趙永欣,趙麗麗,劉巍巍,王健楠,李一經(jīng),喬薪瑗,葛俊偉,劉 敏*
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,哈爾濱 150030;2.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030)
傳染性造血組織壞死病(Infectious hematopoietic necrosis,IHN)是鮭、鱒魚(yú)類(lèi)一種嚴(yán)重的傳染性疾病。隨著水生動(dòng)物及其產(chǎn)品進(jìn)出口貿(mào)易,世界范圍內(nèi)的傳染性造血組織壞死病急劇增加,已有報(bào)道在日本、韓國(guó)、中國(guó)、歐洲等地區(qū)檢測(cè)到該病病毒[1-2]。本實(shí)驗(yàn)室從黑龍江省某漁場(chǎng)病魚(yú)組織內(nèi)分離得到傳染性造血組織壞死病毒IHNV-ZYX株(GenBank編號(hào)HM099906),病魚(yú)的癥狀為體色發(fā)黑,眼球突出,腹部膨大,鰭基充血,腹鰭基部的骨胳肌中有“V”形出血斑塊,經(jīng)解剖可觀察到,魚(yú)的鰓絲褪色呈蒼白色,肝、脾、腎褪色。
傳染性造血組織壞死病病毒為傳染性造血組織壞死病的病原體,屬?gòu)棤畈《究疲≧habdoviridae)諾拉彈狀病毒屬(Novirhabdovirus),呈子彈狀,基因組為不分節(jié)段的單股負(fù)鏈RNA[3-4]。此病毒具有囊膜,其囊膜蛋白(G)是糖基化蛋白,N端具有一段疏水性的信號(hào)肽,在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中被切除后成為成熟的糖蛋白,糖基化是病毒顆粒在成熟過(guò)程中由宿主細(xì)胞內(nèi)分泌到細(xì)胞外所必需的[5]。G蛋白在膜融合及決定病毒毒力方面起著重要作用,還是病毒的主要抗原,可以誘導(dǎo)產(chǎn)生中和抗體[6],刺激細(xì)胞免疫[7]。
本試驗(yàn)將IHNV-ZYX株全長(zhǎng)的G基因(1 527 bp)進(jìn)行了原核表達(dá),制備了抗G蛋白血清,分析了IHNV G蛋白的抗原性,為進(jìn)一步研究IHNV G基因的免疫保護(hù)作用及診斷試劑和基因工程疫苗的研制奠定物質(zhì)基礎(chǔ)。
毒株、菌株與質(zhì)粒:IHNV-ZYX株為本實(shí)驗(yàn)室分離,CHSE-214細(xì)胞由深圳出入境檢驗(yàn)檢疫局江育林教授惠贈(zèng),Rosetta(DE3)菌株、pET-30b載體由本實(shí)驗(yàn)室保存。
主要試劑:限制性內(nèi)切酶(購(gòu)自TaKaRa公司);T4DNA連接酶(購(gòu)自NEB公司);HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG、兔抗山羊IgG(購(gòu)自Sigma公司);山羊抗IHNV陽(yáng)性血清由深圳檢疫局劉葒饋贈(zèng)。
1.2.1 引物設(shè)計(jì)
根據(jù)GenBank登錄的IHNV基因序列(L40883),設(shè)計(jì)兩對(duì)引物:G基因(1 527 bp)上游引物:Gu 5′GGATCCGATGGACACCATGATCACCAC 3′含有BamHⅠ酶切位點(diǎn),下游引物:Gl 5′CTCGAGGGAC CGGTTTGCCAGGTGATA 3′含XhoⅠ酶切位點(diǎn)。由上海生物工程有限公司合成。
1.2.2 重組表達(dá)質(zhì)粒pET30b-G的構(gòu)建
將用CHSE-214細(xì)胞繁殖的IHNV-ZYX株病毒,經(jīng)Trizol裂解后,以氯仿、異丙醇抽提病毒總RNA,RT-PCR方法分別擴(kuò)增得到G基因片段。將G基因PCR產(chǎn)物分別與pMD18-T連接,轉(zhuǎn)化JM109感受態(tài)細(xì)胞,提取質(zhì)粒,經(jīng)酶切鑒定篩選陽(yáng)性克隆、測(cè)序。獲得陽(yáng)性重組質(zhì)粒后用BamHⅠ、XhoⅠ雙酶切,純化后連接到經(jīng)同樣雙酶切純化的pET-30b載體,構(gòu)建重組表達(dá)質(zhì)粒pET30b-G。
1.2.3 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及鑒定
將 pET30b-G轉(zhuǎn)化大腸桿菌Rosetta(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,37℃振蕩培養(yǎng)至OD600值達(dá)0.6時(shí),經(jīng)IPTG誘導(dǎo)進(jìn)行表達(dá)。表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE分析。
