheng T T, Zhu J J. Anal. Chem., 2010, 82(9): 3547~3555
12 Ding L, Du D, Wu J, Ju H X. Electrochemistry Communications, 2007, 9(5): 953~958
13 HAN Xin-Ai, ZENG Hui-Lan, GU Chen, JIANG Jian-Wei, ZHONG Qi, ZHU Hai-Yang. Journal of Jinan University(Medicine Edition), 2009, 30(6): 658~663
韓新愛, 曾慧蘭, 古 晨, 蔣建偉, 鐘 啟, 朱海揚(yáng). 暨南大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2009, 30(6): 658~663
14 Elnakat H, Ratnam M. Advanced Drug Delivery Reviews, 2004, 56(1): 1067~1084
15 Huang J X, Kaner R B. Angew. Chem. Int. Ed., 2004, 43(43): 5817~5821
16 Cai H H, Yang P H, Feng J, Cai J Y. Sensors and Actuators B, 2009, 135(2): 603~609
17 Ye J S, Wen Y, Zhang W D, Gan L M, Xu G Q, Sheu F S. Electrochemistry Communications, 2004, 6(1): 66~70
18 Bard A J, Faulkner L R. Electrochemical Methods: Fundamentals and Applications. 2nd ed. New York: John Wiley Sons Inc., 2001: 209
19 Ruan C M, Yang L J, Li Y B. Anal. Chem., 2002, 74(18): 4814~4820
20 Ding L, Chen H, Xue Y D, Ju H X. Biomacromolecules, 2007, 8(4): 1341~1346
21 Chen H, Yan F, Ding L, Xue Y D, Ju H X. Electrochemistry Communications, 2007, 9(6): 1359~1364
Construction of Electrochemical Cytosensor Based on
Polyaniline Nanofiber/Gold Nanoparticle Interface
and Its Application to Detection of Cancer Cell
WANG Hui1, WANG Tian2, YE Yan-Xia3, ZHANG Ya-Xing3,
YANG Pei-Hui*1,4, CAI Huai-Hong1, CAI Ji-Ye1,4
(1Department of Chemistry, 2School of Pharmacy, 3Institute of Tissue Transplantation and Immunology,
4Key Laboratory of Optoelectronic Information and Sensing Technologies of Guangdong Higher
Education Institutes, Ji′nan University, Guangzhou 510632)
Abstract Polyaniline nanofiber(PANI-NF) was synthesized with diameters about 60-80 nm. The polyaniline nanofiber/gold nanoparticle(PANI-NF/AuNPs) nanocomposite was then fabricated with a simple electrostatic reaction between the presence of positive charges on the surface of PANI-NF and the negatively charged of AuNPs. Therefore, a novel electrochemical cytosensor was designed by self-assemble folic acid on PANI-NF/AuNPs nanocomposite film interface. An electrochemical impedance method was used to detect folate receptor on cancer cells with the specific interaction between folate immobilized on PANI-NF/AuNPs surface and its receptor which was over-expressed on cancer cell membrane. Experimental results showed that PANI-NF/AuNPs cytosensor specifically recognized cancer cells, such as Hela cells, which were resulted from the change of conduct field of electrode after cancer cells attachment. A linearity from 1.0×104 to 6.4×106 cells/mL at a concentration down to 2000 cells/mL was obtained. This cytosensor has some advantages of easy construction, quick detection, high sensitivity, easy recurrence, well stability and free additional labeling, and can be introduced for highly sensitive cell-based sensing.
Keywords Cytosensor; Polyaniline nanofibers; Gold nanoparticles; Cancer cell(Received 21 May 2011; accepted 7 July 2011)