羅 程 鄭寶石何 巍 馮 旭 雷賓峰 彭 俊
(廣西醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院心胸外科,南寧市 530021)
同種帶瓣動脈具有抗血栓、抗感染及良好的血流動力學,廣泛應用于治療先天性心臟病及瓣膜病,但移植后鈣化衰敗成為影響其療效的主要問題[1]。臨床上經(jīng)常會遇到年輕患者同種瓣膜植入后發(fā)生早期的衰敗[1,2],這種結(jié)構(gòu)性衰敗可能是相關(guān)的免疫基礎(chǔ)。我們采用白兔同種帶瓣動脈頸動脈異位移植模型,對移植后不同時間段的免疫指標和鈣含量進行檢測,以探討環(huán)孢素預處理后同種瓣移植免疫排斥與鈣含量的改變及其意義。
1.1 實驗動物模型的建立 實驗動物采用4周齡的白兔50只作為供體,體重0.30~0.35 kg。將8周的白兔50只,體重3.00~3.50 kg,隨機分成2組作為受體,25只接受環(huán)孢素預處理Hank's液+抗生素+CsA 30 mg/L保存為實驗組,另外25只Hank's液+抗生素保存為對照組。
1.2 方法
1.2.1 試劑配制
1.2.1.1 環(huán)孢素配置液 環(huán)保素注射液(山地明) 5 ml/250 mg,用0.9%生理鹽水稀釋濃度為1 mg/mL。
1.2.1.2 工作液配制 1號工作液:參考王榮平等[3]的低濃度抗生素液配方,改良型Hank's液250 mL,分別加入先鋒霉素V(50 mg/L)、慶大霉素(5 000 U/L)、大蒜素(50.0 mg/L),NaOH滴定至pH值在7.2~7.4之間。2號工作液:改良型RPMI-1640培養(yǎng)基,10%小牛血清,10%體積分數(shù)二甲基亞砜8∶1∶1[4]。0.22 μm濾膜分別正壓過濾除菌,4℃冰箱保存。
1.2.2 血管處理 肌注麻醉后,常規(guī)消毒,直接開胸,于主動脈弓部分支前剪斷[5],篩選瓣葉和血管壁內(nèi)膜光滑、無粥樣硬化斑和鈣化斑,瓣葉功能良好者為合格[6]。沖洗血管后置入1號工作液,4℃冰箱滅菌24 h。改良型Hank's液滅菌處理后隨機分為對照組、實驗組。加2號工作液為對照組,加2號工作液的同時另加入環(huán)孢素配置液為實驗組。經(jīng)-20℃冰箱保存12 h后置入-196℃液氮罐保存。
1.2.3 移植血管 麻醉成功后,仰臥位固定,頸部去毛。行頸部正中縱行切口(2~3 cm)游離兩側(cè)頸動脈,將一側(cè)頸動脈兩端上動脈夾,間隔1~1.5 cm。剪斷后立即向兩斷端滴注肝素鈉6 250 U加生理鹽水500 mL配置液[7]。8/0尼龍線將移植血管先吻合近心端后吻合遠心端,打開動脈夾排氣。縫合頸部切口。術(shù)后予腸溶阿斯匹林(25 mg)1片,1次/d,口服抗生素。
1.2.4 CD25檢測 移植后2、4、8周采腔靜脈血,流式細胞儀檢測CD25的表達。
1.2.5 CD40檢測 取移植標本后制作免疫組織化切片。隨機每例選取10個不重疊而完整的視野進行分析,檢測CD40顆粒反應陽性的平均吸光度,該例的測量值為每張切片的均值。
1.2.6 檢測移植物的鈣含量 分別剪取適量血管壁和瓣葉組織樣本,去離子水充分漂洗,烘干(80℃,至少24 h)稱重,原子吸收光譜法測定組織鈣含量(以每毫克組織干重計)。
1.3 統(tǒng)計學方法 實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 13.0統(tǒng)計學軟件處理,以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
2.1 CD25、CD40的表達情況 移植術(shù)后CD25、CD40的表達隨著時間的不同而變化,(%,±s)。實驗組CD25、CD40的表達低于對照組(P<0.05),差異有統(tǒng)計學意義。見表1。
表1 移植術(shù)后不同時間CD25和CD40的表達 (μg/g,±s)