1.2.4 抗體的制備
將 pET30b-G/Rosetta(DE3)重組菌誘導(dǎo)后提取包涵體,經(jīng)SDS-PAGE分離目的片段,將凝膠在0.25 mol·L-1KCl溶液中染色,切下目的膠條并碾碎,加入少量的PBS后反復(fù)凍融3次,離心取上清并測(cè)得G蛋白濃度為3.95 mg·mL-1。以處理后的G蛋白加弗氏佐劑,按參考文獻(xiàn)[8]介紹的方法分3次免疫新西蘭兔,三免后第7天心臟采血,分離血清,-80℃保存。
1.2.5 抗體效價(jià)的檢測(cè)及抗原性分析
用重組G蛋白包被ELISA板,兔抗G蛋白血清和兔陰性血清為一抗,HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG作為二抗,OPD顯色。結(jié)果判定:當(dāng)P/N=(陽(yáng)性血清OD490的值-空白孔OD490的值)/(陰性血清OD490的值-空白孔OD490的值)>2時(shí),陽(yáng)性血清的最大稀釋度即為血清抗體效價(jià)。同時(shí)用感染IHNV的細(xì)胞培養(yǎng)物包被ELISA板,用同樣的方法測(cè)定G蛋白抗血清與病毒的反應(yīng)性。
將誘導(dǎo)后的G蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳并轉(zhuǎn)膜,以山羊抗IHNV陽(yáng)性血清為一抗,HRP標(biāo)記的兔抗山羊IgG為二抗,進(jìn)行Western-blot分析。
以IHNV-ZYX株cDNA為模板,通過(guò)PCR擴(kuò)增,獲得擴(kuò)增片段G基因約為1 527 bp,與預(yù)期大小相符。測(cè)序結(jié)果表明通過(guò)RT-PCR方法成功地?cái)U(kuò)增了G目的基因。用Bam HⅠ和XhoⅠ雙酶切pET30b-G質(zhì)粒,分別得到約5 400和1 527 bp的片段,酶切鑒定與預(yù)期相符(見(jiàn)圖1)。

圖1 重組質(zhì)粒pET30b-G酶切PCR鑒定結(jié)果Fig.1 Restriction map of pET30b-G
結(jié)果見(jiàn)圖 2。重組菌 pET30b-G/Rosetta(DE3)誘導(dǎo)后在約52 ku處出現(xiàn)蛋白條帶,與預(yù)期重組蛋白分子質(zhì)量一致。且一定范圍內(nèi)隨著誘導(dǎo)時(shí)間的延長(zhǎng),表達(dá)量逐漸增多,在誘導(dǎo)4 h時(shí)表達(dá)量最大。超聲波處理誘導(dǎo)后菌體,經(jīng)SDS-PAGE分析,菌體在沉淀中有目的蛋白,可知此蛋白以包涵體形式存在。

圖2 重組菌pET30b-G/Rosetta(DE3)表達(dá)蛋白SDSPAGE鑒定結(jié)果Fig.2 SDS-PAGE profile of pET30b-G/Rosetta(DE3)expressed protein
將本試驗(yàn)制備的兔抗G蛋白血清作為陽(yáng)性血清,免疫接種前兔血清作為陰性血清,重組G作為抗原,進(jìn)行間接ELISA試驗(yàn)。結(jié)果表明抗血清與相應(yīng)的抗原有較強(qiáng)的反應(yīng)性,滿足P/N>2時(shí),血清的最大稀釋度分別為1∶25 600,即為制備的兔抗G蛋白血清效價(jià)(見(jiàn)表1)。

表1 間接ELISA檢測(cè)G蛋白結(jié)果Table 1 Indirect ELISA result of inspection
用感染IHNV-ZYX株的細(xì)胞培養(yǎng)物包被ELISA板,與兔抗G蛋白的免疫血清進(jìn)行試驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖3。
從結(jié)果可知,抗G蛋白的兔血清稀釋度為1∶1 600時(shí),P/N仍大于2。說(shuō)明制備的抗血清與全病毒抗原發(fā)生較強(qiáng)的特異性反應(yīng),抗G蛋白的免疫血清能夠識(shí)別IHNV抗原,G蛋白具有良好的免疫原性。
重組G蛋白經(jīng)SDS-PAGE轉(zhuǎn)印到NC膜上,山羊抗IHNV血清1∶1 000稀釋作為一抗,HRP兔抗山羊IgG1∶2 000稀釋作為二抗,Western-blotting結(jié)果見(jiàn)圖4。誘導(dǎo)后的G菌體蛋白在52 ku處出現(xiàn)了明顯的特異性條帶,而未經(jīng)誘導(dǎo)的菌體蛋白無(wú)條帶產(chǎn)生。Western-blotting結(jié)果表明,重組G蛋白可被山羊抗IHNV血清識(shí)別,G蛋白具有良好的反應(yīng)原性。以上兩項(xiàng)結(jié)果說(shuō)明,表達(dá)的G蛋白與天然的IHNV G蛋一樣具有相同的抗原性。

