絮凝酵母吸附Cr(VI) 的機理

陳麗杰，王志存，葛旭萌，白鳳武

大連理工大學生命科學與技術學院，大連 116024

絮凝酵母吸附Cr(VI) 的機理

陳麗杰，王志存，葛旭萌，白鳳武

大連理工大學生命科學與技術學院，大連 116024

絮凝酵母SPSC01為釀酒酵母Saccharomyces cerevisiae和粟酒裂殖酵母Schizosaccharomyces pombe的融合菌株，用其吸附水溶液中的重金屬 Cr(VI)，可以大大降低生物吸附的固液分離成本。為了探討 SPSC01菌體絮凝蛋白對Cr(VI) 還原吸附的影響，對SPSC01與其親本菌株的吸附行為進行了比較。結果表明，SPSC01和其具有絮凝性狀的親本S. pombe的Cr(VI) 去除速率基本同步，遠優于無絮凝性狀的親本S. cerevisiae；達到吸附平衡時，S. pombe、SPSC01和S. cerevisiae對總Cr去除率分別達68.8%、48.6%和37.5%；從而證明了絮凝有利于Cr(VI) 的還原、吸附，絮凝蛋白在Cr(VI) 的還原吸附過程中起促進作用。通過化學屏蔽方法和傅立葉變換紅外光譜 (FTIR) 分析，對SPSC01菌體表面吸附Cr(VI) 的機理進行了研究，結果表明SPSC01菌體表面吸附Cr(VI) 起主要作用的基團是氨基、羧基和酰胺基。

絮凝酵母，生物吸附，Cr(VI)，吸附機理

Abstract:The flocculating yeast strain SPSC01 is a fusant strain of Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe.The use of SPSC01 to absorb Cr(VI) from Cr(VI) containing aqueous solution would greatly reduce the cost of post-adsorption separation, since the superior flocculating property of SPSC01 would allow easy separation of the Cr(VI)-biomass from the solution. In order to investigate the effects of flocculating proteins on Cr(VI) reduction and absorption by SPSC01, the absorption behaviors of SPSC01 and its parental strains were compared. The results showed that Cr(VI) removal rate of SPSC01 was almost the same as that of S. pombe, which also has flocculating ability, but was faster than that of S. cerevisiae, which has no flocculating ability. When the system reached equilibrium, the amount of total Cr adsorbed by S. pombe, SPSC01 and S. cerevisiae were 68.8%,48.6% and 37.5%, respectively. This showed that flocculation was beneficial to Cr(VI) reduction and adsorption, and suggested that focculating proteins may play a role in enhancing the Cr(VI) adsorption capacity of SPSC01 and S. pombe. We investigated the mechanism of Cr(VI) adsorption by SPSC01 using chemical modification and FTIR. The results indicated that the major functional groups (amino, carboxyl and amide) of surface proteins may contribute to the absorption of Cr(VI).

Keywords:flocculating yeasts, biosorption, Cr(VI), mechanisms of adsorption

重金屬污染是當今世界嚴重的環境問題之一[1]。Cr是一種典型的重金屬污染物。處理重金屬污染的傳統方法包括：化學沉淀、離子交換、活性炭吸附等。它們的缺點在于處理費用高，并且在低濃度時(＜100 mg/L) 處理效率低[2]。重金屬生物吸附法可以克服傳統處理方法的弊端[3-4]，并且生物吸附劑來源廣泛、成本低廉。但是由于生物吸附劑尺度小、密度低、固液分離困難致使其在重金屬廢水處理領域的應用受到限制，因此生物吸附劑的固定化技術和相關的研究受到極大關注，目前已有大量的研究成果發表[5-10]。然而以包埋、交聯等傳統的固定化技術所實現的生物吸附劑固定化存在傳質性能差、制備成本高等工程應用問題。細胞自絮凝是固定化細胞技術中全新的概念，這種無載體固定化細胞技術是利用細胞自絮凝顆粒作為一種固定化細胞的方法，與傳統固定化方法比較具有傳質阻力小、不產生細胞固定化過程附加成本的優勢。近年來，絮凝微生物在水污染治理中的重要地位逐漸被人們認可，利用自絮凝微生物處理重金屬的研究已有報道[11-12]，但未涉及到吸附機理的研究。本實驗所采用的絮凝酵母 SPSC01為絮凝性狀優良、已經投入燃料乙醇工業生產的融合酵母菌，具有自絮凝形成顆粒的特性，用其吸附重金屬 Cr(VI)，可以降低固液分離成本，有良好的實際應用前景。

