吳 娟,林良緣,孫衛斌
(1.南京大學口腔醫學院,南京大學醫學院附屬口腔醫院牙周科,江蘇南京210008; 2.福建醫科大學附屬泉州市第一醫院口腔科,福建泉州362000)
牙周病與動脈粥樣硬化(atherosclerosis,As)的關系日益受到醫學界的重視,現有的流行病學、分子生物學、動物模型和體外實驗研究均表明:牙周病與As存在一定的相關性[1]。牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonas gingivalis,Pg)是成人牙周炎的主要病原體[2],目前的研究認為Pg感染是As發生、發展的重要危險因素[3]。Li等[4]研究表明:在ApoE(-/-)小鼠中,Pg能夠促進其As的發生,增強冠狀動脈粥樣斑塊的形成和鈣化;但牙周病在As發生、發展過程中的作用機制和作用環節,特別是對內皮細胞一氧化氮(nitric oxide,NO)信號通路中的意義報道尚少。
Liuba[5]研究認為:病原微生物的侵襲可造成血管內皮細胞損傷并損害血管NO信號通路,由此引起的血管內皮細胞功能障礙是As發生的起始環節。NO是由內皮細胞分泌的一種最重要的血管舒張因子,主要以L-精氨酸和分子氧為底物,經NO合成酶催化而合成。NO可以激活鳥甘酸環化酶(Guanylate,GC),分解三磷酸鳥苷酸使細胞內cGMP水平升高,后者作為第二信使而促進血管舒張[6]。cGMP為檢測NO生物利用度的間接指標。
感染復數[7](multiplicity of infection,MOI)是指感染時噬菌體與細菌的數量比值,即平均每個細菌感染噬菌體的數量,后來MOI被普遍用于病毒感染細胞的研究中,其含義是感染病毒與細胞數量的比值,本研究中的MOI是指感染Pg與臍靜脈內皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC)數量的比值[8]。本研究分別用MOI 1∶10、1∶50、1∶250的Pg ATCC 33277干預HUVEC,通過125I–cGMP放射免疫試劑盒檢測HUVEC cGMP的水平,以探討Pg對內皮細胞功能損傷的途徑。
人臍靜脈內皮細胞株(HUVEC,ATCC,Manassas,VA,南京軍區南京總醫院外科研究所提供,來源于美國ATCC細胞庫);Pg ATCC 33277(四川大學口腔疾病研究國家重點實驗室提供);DMEM培養基、新生牛血清、青霉素、鏈霉素(Gibco公司,美國);胰蛋白大豆肉湯、酵母、哥倫比亞瓊脂基質(OXOID公司,英國);125I-cGMP放射免疫試劑盒(上海中醫藥大學核醫學科研究中心);CO2孵箱(Heraeus公司,德國);厭氧罐(N2∶CO2∶H2= 80∶10∶10,BD公司,美國);IX70倒置顯微鏡(Olympus,日本)。
1.2.1 HUVEC細胞系的維持培養
參照文獻[9]的方法,取HUVEC細胞株解凍復蘇后,分別加入含100 mL/L的熱滅活新生牛血清、1×105U/L青霉素、100 mg/L鏈霉素、10 mmol/L Hepes的DMEM培養液,制成細胞懸液并接種于5個培養瓶中,置37℃50 mL/L CO2孵箱中貼壁培養,待細胞生長至80%融合后,用2.5 g/L胰蛋白酶和 0.1 g/L EDTA(ethylenediamine tetraacetic acid,乙二胺四乙酸)進行消化傳代。
1.2.2 Pg ATCC 33277的培養和菌懸液制備
取Pg ATCC 33277常規復蘇后,接種于含酵母浸膏 1 g/L、氯化血紅素 50 mg/L、維生素 K310 mg/L、胰蛋白大豆肉湯30 g/L的培養基中,置厭氧罐(N2∶CO2∶H2=80∶10∶10)中37℃培養。經哥倫比亞血瓊脂板檢測為Pg純培養后,取對數生長期的Pg ATCC 33277用不含青霉素、鏈霉素的DMEM制備細菌濃度分別為 1×109CFU/L、5×109CFU/L、2.5×1010CFU/L的菌懸液備用。
1.2.3 實驗分組和Pg ATCC 33277干預HUVEC
