摘 要 采用離子交換固相萃取超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測(cè)定了動(dòng)物組織中的8類14種非甾體抗炎藥(Nonsteroidal antiinflammatory drugs,NSAIDs)殘留。動(dòng)物組織樣品經(jīng)乙腈乙酸乙酯(1∶1,V/V)提取、乙腈飽和正己烷除脂、Oasis MCX陽(yáng)離子交換固相萃取柱除雜后,用液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀電噴霧電離,多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式檢測(cè)。本方法的檢出限為3.0~10.0
SymbolmA@ g/kg; 定量限為10.0~25.0
SymbolmA@ g/kg; 添加濃度在10.0~1000.0
SymbolmA@ g/kg范圍內(nèi),牛肉組織中的回收率為62.9%~108.4%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于10%;豬肉組織中的回收率為63.4%~117.0%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于9%。
關(guān)鍵詞 非甾體抗炎藥; 離子交換固相萃取; 超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜; 多殘留; 動(dòng)物組織
1 引 言
非甾體抗炎藥(Nonsteroidal antiinflammatory drugs,NSAIDs)是一類不含甾體結(jié)構(gòu)的化學(xué)藥物,其作用機(jī)制主要是通過(guò)與環(huán)氧化酶結(jié)合,阻斷花生四烯酸轉(zhuǎn)化為前列腺素,從而發(fā)揮鎮(zhèn)痛、消炎和解熱作用,主要用于哺乳動(dòng)物乳腺炎、關(guān)節(jié)炎及運(yùn)動(dòng)性損傷的治療。因療效顯著,成為繼抗生素后全球用量最大的獸藥。
近年來(lái),有關(guān)NSAIDs不良反應(yīng)的報(bào)道逐漸增多,主要是引起腸胃道損傷等,其殘留問(wèn)題也逐漸引起重視,部分NSAIDs的最大允許殘留限量已被制訂,并已開發(fā)配套的檢測(cè)方法。目前,報(bào)道的檢測(cè)方法有高效液相色譜法、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法、氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法、毛細(xì)管電泳法、薄層色譜法和分光光度法等。其中,液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法因其高靈敏度和高選擇性,成為NSAIDs殘留分析中最常用的手段之一。Jedziniak等建立了動(dòng)物組織中10種NSAIDs的檢測(cè)方法。彭濤等建立了豬肝中18種NSAIDs的殘留分析方法。后者雖然分析藥物數(shù)量較多,但缺少吡唑酮類、非酸類以及環(huán)氧化酶2抑制劑的昔布類,對(duì)于NSAIDs的多殘留分析,方法擴(kuò)展性不足。
本實(shí)驗(yàn)在前期研究的基礎(chǔ)上,擴(kuò)增了分析物和動(dòng)物源性食品種類,以化學(xué)結(jié)構(gòu)為分類依據(jù),選取代表NSAIDs的全部8類的14種藥物。深入探討前處理步驟,優(yōu)化提取劑,選用陽(yáng)離子交換固相萃取柱除雜,有效降低了基質(zhì)效應(yīng),結(jié)合超高效液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀,建立了牛肉和豬肉組織中NSAIDs多殘留同時(shí)分析方法。本方法簡(jiǎn)便、可靠,靈敏度滿足國(guó)際上對(duì)動(dòng)物源食品中NSAIDs殘留限量的要求,適用于多種動(dòng)物源食品基質(zhì),分析目標(biāo)物還具有擴(kuò)展性。2 實(shí)驗(yàn)部分
2.1 儀器與試劑
AcquityTM UPLC超高效液相色譜儀,TQ detector三重四極桿質(zhì)譜儀,Masslynx 4.1 數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)(美國(guó)Waters公司);AcquityTM UPLC BEH C18 (50 mm ×2.1 mm i d,1.7
SymbolmA@ m)色譜柱,OasisMCX(6 mL,150 mg)固相萃取柱(美國(guó)Waters公司)。