圖3 間接ELISA檢測(cè)抗G蛋白兔血清效價(jià)結(jié)果Fig.3 Result of G protein infected rabbit

圖4 表達(dá)目的蛋白的Western-blotting檢測(cè)Fig.4 Identification of expressed protein by Westernblotting
G蛋白是傳染性造血組織壞死病毒的主要抗原,可誘導(dǎo)動(dòng)物機(jī)體產(chǎn)生特異性的免疫應(yīng)答,還可以作為研究IHNV免疫保護(hù)的抗原基因,因此通常選擇G基因作為抗原基因來(lái)構(gòu)建DNA疫苗[7]。有報(bào)道指出肌肉注射G蛋白表達(dá)質(zhì)粒可誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生高水平免疫率[9-11]。Lorezen等構(gòu)建了IHNV病毒G蛋白基因的DNA疫苗[12-13],能夠誘導(dǎo)虹鱒產(chǎn)生75%的較高水平的免疫保護(hù)率。Kim等認(rèn)為該病毒G蛋白一個(gè)氨基酸的改變會(huì)影響病毒的毒力和致病性[14]。因此,G蛋白在傳染性造血組織壞死病毒基因工程疫苗和診斷技術(shù)等方面的研究中是重要的靶蛋白。目前國(guó)內(nèi)對(duì)此研究較少,2009年郭露玲等對(duì)其進(jìn)行了原核表達(dá)但并未分析該蛋白的功能特性[15],本研究的病毒株IHNV-ZYX為本實(shí)驗(yàn)室獲得的分離株,更深一步地對(duì)其功能進(jìn)行研究是很有必要的。
本試驗(yàn)獲得分離株IHNV-ZYX G基因全長(zhǎng)cDNA序列,而且成功構(gòu)建了表達(dá)IHNV G蛋白大腸桿菌載體系統(tǒng),可以在IPTG的誘導(dǎo)下大量表達(dá)G蛋白,純化后制備了高效價(jià)的抗血清,兔抗G蛋白的血清可與IHNV特異反應(yīng),表明G蛋白具有良好的免疫原性。同時(shí),本試驗(yàn)制備的G蛋白可被山羊抗IHNV陽(yáng)性血清識(shí)別,反應(yīng)條帶單一,說(shuō)明表達(dá)的G蛋白也具有良好的反應(yīng)原性。本試驗(yàn)的結(jié)果表明,以原核表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)的G蛋白可以作為檢測(cè)抗原,完全可以代替全病毒制備抗原進(jìn)行病毒繁殖,病毒純化等繁瑣工藝,這對(duì)于IHNV在細(xì)胞上繁殖周期長(zhǎng),繁殖IHNV的細(xì)胞培養(yǎng)難度大具有更重要的現(xiàn)實(shí)意義。因此,G蛋白可作為IHNV的診斷抗原,為建立診斷檢測(cè)方法,流行病學(xué)調(diào)查等研究奠定了基礎(chǔ)。
分離株IHNV-ZYX G基因全長(zhǎng)cDNA序列的獲得為研究分離株的免疫學(xué)特性及對(duì)其編碼的G基因結(jié)構(gòu)與功能的深入研究奠定基礎(chǔ),分離株G蛋白具有良好的免疫原性也為IHNV的免疫預(yù)防提供重要的理論基礎(chǔ)。
[1]ArkushKD,BovoG,De Kinkelin P,et al.Biochemical and antigenic properties of the first isolates of IHNV from salmonid fish in Europe[J].Aquat An Health,1989(1):148-153.
[2]Lapatra S E.The use of serological techniques for virus surveillance andcertification of finfish[J].Annual Review of Fish Diseases,1996,(6):15-28.
[3]吳金爐,曾志南.魚(yú)類(lèi)病毒病與魚(yú)類(lèi)病毒疫苗[J].海洋科學(xué),1999(4):37-42.
[4]WolfK.Fishvirusesandfishviraldisease[M].[S.L.]CornellUniversity Press,1989:476-493.
