李長思,李明珠,楊利霞,王秀茹,杜明偉,李建華*
(1.中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院康復科,遼寧沈陽110001;2.中國醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院暨附屬第一醫(yī)院病理科,遼寧沈陽110001;3.中國醫(yī)科大學基礎醫(yī)學院病理教研室,遼寧沈陽110001)
PTN(pleiotrophin)最早是1989年在華盛頓大學醫(yī)學中心純化的一種生長因子[1],當時認為該因子為17 ku的蛋白,與肝素具有高親和性,并首次被命名為HBGF-8(heparin Binding growth factor-8)。1990年華盛頓大學醫(yī)學中心的進一步研究[2]發(fā)現(xiàn),該因子與當時已知的7個與肝素結合的生長因子不存在明顯同源性,并因該蛋白具有多種生物學活性而改名為pleiotrophin(PTN),意為多效蛋白,從而更能準確地表達該因子的特性。PTN編碼168個氨基酸,與MK存在50%的序列同源性,兩者共同組成肝素結合超家族。PTN在多種腫瘤組織及血清中高表達[3-5],具有促進有絲分裂及血管新生的特性,影響腫瘤細胞的血供、生長及轉(zhuǎn)移。研究表明,PTN蛋白在肺癌組織中含量豐富,早期即可在血漿中出現(xiàn),并且與腫瘤的分期相關[6],2002年Jajer等用ELASA法檢測肺癌患者血清中的PTN表達水平,發(fā)現(xiàn)PTN濃度比正常血清中的濃度顯著增高,并且與臨床病理分期成正相關,與化療藥物成負相關。本研究的目的是檢測PTN在肺腺癌不同標本中的表達,并分析它們之間的關系,探討PTN在肺腺癌EMT轉(zhuǎn)化中的作用。
1.1.1 臨床資料收集2008年至2010年間肺腺癌患者的術前血清83例和相對應的肺腺癌所致的惡性胸水。另收取50例正常獻血者血清、50例良性胸水增生細胞(炎癥、結核、創(chuàng)傷所致)作為對照。所有標本均取自中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院病理科。
1.1.2 試劑鼠抗人PTN(H-6)(sc-74443)單克隆抗體(濃縮性)購自美國Snata公司,辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠二抗于4℃保存待用。兔抗人TTF1單克隆抗體(即用型)、鼠抗人CK19單克隆抗體(即用型)、鼠抗人E-ca單克隆抗體、兔抗人vimentin單克隆抗體(即用型)、S-P超敏免疫組化試劑盒和DAB酶底物顯色試劑盒均購自北京中杉生物技術有限公司。
1.2.1 免疫細胞化學技術胸水標本常規(guī)離心、沉淀包埋、切片、脫蠟、水化,按S-P法常規(guī)步驟進行,以PBS代替一抗作陰性對照。結果判定標準:每張切片在光鏡下隨機選取5個視野,每個視野計數(shù)100個瘤細胞。著色強度:無色為0分,淺黃色或黃色為1分,棕黃色為2分。陽性細胞數(shù)<10%為0分,10%~50%為1分,>50%為2分,2項得分相乘結果>2記為陽性(+),<2為陰性。
1.2.2 Western-blot技術總蛋白從血清和胸水細胞中提取,冰上超生處理,4℃靜置,孵育50 min,4℃離心20 min(1 000 r/min),提取上清,用Brodford法測定蛋白濃度,以每孔80 μg蛋白加入10%SDS-PAGE凝膠電泳后,4℃,50 V條件下濕電轉(zhuǎn)移儀將蛋白轉(zhuǎn)入0.22 μm PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉液封閉2 h,在分子量為18~25 ku附近剪開PVDF膜孵育一抗(PTN 1∶100稀釋)4℃過夜,X底片曝光,顯影,定影后拍照,以β-actin為內(nèi)參,用凝膠成像及分析系統(tǒng)(BioImaging Systems,美國)分析蛋白各條帶的灰度值,并取其與β-actin的比值為相對表達量分析PTN的表達情況,每組結果均為相同體條件重復3次。
1.2.3 統(tǒng)計學分析應用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)處理,采用χ2檢驗(不滿條件時用Fisher確切概率法)分析各組計數(shù)資料,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
如圖1所示,在肺腺癌患者的血清中可見有特異性條帶,其中Ⅳ期肺腺癌患者的血清PTN蛋白表達水平明顯高于Ⅰ期肺腺癌患者的血清PTN蛋白表達水平。
在本研究中,首先做了免疫細胞化學CK19、TTF1染色,在所收集的189例惡性胸水細胞中兩者均呈強陽性表達,由此推斷所收集的惡性胸水細胞標本均為肺腺癌轉(zhuǎn)移至胸水所致的惡性胸水細胞,如圖2所示。PTN蛋白在惡性胸水腺癌細胞的陽性率為59%(49/83),在胸水良性增生細胞中的陽性率為0%(0/50),PTN蛋白在惡性胸水細胞中的陽性率高于胸水良性增生細胞中的陽性率(P<0.01)。

圖1 血清中PTN蛋白Western-blot結果顯示Fig.1 PTN protein Western-blot analysis showed in serum

圖2 PTN蛋白在胸水細胞中的免疫組化結果顯示(400×)Fig.2 PTN protein in pleural effusion cells in immunohistochemical results show(400×)
PTN蛋白在肺腺癌患者的2種不同標本中陽性率的比較如表1所示,PTN蛋白在轉(zhuǎn)移至胸水細胞中的陽性率59%(49/83)高于血清中的陽性率32.5%(27/83),差異具統(tǒng)計學意義(P<0.05),提示PTN的表達在肺腺癌的EMT轉(zhuǎn)變中有非常重要的作用。83例肺腺癌轉(zhuǎn)移至胸水細胞中的PTN和Vimentin表達之間的關系如表2所示,PTN和Vimentin成正相關,差異具統(tǒng)計學意義(P<0.01,r=0.728)。