酵母絮凝的機理被認為是類凝集素作用的蛋白-糖結合機理，即由細胞表面蛋白 (類似于凝集素蛋白) 和細胞外壁的甘露糖結合而引起的細胞凝聚[13-14]。因此，對絮凝酵母細胞表面吸附機理的研究十分必要。近年來生物吸附劑對Cr(VI) 的表面吸附機制的研究工作已有多篇文章發表[15-18]。表面吸附機制認為，細胞壁是吸附反應的主要場所，細胞壁的多糖、蛋白和脂類中的一些基團與Cr形成離子鍵、共價鍵等形式，而使Cr吸附到生物吸附劑上。細胞壁表面的主要作用基團包括氨基、羧基、羥基、酰胺基和磷酸基等。Park等[19]通過酸處理、有機溶劑處理、氨基甲基化和羧基氨基化等方法結合FTIR方法發現，氨基和羧基對于Cr(VI) 的吸附起重要作用。Kapoor和 Viraraghavan[20]也得到同樣結果，并發現磷酸基和脂類對吸附基本不起作用。Das和Guha[15]通過紅外光譜等方法認為，Cr(VI) 首先通過氫鍵等作用力與生物材料結合，后被還原為Cr(OH)3。Seki等[16]得到相反的結果，其發現甲基化羧基可以使酵母對Cr(VI) 的吸附量增大，因此指出細胞壁是微生物防止重金屬進入細胞的第一道屏障，帶負電荷的羧基基團可以防止Cr(VI) 的滲透。

本文對絮凝酵母還原吸附Cr(VI) 進行了研究，在實驗室現有條件的基礎上，借鑒前人實驗方法(FTIR和化學修飾)，探討了絮凝酵母細胞壁蛋白(包括絮凝蛋白) 在還原、吸附過程中的作用，為絮凝酵母定向改造、強化絮凝酵母的吸附能力以及絮凝酵母應用于重金屬及其他污染物治理的研究和開發提供了參考。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

SPSC01：本課題組于 1997年以釀酒酵母和粟酒裂殖酵母為親本，經過原生質體融合技術獲得的具有高乙醇發酵性能和強絮凝能力的融合菌。

Schizosaccharomyces pombe：SPSC01的親本菌株之一，具有自絮凝能力的粟酒裂殖酵母。

Saccharomyces cerevisiae：SPSC01的另一親本菌株，乙醇發酵性能優良的釀酒酵母。

酵母培養基 (g/L)：無水葡萄糖60，蛋白胨4，酵母浸粉4，121 ℃滅菌20 min。

酵母斜面保存培養基 (g/L)：無水葡萄糖30，蛋白胨4，酵母浸粉4，瓊脂粉20，121 ℃滅菌20 min。

Cr(VI) 溶液 (50 mg/L)：充分烘干的分析純重鉻酸鉀與純凈水配制成50 mg/L的Cr(VI) 溶液。

1.2 試劑及儀器

所用試劑有重鉻酸鉀、丙酮、濃硫酸、濃硝酸、磷酸、鹽酸、氫氧化鈉、溴化鉀、二苯碳酰二肼、尿素、亞硝酸鈉、高錳酸鉀、乙醇、甲醇、甲醛、甲酸、三氯化鉻等，均為分析純。

酶標儀 (Thermo electron corporation)，傅立葉紅外變換光譜儀EQUINOX 55型 (德國布魯克公司)。

1.3 實驗方法

1.3.1 鉻濃度測定

采用二苯碳酰二肼分光光度法測定溶液中Cr(VI)濃度[21]。采用高錳酸鉀氧化法測定溶液中總鉻濃度[22]。Cr(III) 濃度為總鉻濃度與 Cr(VI) 濃度之差。

1.3.2 酵母細胞表面基團的屏蔽處理

利用化學方法屏蔽絮凝酵母菌體表面的不同基團，并與未經處理的絮凝酵母的吸附行為進行比較，以此研究絮凝酵母細胞表面主要基團在吸附中的作用。

干燥酵母：85 ℃烘干的SPSC01。

NaOH處理酵母[23]：將酸洗(0.1 mol/L的HCl)的SPSC01與1 L 0.1 mol/L的NaOH反應24 h，再用去離子水洗去多余的NaOH，恒溫85 ℃烘干。