標(biāo)準(zhǔn)品:雙水楊酯(Sasapyrin, SAS),尼美舒利(Nimesulide,NIM),卡洛芬(Carprofen,CPF),氟芬那酸(Flufenamic acid,F(xiàn)LA),非那西丁(Phenacetin,PNT),芐達(dá)明(Benzydamine,BEN),吡羅昔康(Piroxicam,PIR),雙氯酚酸(Diclofenac,DC),布洛芬(Ibuprofen,IPF),苯基丁氮酮(Phenylbutazone,PBZ),塞來(lái)昔布(Celebrex,CEL),甲氯芬那酸(Meclofenamic acid,MEC),氟比洛芬(Flurbiprofen,F(xiàn)PF),維達(dá)洛芬(Vedaprofen,VPF),純度≥99%,均購(gòu)自德國(guó)Dr. Ehrenstorfer GmbH公司;乙腈、乙酸乙酯、甲醇、甲酸、乙酸銨(HPLC級(jí),美國(guó)Fisher公司);氨水、H3PO4、無(wú)水Na2SO4(分析純,北京北化精細(xì)化學(xué)品有限公司);其它試劑均為優(yōu)級(jí)純。
2.2 實(shí)驗(yàn)條件
2.2.1 液相色譜條件 柱溫:30 ℃;流速:0.2 mL/min;進(jìn)樣量:10
SymbolmA@ L;流動(dòng)相:乙腈和0.1%甲酸溶液(含0.5 mmol/L醋酸銨);梯度洗脫:0 min,50%乙腈;2 min,70%乙腈;3 min,80%乙腈;4 min,90%乙腈; 5 min, 50%乙腈。
2.2.2 質(zhì)譜條件 電噴霧離子源,正、負(fù)離子掃描(ESI+, ESI-);毛細(xì)管電壓:ESI+為3.0 kV,ESI-為2.5 kV;源溫度:120 ℃;去溶劑溫度:350 ℃;錐孔氣流:氮?dú)猓?00 L/h;去溶劑氣流:氮?dú)猓?00 L/h;碰撞氣壓:氬氣,2.40×10-6 Pa;監(jiān)測(cè)模式:多反應(yīng)監(jiān)測(cè),監(jiān)測(cè)條件見表1。
動(dòng)物組織中的8類非甾體抗炎藥殘留
2.3 實(shí)驗(yàn)方法
2.3.1 提取 稱取約5.0 g試樣(精確至0.1 mg)于50 mL離心管中,加入2 g無(wú)水Na2SO4,再加入20 mL乙腈乙酸乙酯(1∶1,V/V),渦旋30 s,振蕩20 min,超聲10 min后,過(guò)濾,收集濾液于100 mL雞心瓶中,殘?jiān)?0 mL乙腈乙酸乙酯(1∶1,V/V)重復(fù)提取一次。合并濾液,于40 ℃水浴減壓旋蒸濃縮至近干。殘留物用2 mL乙腈超聲助溶后,用0.02 mol/L H3PO4定容至10 mL,加入10 mL乙腈飽和正己烷振蕩10 min,靜置15 min,取下層溶液待凈化。
2.3.2 凈化
Oasis MCX固相萃取柱依次用10 mL甲醇、水、0.02 mol/L H3PO4平衡后,再轉(zhuǎn)入上述提取液,在重力作用下,保持其流速約為1 mL/min,待提取液完全通過(guò)后,用5 mL正己烷乙酸乙酯(9∶1,V/V)淋洗,自然流干后,用3 mL 甲醇和3 mL 氨水甲醇(5∶95,V/V)洗脫,收集洗脫液,于40 ℃中氮吹至近干,加0.5 mL乙腈超聲助溶后,用0.1%甲酸(含0.5 mmol/L醋酸銨)定容至1 mL,混勻后過(guò)0.2
SymbolmA@ m尼龍濾膜,待檢測(cè)。
2.3.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線
用初始比例流動(dòng)相稀釋混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,配制濃度分別為10.0, 20.0, 25.0, 50.0, 100, 125, 200, 400, 500和1000
SymbolmA@ g/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液,在2.2節(jié)儀器條件下測(cè)定,平行測(cè)定3次。以定量子離子峰面積為縱坐標(biāo)(Y),濃度為橫坐標(biāo)(x),進(jìn)行回歸分析,得標(biāo)準(zhǔn)曲線、回歸方程、線性范圍、相關(guān)系數(shù)。
3 結(jié)果與討論
3.1 提取方法的優(yōu)化
本研究涉及的14種分析目標(biāo)物涵蓋了全部8類NSAIDs:水楊酸類(SAS)、吡唑酮類(PNT)、芳基烷酸苯乙酸類(DC)、芳基烷酸吲哚乙酸類(BEN)、芳基烷酸丙酸類(CPF, VPF, IPF, FPF)、甲酸類(FLA, MEC)、乙酰苯胺類(PBZ)、昔布類(CEL)、昔康類(PIR)和其它類(NIM)。除IPF和PNT外,分子結(jié)構(gòu)中都有兩個(gè)苯環(huán)或雜環(huán)(結(jié)構(gòu)見圖1),非極性較大,且pKa值普遍大于文獻(xiàn)的藥物,在酸化乙腈(乙腈 H3PO4,80∶1,V/V,pH 4.5)中以離子態(tài)居多,不易溶于有機(jī)試劑,與文獻(xiàn)報(bào)道的IPF, CPF等在酸化乙腈中的提取率低于乙腈的結(jié)論一致,故本研究選用中等極性有機(jī)試劑為提取劑,分別對(duì)乙腈(ACN)、乙酸乙酯(EtAc)、乙腈丙酮(ACNPT,1∶1,V/V)和乙腈乙酸乙酯(ACNEtAC,1∶1,V/V)進(jìn)行比較。在同等條件下,ACNEtAC(1∶1,V/V)的提取率顯著高于其它溶液(結(jié)果見圖2),且該提取溶液具有一定的脫脂和沉淀蛋白的作用。