表1 PTN蛋白在2種不同標本中陽性率的比較Table 1 The comparision of PTN protein positive rates in three difference specimens

表2 在惡性胸水腺癌細胞中PTN和Vimentin表達之間的關系Table 2 The relationship between PTN and Vimentin expressions in lung adenocarcinoma cells from pleural fluid
肺癌對人類健康的危害日益嚴重,由于難以早期發(fā)現(xiàn)和易于轉(zhuǎn)移,導致肺癌死亡率增高,患者手術后5 a存活率降低。因此,近年來許多學者把研究的焦點聚集在肺癌的早期診斷和EMT(上皮間質(zhì)化)上。
癌癥的發(fā)生過程是一系列分子事件的作用引發(fā)的,包括基因突變(例如ras和p53基因突變)、生長因子和受體的過度表達、突變后的細胞能夠惡性增長和易發(fā)生轉(zhuǎn)移,并對藥物產(chǎn)生抵抗,激活的PTN可能通過某種信號轉(zhuǎn)導途徑使腫瘤細胞更惡性增長,因為發(fā)現(xiàn)在多種腫瘤組織中,PTN是高表達的,如神經(jīng)細胞瘤、神經(jīng)膠質(zhì)瘤、卵巢癌、前列腺癌、wilms瘤、絨癌和黑色素瘤等[7],在這些腫瘤組織中內(nèi)源性的PTN基因持續(xù)活化,而在相應的正常組織中很難檢測到PTN的表達。在神經(jīng)母細胞瘤中PTN和它的受體RPTPβ/ζ都表達增加[8],并且它們的表達水平與該腫瘤惡性程度有關。PTN在某些腫瘤組織中,表現(xiàn)出細胞轉(zhuǎn)化、抗凋亡、血管生成和纖溶等與腫瘤侵襲性生長有關的特性[9]。
1998年Souttou等[10]用ELISA方法檢測消化道腫瘤患者血清中的PTN表達,發(fā)現(xiàn)腫瘤患者血清中的PTN表達水平顯著高于正常對照,并與腫瘤的分期,腫瘤負荷相關。隨后用免疫組織化學方法檢測相應腫瘤患者組織中的PTN表達水平,結果發(fā)現(xiàn),血清中PTN高表達的腫瘤患者,其組織中PTN亦高表達,并且術后患者血清中的PTN濃度較術前大大降低。2002年Jajer等[11]也用ELISA方法檢測肺癌患者血清中的PTN表達水平,發(fā)現(xiàn)肺癌患者血清中的PTN表達水平明顯高于對照組,并與腫瘤的分期成正相關,與化療藥的療效成負相關,推測檢測血清中的PTN表達水平可能成為早期診斷肺癌的一種有效方法。Jager等[12]在1997年應用RT-PCR檢測了26株肺癌細胞系中的PTN mRNA表達,其中有12株小細胞肺癌(SCLC),14株非小細胞肺癌(NSCLC),結果顯示9株SCLC和3株NSCLC有PTN mRNA的表達。
細胞發(fā)生上皮間質(zhì)化(EMT)時,EMT表現(xiàn)為上皮細胞失去極性,與周圍細胞和基質(zhì)的接觸減少,細胞黏附力下降,遷移和運動能力增加,同時細胞表型發(fā)生改變,而在腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移過程中細胞首先獲得EMT的特性,以實現(xiàn)對周圍組織的浸潤和遠處器官的轉(zhuǎn)移,一旦這一過程完成,這些細胞就可能通過間質(zhì)細胞上皮轉(zhuǎn)型(mesenchyma-ep ithelial transition,MET)而重新獲得增殖能力[13-14],Mitsiadis等[15]在1995年研究發(fā)現(xiàn)在胚胎發(fā)育(胚胎形成的9~14.5 d)和器官形成過程中,PTN在上皮間質(zhì)化過程中發(fā)揮作用,如在神經(jīng)系統(tǒng)、感覺器官、呼吸器官、消化器官、泌尿生殖器官以及骨骼和牙齒的發(fā)育過程中這2種蛋白都可以被檢測出來。那么PTN在腫瘤EMT形成過程中是否也發(fā)揮重要的作用呢,2006年Perez-Pinera等[16]研究發(fā)現(xiàn)PTN可以破壞鈣依賴的細胞與細胞之間的黏附從而引起EMT,但這是作者在體外PTN處理細胞獲得的結論,然而在體內(nèi)肺腺癌細胞中是否有PTN蛋白的存在,以及在肺腺癌EMT轉(zhuǎn)變過程中其作用是什么。
本研究發(fā)現(xiàn)PTN在肺腺癌患者的2種不同標本中均高表達,同時直接比較早期肺腺癌(未發(fā)生轉(zhuǎn)移的肺腺癌血清)和中晚期肺腺癌(發(fā)生轉(zhuǎn)移的胸水)中PTN蛋白的表達,發(fā)現(xiàn)在中晚期肺腺癌中較早期肺腺癌中PTN蛋白的表達率高,說明PTN蛋白的表達在肺腺癌的侵襲轉(zhuǎn)移過程中發(fā)揮了重要的作用。
以上研究表明PTN在肺腺癌中高表達,并且在其發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移過程中也起重要的作用,尤其在肺腺癌的EMT轉(zhuǎn)變中,其作用越來越受到人們的重視。未來的研究可以PTN作為藥物靶點,或者對其信號通路進行干預,或者體外合成PTN抑制劑,達到下調(diào)PTN的作用[17],從而阻止EMT過程的發(fā)生。
[1] Milner PG,Li YS,Hoffman RM,et al.A novel 17 ku beparinbinding growth factor(HBGF-8)in bovine ulerus:purification and N-terminal amino acid sequence[J].Biochem Biophys Res Commun,1989,165(3):1096-1103.
[2] Li YS,Hoffman RM,Le Beau MM,et al.Characterization of the human pleiotrophin gene.Promoter region and chromosomal localization[J].J Biol Chem,1992,267(36):26011-26016.