[5]Leavitt R,Schlesinger S,Kornfeld S.Tunicamycin inhibits glycosylation and multiplication of Sindbis and vesicular stomatitis viruses[J].Virology,1977,21(1):375-385.
[6]Boudinot P,Blanco M,de Kinkelin P,et al.Combined DNA immunization with the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induces double-specific protective immunity and nonspecific response in rainbow trout[J].Virology,1998,249(2):297-306.
[7]Corbeil S,Lapatra S E,Anderson E D,et al.Evaluation of the protective immunogenicity of the N,P,M,NV and G proteins of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout oncorhynchus mykiss using DNA vaccines[J].Diseases of Aquatic Organisms,1999,39(1):29-36.
[8]郭鑫.動(dòng)物免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)教程[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,2007.
[9]Corbeil S,Lapatra S E,Anderson E D,et al.Nanogram quantities of a DNA vaccine protect rainbow trout fry against heterologous strains of infectious hematopoietic necrosis virus[J].Vaccine,2000,18(25):2817-2824.
[10]Garver K A,Conway C M,Elliott D G,et al.Analysis of DNA-vaccinated fish reveals viral antigen in muscle,kidney and thymus,and transient histopathologic changes[J].Marine Biotechnology,2005,7(5):540-553.
[11]Garver K A,Conway C M,Kurath G.Introduction of translation stop codons into the viral glycoprotein gene in a fish DNA vaccine eliminates induction of protective immunity[J].Marine Biotechnology,2006,8(4):351-356.
[12]Lapatra S E,Corbeil S,Jones G R,et al.Protection of rainbow trout against infectious hematopoietic necrosis virus four days after specific or semi-specific DNA vaccination[J].Vaccine,2001,19(28-29):4011-4019.
[13]Lorenzen N,Lorenzen E,Einer-Jensen K,et al.DNA vaccines as a tool for analysing the protective immune response against rhabdoviruses in rainbow trout[J].Fish&Shellfish Immunology,2002,12(5):439-453.
[14]Kim C H,Winton J R,Leong J C.Neutralization-resistant variants ofIHNVhavealteredvirulenceandtissuetropism[J].Virology,1994,68(5):8447-8453.
[15]郭露玲,劉海濱,石劍,等.傳染性造血組織壞死癥病毒囊膜蛋白在原核細(xì)胞中的表達(dá)[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009,28(2):210-213.