取生長良好的第5代HUVEC,用2.5 g/L胰蛋白酶和0.1 g/L EDTA進行消化,DMEM培養液重懸,調細胞濃度為1×108/L后接種于6孔板中(每孔1 mL),CO2孵箱中37℃培養。待細胞貼壁成單層后棄原液,PBS洗3遍,將細胞隨機分為4組(1個陰性對照組和3個實驗組),每組復3孔,然后陰性對照組加入DMEM培養液;3個實驗組分別加入細菌濃度為 1×109、5×109、2.5× 1010CFU/L的Pg ATCC 33277細菌懸液(即 MOI 1∶10、1∶50、1∶250)分別繼續培養。
1.2.4 各組細胞形態觀察和cGMP水平檢測
分別于上述干預培養4、12和36 h細胞,用倒置顯微鏡觀察各組細胞形態后,在每孔加入50 mmol/L的磷酸二酯酶抑制劑 10 μL,37℃50 mL/L CO2孵育5 min,棄上清,TBS沖洗2遍,加入0.3 mmol/L高氯酸1 mL,4℃下用細胞刮刮取并收集細胞,反復凍融破膜,3 000 r/min 4℃離心15 min,取上清。按125I-cGMP放射免疫試劑盒操作說明測定細胞中的cGMP濃度,由γ計數器預先編制的程序直接給出最大結合數(B0)和樣本讀數(B),結果以B/B0(%)表示并繪制標準曲線,由曲線得出相應樣品cGMP濃度。以上實驗均重復3次。
Pg ATCC 33277在哥倫比亞血平板上培養5 d后形成直徑約2 mm,凸起,有光澤,表面光滑的黑色球形菌落(圖1),未見其他形態的菌落,可確定為純培養。
培養36 h后,對照組HUVEC細胞形態呈圓形,多角形或不規則形,均勻透亮,貼壁后呈典型的“鋪路石”狀鑲嵌排列,卵圓形細胞核居中,胞膜明顯,細胞彼此之間不重疊(圖2a)。與對照組相比,Pg ATCC 33277 MOI 1∶10、1∶50、1∶250干預36 h內,各組HUVEC細胞形態未見明顯改變,仍呈“鋪路石”狀貼壁生長,并未出現明顯的細胞收縮、變圓和脫離等(圖2b、c、d)。

圖1 Pg ATCC 33277在哥倫比亞血平板形成的菌落

圖2 36 h時各組HUVEC在倒置顯微鏡下細胞形態(×100)
表1 Pg ATCC 33277對HUVEC細胞cGMP生成的影響 (pmol/mL,±s)

表1 Pg ATCC 33277對HUVEC細胞cGMP生成的影響 (pmol/mL,±s)
大寫字母為同一時間點內不同組間相比,小寫字母為同一組內不同時間點相比,不同字母組間P<0.05
組別 干預培養時間4 h 12 h 36 h對照組 0.787±0.283Aa 1.282±0.325Aa 1.501±0.168Aa MOI 1∶10 0.782±0.151Aa 0.655±0.061Bab 0.551±0.123Bb MOI 1∶50 0.766±0.068Aa 0.742±0.136Ba 0.574±0.098Bb MOI 1∶250 0.770±0.058Aa 0.639±0.116Bb 0.498±0.136Bc
cGMP為檢測NO生物利用度的間接指標,本研究用Pg ATCC 33277以不同MOI干預HUVEC不同時間后,各組cGMP的水平不同。同一時間內各組相比,4 h時各組間均無差異(P>0.05);而12 h和36 h時,各實驗組cGMP濃度均明顯低于對照組(P<0.05),但各實驗組之間無統計學差異(P>0.05)。同一組內不同干預時間相比,對照組各時間無統計學差異(P>0.05);MOI 1∶10和1∶50兩組4 h與12 h相比無統計學差異(P>0.05),且均以36 h時最低,與各組4 h、12 h相比差異有統計學意義(P<0.05);MOI 1∶250組隨干預時間延長cGMP濃度逐漸下降,各時間點之間差異均有統計學意義(P<0.05),呈時間依賴性。
牙周病是一種慢性感染性疾病,可導致牙齒周圍結締組織破壞、牙槽骨吸收,最終導致牙松動[10]。Pg是成人牙周炎的主要病原體,為G-無芽孢厭氧桿菌,主要定植于牙周袋上皮和齦下菌斑表面。有研究發現:Pg可粘附或入侵牙齦上皮細胞,在細胞內大量繁殖,釋放毒素,從而逃避宿主的防御機制[11]。Pg感染可導致局部炎癥反應,牙齦潰瘍形成以及局部微血管改變,從而增加暫時性菌血癥的發生率和嚴重性[12]。拔牙、牙周手術、潔治、刮治、刷牙、甚至咀嚼都可能促進Pg進入血循環,血管內皮細胞則成為Pg最初的靶細胞[13]。