表1 移植術(shù)后不同時間CD25和CD40的表達 (μg/g,±s)
組別 2周 4周 8周CD40 0.498±0.026 0.417±0.035 0.267±0.025 CD25 8.08±1.86 7.85±1.21 7.10±1.19對照組CD25 13.43±2.06 10.79±1.28 7.22±1.13實驗組CD40 0.264±0.055 0.314±0.044 0.284±0.026對照組實驗組
2.2 移植血管鈣含量變化 移植血管鈣含量的檢測表明,實驗組4、8、12周3個不同時間點的鈣含量明顯低于對照組(P<0.05),差異有統(tǒng)計學意義。見表2。
表2 移植術(shù)后不同時間移植物的鈣含量 (μg/g,±s)

表2 移植術(shù)后不同時間移植物的鈣含量 (μg/g,±s)
組別 2周 4周 8周實驗組 866.507±72.436 2 236.963±183.656 3 044.221±204.506對照組 862.788±172.213 3 000.806±103.083 3 790.652±242.572
自1966年Ross等[8]首次應用帶瓣血管治療肺動脈閉鎖患者獲得成功后,深低溫保存、程控降溫、滅菌等技術(shù)推動了同種帶瓣血管(Valve Homograft Conduit,VHC)在心臟外科手術(shù)中的應用。復雜的心臟畸形矯正手術(shù)經(jīng)常需要同種組織或自體組織,但在臨床上經(jīng)常會遇到帶瓣血管退化的情況,年輕患者經(jīng)常可見到同種瓣膜、血管植入后的早期衰敗,這種衰敗可能有自身的免疫反應基礎(chǔ)。免疫反應造成血管內(nèi)膜增生、中膜壞死、外膜浸潤,使血管出現(xiàn)血栓而最終失去功能[9]。目前眾多研究資料顯示,移植帶瓣血管后使用免疫抑制劑有抗鈣化的作用,抗鈣化的機理在于抑制移植后的免疫排斥反應,可減輕平滑肌細胞和內(nèi)皮細胞受到的免疫攻擊,從而保護平滑肌細胞和內(nèi)皮細胞。Bandlien KO等[2]發(fā)現(xiàn)用環(huán)孢素預處理同種組織然后移植到狗的同種靜脈,電鏡掃描發(fā)現(xiàn)退行性變減輕。對移植同種靜脈的狗應用環(huán)孢素治療觀察后發(fā)現(xiàn)其移植血管存活率高[6]。從心臟瓣膜移植的患者(不使用免疫抑制劑治療),Schoen等[10]發(fā)現(xiàn)瓣膜移植組細胞結(jié)構(gòu)顯著減少,并且有同種瓣膜上游T細胞存在。周江橋等[11]用含CSA(30 mg/L)液原位灌洗腎,提示CSA預處理對腎臟缺血-再灌注損傷有保護作用。
CD25是IL2的受體,是T細胞早期活化增殖的主要標志[14,15]。CD40表達于抗原遞呈細胞和B細胞表面,調(diào)節(jié)細胞免疫和體液免疫,在移植免疫排斥反應中起重要作用[16]。分析移植血管鈣含量的趨勢和CD25、CD40的變化趨勢發(fā)現(xiàn),移植后鈣化并沒有立即開始,其鈣化是在4周才開始的,并隨著時間的推移逐漸升高。
究其原因這是因為血管的內(nèi)皮細胞免疫原性最強,內(nèi)皮細胞保護平滑肌細胞,防止變性和鈣化[12]。移植后血管管壁是免疫排斥反應發(fā)生的主要地點,最早壞死脫落的是內(nèi)皮細胞[13]。移植后早期受體血液循環(huán)中沖擊移植血管內(nèi)皮細胞,CD25和CD40表達,致免疫排斥反應在移植早期發(fā)生。與此同時,內(nèi)彈力膜完整,平滑肌細胞未受到破壞,沒有發(fā)生鈣化。移植后4周內(nèi)皮細胞脫落,平滑肌細胞發(fā)生免疫排斥反應,出現(xiàn)壞死和鈣化。所以鈣含量在移植后4周升高。
綜上所述,移植后使用環(huán)孢素抑制了早期的免疫排斥反應,保護了移植血管的內(nèi)皮細胞,降低了同種帶瓣血管的鈣化程度。這一實驗結(jié)果,為同種異體常瓣大血管移植的臨床實踐提供了重要的參考價值。
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