酵母表面羧基酯化[24]：將 SPSC01用無水甲醇和濃鹽酸按65∶0.6(V/V) 的比例酯化24 h，再用去離子水洗去多余的甲醇和鹽酸，恒溫85 ℃烘干。

酵母表面氨基甲基化[24]：將 SPSC01用甲酸和甲醛按1：2(V/V) 的比例反應24 h，再用去離子水洗去多余的甲酸和甲醛，恒溫85 ℃烘干。

苯處理酵母[24]：將苯和SPSC01 (按1 g干重對應75 mL苯的比例) 加熱6 h。過濾，去離子水沖洗，恒溫 85 ℃烘干。苯處理的目的是溶解酵母細胞壁表面脂質。

酵母表面磷酸基酯化[24]：按40 mL亞磷酸三乙酯和30 mL硝基甲烷對應1 g干重SPSC01的比例加熱6 h。過濾，去離子水沖洗，恒溫85 ℃烘干。此處理的目的是將磷酸基團酯化。

1.3.3 傅立葉變換紅外光譜 (FTIR) 分析

將各需測樣品烘干，研磨成粉狀，按約 1%的樣品比例與KBr充分研磨混合，保持干燥，壓片，利用傅立葉變換紅外光譜儀測定紅外吸收光譜圖。

1.3.4 Cr(VI) 吸附實驗

在磁力攪拌反應器中，對比 SPSC01與其親本菌株的Cr(VI)吸附性能，菌體干重10 g/L，Cr(VI) 初始濃度50 mg/L，攪拌轉速150 r/min，30 ℃，初始pH 2。

利用搖瓶實驗研究酵母細胞表面基團對于吸附的作用，菌體干重10 g/L，Cr(VI) 初始濃度50 mg/L，轉速150 r/min，30 ℃，初始pH 2。

2 結果與分析

2.1 SPSC01與其親本菌株的Cr(VI) 吸附性能對比

Cr(VI) 的去除速率是評價生物吸附材料性能的重要參數。以磁力攪拌罐為反應器，對比SPSC01、S. pombe和S. cerevisiae的吸附性能。由圖1可知，Cr(VI) 均被完全去除，SPSC01和S. pombe的去除速率基本同步，所需的平衡時間約為8 h，遠低于S. cerevisiae的平衡時間 (約24 h)。SPSC01和S. pombe均為具有絮凝性狀的酵母菌株，絮凝蛋白對于酵母絮凝起了關鍵的作用[25]，上述實驗結果表明絮凝蛋白的存在對于酵母菌體對 Cr(VI) 的還原起到了積極的作用。

圖1 SPSC01與其親本菌株的Cr(VI) 去除速率Fig. 1 Cr(VI) removal speed of SPSC01 and parental strains.Cr(VI) concentration: A: SPSC01; B: S. pombe; C: S.cerevisiae. Cr(VI) removal rate: D: SPSC01; E: S. pombe; F: S.cerevisiae.

圖 2 SPSC01與其親本菌株的總鉻和 Cr(III) 濃度隨時間變化Fig. 2 Influence of time on total chromium and Cr(III)concentration of SPSC01 and parental strains.

由圖2可見，對總鉻吸附量最大的是S. pombe，為68.8%，S. cerevisiae的吸附量最少，為37.5%，SPSC01的吸附量為48.6%。由于在Cr(VI) 的吸附過程中，Cr(VI) 被還原為Cr(III)，由Cr(III) 的生成曲線可見，相對于S. cerevisiae，SPSC01和S. pombe的還原速率較快，而且在Cr(VI) 被完全去除后，仍有部分Cr(III) 被SPSC01和S. pombe菌體吸附，這說明絮凝蛋白的存在有利于Cr(III) 的吸附。另外在Cr(VI) 的還原吸附過程中，SPSC01能夠保持較好絮凝性狀，未發現解絮的現象。

以上的實驗結果表明，SPSC01不僅有優良的絮凝性狀，而且對于 Cr(VI)的還原吸附能力也處于較高的水平，再者SPSC01與S. pombe相比，發酵性能更優，已應用于燃料乙醇工業生產[26]，菌體可以從發酵工業中大量獲得，作為生物吸附劑在 Cr(VI)廢水處理中有較高的應用價值。絮凝蛋白存在于細胞壁表面，基團主要包括羧基、氨基和酰胺基，研究其表面吸附機理可以為后期菌體定向改造，強化絮凝酵母的吸附能力提供參考。