慢性感染是動脈粥樣硬化的重要發病機理,可以通過直接損傷血管或誘導系統性炎癥反應,導致內皮細胞功能障礙,而內皮細胞功能障礙則是As發病的始動環節[14]。正常動脈壁的內膜是由單層內皮細胞所組成,內皮層是血液和組織之間的重要屏障,并參與機體的凝血、物質轉運和生物活性物質釋放等重要生命活動,且對細菌、細胞因子和LPS等各種刺激因子非常敏感,在機體炎癥和免疫應答中有著非常重要的作用[15]。NO是一種自由基性質的氣體,是內皮細胞分泌的一種最重要的血管舒張因子。NO可激活血管平滑肌細胞可溶性鳥苷酸環化酶,生成環磷酸鳥苷酸,繼而激活環磷酸鳥苷酸依賴的蛋白激酶(PKG),PKG可通過降低細胞內鈣離子敏感性或其濃度促進血管舒張;另外,NO還可以抑制血小板聚集,抑制白細胞粘附、平滑肌細胞增殖和遷移,減少氧自由基產生和低密度脂蛋白氧化等抗As的作用[6]。內皮組織感染可以引起NO生物利用度下降,Bouwman[16]通過體外研究證明:肺炎衣原體感染的血管內皮細胞eNOS功能下降,下調NO通路產物cGMP。因此研究Pg對HUVEC NO的影響可以為牙周病在As發病機理中的作用進一步提供實驗依據。
本研究發現,體外用Pg ATCC 33277分別以MOI 1∶10,1∶50,1∶250干預HUVEC 4、12、36 h后,HUVEC的細胞形態未見明顯改變,仍呈典型的“鋪路石”單層貼壁生長,但在MOI 1∶250時可時間依賴性地降低HUVEC cGMP的水平,而同一時間點,各個濃度組的cGMP水平并無明顯差異。
Roth[17]研究認為:Pg 381MOI 1∶10,1∶100干預人主動脈內皮細胞24 h時,對內皮細胞的形態無影響,對內皮細胞的存活無有害作用,而 Pg 381MOI 1∶500,1∶1 000則可以引起細胞收縮,變圓,細胞脫離,引起細胞凋亡。本研究同樣顯示Pg ATCC 33277 MOI 1∶10、1∶50、1∶250干預HUVEC 36 h時對細胞形態無有害作用。有研究發現Pg MOI 1∶100可以激活內皮細胞粘附分子的釋放[18],例如細胞間粘附分子(ICAM-1)、血管細胞粘附分子(VCAM-1)、p-選擇素、E-選擇素等,從而有利于中性粒細胞向內皮細胞趨化,促進血管平滑肌細胞的遷移和增殖;促進血細胞的游走以及動脈粥樣硬化的形成。因此我們認為,在早期,低濃度的Pg對內皮細胞的形態無影響,但可以影響內皮細胞的功能,例如誘導內皮細胞粘附分子和炎癥細胞因子的表達[13]。
前期研究結果顯示[19]:Pg ATCC 33277 MOI 1∶10、1∶100可以抑制HUVEC內皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)蛋白表達,誘導誘導型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)蛋白表達,最終促進 HUVEC細胞NO的生成。有趣的是:本研究cGMP水平不僅沒有因為大量生成NO而增加,卻反而下降,表明NO的生物利用度下降,提示NO可能直接發揮組織和細胞毒性作用。
本結果顯示:Pg早期雖對HUVEC細胞形態無有害作用,但可降低HUVEC cGMP的生成,表明NO的生物利用度下降,提示Pg可能會導致血管內皮細胞功能障礙。然而在體內,NO分子是一種半衰期極短的生物活性分子,作為重要的細胞內和細胞間信號調節分子,其與cGMP的關系非常復雜,且并非直接1∶1的關系,因此還需要進一步的體內研究證實。
[1] Gibson FC,Yumoto H,Takahashi Y,et al.Innate immune signaling and Porphyromonas gingivalis accelerated atherosclerosis[J].J Dent Res,2006,85(2):106-121.