[3] Liliental J,Moon SY,Lesche R,et al.Genetic deletion of the pten tumor suppressor gene promotes cell motility by activation of Rac1 and Cdc42 GTPases[J].Curr Biol,2000,10(7):401-404.
[4] Kilpelkinen I,Kaksonen M,Kinnunen T,et al.Heparin-binding growth-associated molecule contains two heparin-bindingβ-sheet domains that are homologous to the thrombospondin typeⅠrepeat[J].J Biol Chem,2000,275(18):13564-13570.
[5] Polykratis A,Delbe J,Courty J,et al.Identification of heparin affin regulatory peptide domains with potential role on angiogenesis[J].Int J Biochem Cell Biol,2004,36(10):1954-1966.
[6] 謝海燕,姜藻.多效蛋白在惡性胸腔積液中的診斷價值[J].中國現(xiàn)代醫(yī)生,2009,6(47):29-31.
[7] Matsuura O,Kadomatsu K,Takei Y,et al.Midkine expression is associated with postnatal development of the lungs[J].Cell struct funct,2002,27(2):109-115.
[8] Polykratis A,Delbe J,Courty J,et al.Identification of heparin affin Regulatory peptide domains with potential role on angiogenesis[J].Int JBiochem Cell Biol,2004,36(10):1954-1966.
[9] Deuel TF,Zhang N,Yeh HJ,et al.Pleiotrophin:a cytokine with diverse functions and a novel signaling pathway[J].Arch Biochem Biophys,2002,397(2):162-171.
[10] Souttou B,Juhl H,Hackenbruck J,et al.Relationship between serum concentrations of the growthfactorpleiotrophin and pleiotrophin-positive Tumors[J].Natl cancer Inst,1998,90(19):1468-1473.
[11] Jajer,list,et al.Serum levels of the angiogenic factor pleiotrophin in relation todisease stage in lung cancer patients[J].Cancer Research UK,2002,86(6):858-863.
[12] Jager R,Noll K,Havemann K,et al.Differental expression and biologicalactivity of the heparin-binding growth-associated molecule(HB-GAM)in Lung cancer[J].Int Cancer,1997,73(4):537-543.
[13] 楊文君,陳麗榮.上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化在腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移中的作用[J].實用腫瘤雜志,2008,23(1):86-90.
[14] 徐江鋒,羅庚求.上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)型與腫瘤轉(zhuǎn)移[J].國際病理科學與臨床雜志,2007,27(5):393-396.
[15] Mitsiadist TA,Salmivirtam M,Muramatsut T,et al.Expression of the heparin-binding cytokines,midkine(MK)and HBGAM(pleiotrophin)is associated with epithelial-mesenchymal interactions during fetal development and organogenesis[J].Development,1995,121(1):37-51.
[16] Perez-Pinera P,Alcantara S,Dimitrov T,et al.Pleiotrophin disrupts dependent-homophilic cell-cell adhesion and initiates an mesenchymal-transition[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103:17795-17780.
[17] 張宏艷,李剛,宋三泰.pleiotrophin研究進展[J].國外醫(yī)學遺傳學分冊,2005,2(28):65-68.