2.2 酵母細胞表面基團的吸附作用

由于酵母絮凝是由細胞表面蛋白 (類似于凝集素蛋白)和細胞外壁的甘露糖結合而引起的細胞凝聚[13-14]。因此，結合絮凝蛋白的作用，對絮凝酵母細胞表面吸附機理的研究十分必要。通過搖瓶實驗，對 SPSC01和不同化學屏蔽處理酵母菌體的 Cr(VI)去除情況進行比較，結果如圖3所示。10 g/L干重的菌體均能使Cr(VI) 完全去除，但去除平衡時間有明顯差別。用干燥酵母SPSC01(B) 吸附Cr(VI)，可以最快地完全去除Cr(VI)，僅需要20 h，其次是活性 SPSC01(A)，它所需的平衡時間是 36 h。其余 5種菌體，對比干燥酵母和活性酵母，均表現為Cr(VI)去除平衡時間變長、去除速率變慢的現象。平衡時間長短順序為：羧基酯化菌體 (D)＞NaOH處理后菌體 (C) =苯處理后菌體 (F)＞氨基甲基化菌體 (E)=磷酸基酯化菌體 (G)。說明在 Cr(VI) 的去除過程中，羧基、氨基和磷酸基均起到促進的作用，因為在pH 2時，Cr(VI) 以HCrO4?形式存在，此時羧基、氨基和磷酸基均被質子化，以-COOH2+、-NH3+和-PO3H2+形式存在，陰陽離子形成離子鍵，從而使HCrO4?吸附到酵母表面。本結果與文獻[15,17-18]基本一致；而Seki等[16]指出細胞壁是微生物防止重金屬進入細胞的第一道屏障，負電羧基基團可以防止Cr(VI) 的滲透，甲基化羧基可以使酵母對Cr(VI) 的吸附量增大，與本文結果相反。利用NaOH處理酵母 (C)，理論上可以使酵母表面的酯基水解，釋放出羧基和羥基，從而使Cr(VI) 的去除速率更快；但實驗結果是Cr(VI) 的去除速率變慢，這可能是因為NaOH的處理會使酵母表面產生更多的負電基團，使酵母表面電負性增強，從而抑制了陰離子基團HCrO4?同酵母細胞表面的結合。苯處理酵母脂質(F) 的結果與羧基酯化和氨基甲基化的結果相似，這說明了脂質在 Cr(VI) 的吸附過程中也起到了一定的作用，因為其含有羧基，干燥酵母相對于活性酵母SPSC01表現出更高的速率，這與Rapoport和Muter[27]的結果相似，原因是烘干的酵母在再水合的過程中，表面有分岔的甘露聚糖蛋白纖維 (在活性酵母表面不存在)，會暴露出更多的羧基和氨基，這就使活性酵母的Cr(VI) 去除速率低于脫水酵母。

圖 3 SPSC01與不同化學屏蔽處理酵母菌體時 Cr(VI)去除的平衡時間Fig. 3 Equilibrium time of Cr(VI) removal of SPSC01 and yeasts of different chemical modification. A: SPSC01; B: drying yeasts; C: esteryl-hydrolyzed yeasts; D: carboxyl-esterified yeasts; E: amine-methylated yeasts; F: lipid-extracted yeasts; G:phosphate esterified yeasts.

圖 4 SPSC01與不同化學屏蔽處理酵母菌體的總鉻去除率Fig. 4 Total chromium removal rate of SPSC01 and yeasts of different chemical modification. A: SPSC01; B: drying yeasts;C: esteryl-hydrolyzed yeasts; D: carboxyl-esterified yeasts; E:amine-methylated yeasts; F: lipid-extracted yeasts; G:phosphate esterified yeasts.

總鉻去除率反應了材料的吸附能力，由圖 4可見，干燥酵母 (B) 相對于活性酵母 (A)，吸附能力變強，如 Rapoport和 Muter[27]所述，干燥酵母會暴露出更多的羧基和氨基，說明了羧基和氨基有利于吸附。所有酵母菌體中，吸附能力最強的是 NaOH處理后的酵母菌體 (C)，這是由于 NaOH使酯基水解，使菌體表面羧基增多，從而證明了羧基在吸附Cr過程中起到了重要的作用；羧基酯化 (D) 和苯處理后的菌體 (F) 的吸附能力明顯降低，也驗證了羧基的作用。對比發現，氨基甲基化的酵母菌體 (E)吸附能力明顯下降，證明氨基在吸附中的促進作用。羧基和氨基均為蛋白組成基團，證明了包括絮凝蛋白在內的酵母表面蛋白對于Cr的吸附起正向作用。實驗發現磷酸基酯化菌體 (G) 的吸附能力稍微降低，說明了磷酸基對于吸附起較弱的作用，或者是由于酵母表面磷酸基基團所占的比例較小。

圖5 吸附過程中SPSC01與不同化學屏蔽處理酵母菌體的Cr(III) 濃度Fig. 5 Cr(III) concentration of SPSC01 and yeasts of different chemical modification.