[2] Socransky SS,Haffajee AD.The bacterial etiology of destructive periodontal disease:current concepts[J].J Periodontol,1992,63(4 Suppl):322-331.
[3] Wada K,Kamisaki Y.Molecular dissection of Porphyromonas gingivalis related arteriosclerosis:a novel mechanism of vascular disease[J].Periodontol,2000,2010,54(1):222-234.
[4] Li L,Messas E,Batista EL Jr,et al.Porphyromonas gingivalis infection accelerates the progression of atherosclerosis in a heterozygous apolipoprotein E-deficient murine model[J].Circulation,2002,105(7):861-867.
[5] Liuba P,Karnani P,Pesonen E.Endothelial dysfunction after repeated chlamydia pneumoniae infection in apolipoprotein e-knockout mice[J].Circulation,2000,102(9);1039-1044.
[6] Moncada S,Palmer RM,Higgs EA.Nitric oxide:physiology,pathophysiology,and pharmacology[J].Pharmacol Rev,1991,43(2):109-142.
[7] 吳娟,孫衛斌,季勇.牙齦卟啉單胞菌對人臍靜脈內皮細胞一氧化氮生成的影響[J].中華口腔醫學雜志,2009,44 (1):24-27.
[8] Chou HH,Yumoto H,Davey M,et al.Porphyromonas gingivalis fimbria-dependent activation of inflammatory genes in human aortic endothelial cells[J].Infect Immun,2005,73(9):5367-5378.
[9] 司徒鎮強,吳軍正.細胞培養[M].西安:世界圖書出版公司,2005:78-88.
[10] Pihlstrom BL,Michalowicz BS,Johnson NW.Periodontal diseases[J].The Lancet,2005,366(9499):1809-1820.
[11] Haffajee AD,Socransky SS.Microbial etiological agents of destructive periodontal diseases[J].Periodontol,2000,1994,5 (1):78-111.
[12] Daly C,Mitchell D,Grossberg D,et al.Bacteremia caused by periodontal probing[J].Aust Dent J,1997,42(2):77-80.
[13] Khlgatian M,Nassar H,Chou HH,et al.Fimbriae-dependent activation of cell adhesion molecule expression in Porphyromonas gingivalis infected endothelial cells[J].Infect Immun,2002,70(1):257-267.
[14] Anderson TJ.Nitric oxide,atherosclerosis and the clinical relevance of endothelial dysfunction[J].Heart Fail Rev,2003,8 (1):71-86.
[15] Vapaatalo H,Mervaala E.Clinically important factors influencing endothelial function[J].Med Sci Monit,2001,7(5): 1075-1085.
[16] Bouwman JJ,Visseren FL,Bevers LM,et al.Azithromycin reduces Chlamydia pneumoniae-induced attenuation of eNOS and GMP production by endothelial cells[J].Eur J Clin Invest,2005,35(9):573-582.
[17] Roth GA,Ankersmit HJ,Brown VB,et al.Porphyromonas gingivalis infection and cell death in human aortic endothelial cells[J].FEMS Microbiol Lett,2007,272:106-113.
[18] Kang I-C,Kuramitsu HK.Induction of monocyte chemoattractant protein-1 by Porphyromonas gingivalis in human endothelial cells[J].FEMS Immunol Med Microbiol,2002,34(4):311-317.
[19] Sun W,Wu J,Lin L,et al.Porphyromonas gingivalis stimulates the release of nitric oxide by inducing expression of inducible nitric oxide synthases and inhibiting endothelial nitric oxide synthases[J].J Periodontal Res,2010,45(3):381-388.