3.2 固相萃取柱的選擇
采用液液分配法除脂后,結(jié)合固相萃取能更好地除雜。根據(jù)前期研究,Si柱和HLB柱對(duì)NSAIDs都有很好的凈化和吸附能力,但基質(zhì)效應(yīng)明顯。有研究報(bào)道,pKa值在2~10的化合物,可選用離子交換柱。因此,本研究對(duì)Oasis MCX和Oasis MAX的使用效果進(jìn)行了比較。結(jié)果發(fā)現(xiàn):DC, FLA和MEC結(jié)構(gòu)中含有二苯氨基(pKa 0.85),在MAX中保留很強(qiáng),難于洗脫;BEN溶液呈弱堿性,在MAX上很難保留;大部分NSAIDs都含有N, Cl, S等電負(fù)性原子,易于得到質(zhì)子,從而在MCX上保留。進(jìn)一步優(yōu)化MCX的洗脫條件發(fā)現(xiàn),氨化甲醇對(duì)FLA和CEL的洗脫能力明顯優(yōu)于氨化乙腈。可能是藥物結(jié)構(gòu)中的F原子與MCX骨架上的N乙烯吡咯烷酮結(jié)構(gòu)形成氫鍵,乙腈是非質(zhì)子溶劑,雖極性大于甲醇,但破壞氫鍵的能力卻不如甲醇。通過(guò)優(yōu)化洗脫溶液的組成和體積,確定依次用3 mL甲醇和3 mL甲醇氨水(95∶5, V/V),能最大程度洗脫NSAIDs。實(shí)驗(yàn)表明,MCX在去除引起離子抑制效應(yīng)的主要物質(zhì)——磷脂方面較Si和HLB柱優(yōu)勢(shì)明顯,凈化效果滿足LCMS/MS測(cè)定要求。添加樣品的質(zhì)量色譜圖見圖3,在藥物出峰位置處沒有干擾。
3.3 檢測(cè)條件的優(yōu)化
根據(jù)前期研究,甲酸可提高藥物在ESI+模式下的電離效率,促使+生成;乙酸銨能改變流動(dòng)相的pH值,促進(jìn)酸性化合物在ESI模式中形成較強(qiáng)的分子離子,并有效減少+生成。本研究以乙腈0.1%甲酸溶液(含0.5 mmol/L醋酸銨)為流動(dòng)相,優(yōu)化洗脫梯度,將分析時(shí)間由15 min縮短至5 min。采用流動(dòng)注射方式,考察藥物的MRM的響應(yīng)。大部分NSAIDs形成+或-分子離子,并在二級(jí)質(zhì)譜中,產(chǎn)生兩個(gè)較為穩(wěn)定的子離子。而芳基烷酸丙酸類NSAIDs比較特殊:FPF的+準(zhǔn)分子離子峰的響應(yīng)明顯強(qiáng)于+;CPF由于氯同位素的存在而產(chǎn)生兩個(gè)響應(yīng)較強(qiáng)的+準(zhǔn)分子離子峰,IPF的+和+準(zhǔn)分子離子峰響應(yīng)都很高,但兩種藥物在二級(jí)質(zhì)譜中,都只有去除羧基后形成的子離子能穩(wěn)定存在。3種藥物的一級(jí)、二級(jí)質(zhì)譜圖見圖4。
進(jìn)一步優(yōu)化毛細(xì)管電壓、錐孔電壓、碰撞能量等質(zhì)譜參數(shù),使各NSAIDs的響應(yīng)最大化。在質(zhì)譜掃描速度一定的情況下,將MRM分為3個(gè)掃描時(shí)間段,以確保每個(gè)色譜峰的掃描點(diǎn)數(shù)。
3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限、定量限、準(zhǔn)確度和精密度
本研究采用外標(biāo)法定量,通過(guò)向陰性樣品中添加NSAIDs來(lái)考察方法的檢出限(S/N=3)、定量限、(S/N=10)準(zhǔn)確度和精密度。在線性范圍內(nèi),選擇定量限的20倍、5倍和1倍3個(gè)濃度進(jìn)行添加回收實(shí)驗(yàn),方法回收率在62.9%~117.0%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差小于9.3%。各藥物的曲線回歸方程、線性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限、定量限和回收率見表1和表2。
3.5 小結(jié)
本研究采用陽(yáng)離子交換固相萃取,結(jié)合UPLCMS/MS技術(shù)建立了動(dòng)物組織中8類14種 NSAIDs多殘留同時(shí)分析方法。本方法簡(jiǎn)便、可靠,靈敏度滿足國(guó)際上對(duì)動(dòng)物源食品中NSAIDs殘留限量的要求,適用于多種動(dòng)物源食品基質(zhì)的檢測(cè)。
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