圖5所示為吸附過程中 SPSC01與不同化學屏蔽處理酵母菌體的 Cr(III)濃度，可以發現活性酵母SPSC01(A)和干燥酵母(B)的還原速率最快，其余酵母菌體的還原速率快慢順序為：磷酸基酯化菌體(G)＞羧基酯化菌體 (D)＞氨基甲基化菌體 (E)＞苯處理后菌體 (F)＞NaOH處理后菌體 (C)。這說明了屏蔽氨基和羧基之后，降低了Cr(VI) 的還原速率，證明了這兩種基團在Cr(VI) 還原過程中的作用。酵母磷酸基酯化之后，菌體的Cr(VI) 還原速率略有降低，說明磷酸基對于菌體對Cr(VI) 還原起到的作用較小。NaOH處理后的菌體吸附最多的 Cr(III)，因此在重金屬上清液中的Cr(III) 的濃度最小，驗證了上述實驗結果。

綜上所述，絮凝酵母 SPSC01表面基團對于Cr(VI)的還原吸附作用大小如下：羧基＞氨基＞磷酸基。

2.3 傅里葉變換紅外光譜 (FTIR) 分析結果

圖6和圖7為將SPSC01用不同方法處理后的各種酵母菌體吸附Cr(VI) 前后的紅外光譜圖，圖6中干燥酵母的譜峰分析如表1。

圖6 SPSC01和不同化學屏蔽處理后的酵母菌體紅外光譜圖Fig. 6 FTIR of SPSC01 and other yeasts of different chemical modification. A: drying yeasts; B: esteryl-hydrolyzed yeasts; C:carboxyl-esterified yeasts; D: amine-methylated yeasts; E:lipid-extracted yeasts; F: phosphate esterified yeasts.

圖 7 SPSC01和不同化學屏蔽處理后的酵母菌體吸附Cr(VI) 后的紅外光譜圖Fig. 7 FTIR of SPSC01 and other yeasts of different chemical modification after Cr(VI) adsorption. A: SPSC01; B: drying yeasts; C: esteryl-hydrolyzed yeasts; D: carboxyl-esterified yeasts; E: amine-methylated yeasts; F: lipid-extracted yeasts; G:phosphate esterified yeasts.

表1 干燥酵母空白對照譜峰分析Table 1 The analysis of FTIR of drying SPSC01

從活性 SPSC01吸附 Cr(VI) 后的 IR圖可以看出，相對于空白對照酵母 (圖6A) 來說，活性酵母吸附 Cr(VI)之后 (圖 7A)，其吸收頻率 3 430 cm?1和3 405 cm?1向高波數轉移，至3 444 cm?1和3 424 cm?1，而且譜峰變窄了，這說明氨基和羥基在吸附過程中起到了一定的作用。在1 720 cm?1~1 730 cm?1之間出現了較模糊的拐點，這是由于酵母細胞壁上的仲羥基被Cr(VI) 氧化成了羰基的原因。酰胺I帶，C=O的伸縮振動，或者是解離羧基中C=O伸縮振動的峰由1 650 cm?1降低到1 646 cm?1，這是由于Cr與其結合的原因，可能是結合到了氧分子上，與氧形成了穩定的共價鍵。1 405 cm?1的峰減弱，產生了1 376 cm?1的峰，C-O的伸縮振動或者磷酸基伸縮振動峰1 043 cm?1升到了1 051 cm?1，這可以說明磷酸基在吸附過程中起到了作用。在892 cm?1(箭頭處)產生了新的峰，這是 Cr=O伸縮振動峰[32]，說明在活性酵母吸附Cr(VI) 的過程中，有Cr原子和O原子形成Cr=O而使Cr(III) 吸附到酵母細胞上。

觀察所有吸附過 Cr(VI) 的菌體 (圖 7A-G) 和空白處理菌體 (圖 6A-F)，可以看出，在未吸附Cr(VI) 的菌體的紅外光譜圖上，均未發現 Cr=O伸縮振動峰，而吸附過Cr(VI) 的材料的紅外光譜圖上均在892 cm?1左右出現了吸收峰，這證明了Cr(VI)被還原以后，與O原子形成Cr=O而被酵母吸附，Cr-O的伸縮振動的峰在750 cm?1左右[32]，在本實驗中未體現出來，說明不存在Cr原子和O原子之間形成的單鍵。

由干燥酵母吸附 Cr(VI)后的 IR圖 (圖 7B) 可見，利用干燥酵母處理Cr(VI) 的結果相對于活性酵母吸附Cr(VI) 的不同在于，其氨基和羥基伸縮振動峰3 430 cm?1、3 405 cm?1沒有發生偏移。C-H伸縮振動，雙峰是亞甲基的特征峰2 925 cm?1、2 856 cm?1降低到了2 919 cm?1、2 852 cm?1，而且峰的強度很大，在1 149 cm?1、1 076 cm?1出現2個新的峰，是C-N的伸縮振動峰，或者是酯類 C-O-C的伸縮振動峰，這可能是由于干燥酵母加入到溶液中，在水合的過程中使其表面某些烴基、酯基基團暴露的原因。C-O的伸縮振動或者是磷酸基伸縮振動峰1 043 cm?1降低到了1 037 cm?1。其他譜峰，如：1 650 cm?1降低到1 648 cm?1，1 405 cm?1的峰減弱，產生了新的1 373 cm?1、892 cm?1的峰，這些與活性酵母吸附Cr(VI) 之后的譜峰一致。對比磷酸基團酯化酵母吸附前后的IR圖 (圖6F和圖7G) 發現，2 360 cm?1為水的吸收峰[33]，磷酸基伸縮振動峰1 043 cm?1至1 041 cm?1發生了稍微偏移，說明磷酸基團對于吸附的作用較小。

綜上可見，在Cr(VI)的吸附還原過程中，羥基、磷酸基、氨基、羧基和酰胺基均起到了一定的效果，其中起主要作用的是氨基、羧基和酰胺基，均為蛋白組分基團；這說明酵母表面蛋白對于Cr(VI) 的吸附還原起到了重要的作用。絮凝酵母 SPSC01的絮凝性狀緣于其表面絮凝蛋白的作用；當然酵母表面還有很多的其他類型蛋白，但可以確定絮凝蛋白不僅有利于后期的分離，而且在吸附還原的過程中也起到了積極的作用。

3 結論

本實驗所用菌株 SPSC01有優良的絮凝性狀和發酵性能，菌體可以從發酵工業中大量獲得，在Cr(VI)吸附還原過程中能夠保持其絮凝性狀，在重金屬生物吸附方面極具應用價值。

對比絮凝酵母 SPSC01與其親本菌株發現，盡管絮凝酵母的比表面積低于游離酵母，但仍表現出優于游離酵母的還原吸附能力，表明在Cr(VI) 的還原吸附過程中絮凝蛋白起積極作用。

化學屏蔽處理結果表明，絮凝酵母 SPSC01表面基團對于 Cr(VI) 的還原吸附作用大小如下：羧基＞氨基＞磷酸基。FTIR的分析結果表明，與Cr(VI) 還原吸附相關的官能團包括：羥基、磷酸基、氨基、羧基和酰胺基，其中起主要作用的是氨基、羧基和酰胺基，均為蛋白組成基團，證明了包括絮凝蛋白在內的酵母表面蛋白對于 Cr的吸附起正向作用。

綜上所述，絮凝酵母 SPSC01在重金屬污染治理中有良好的應用前景，在對其表面吸附機理研究的基礎上，后續研究工作可以考慮通過絮凝蛋白過量表達，以強化絮凝酵母SPSC01吸附能力。

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Mechanism of Cr(VI) biosorption by flocculating yeast

Lijie Chen, Zhicun Wang, Xumeng Ge, and Fengwu Bai
School of Life Science and Biotechnology, Dalian University of Technology, Dalian 116024, China

Received: April 23, 2010; Accepted: June 11, 2010

Supported by: National Natural Science Foundation of China (No. 20806014).

Corresponding author: Fengwu Bai. Tel/Fax: +86-411-84706329; E-mail: fwbai@dlut.edu.cn

國家自然科學基金 (No. 20806014) 資助。