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microRNA-24對人喉鱗癌Hep2細胞增殖及侵襲的影響

2011-05-25 01:44:12郭艷尚超孫開來鐘鳴富偉能
中國醫科大學學報 2011年7期
關鍵詞:實驗檢測能力

郭艷,尚超,孫開來,鐘鳴,富偉能

(中國醫科大學1.口腔醫學院中心實驗室,沈陽 110002;2.基礎醫學院醫學遺傳學教研室,沈陽 110001)

喉癌是原發于上皮的最常見的頭頸部惡性腫瘤,其中絕大多數組織類型是鱗狀細胞癌(laryngeal squamouscell carcinoma,LSCC)。盡管科研工作者從多個層面致力于喉鱗癌的研究,但其生存率和治療策略一直沒有顯著的提高。近年來,微小RNA(microRNAs,miRNAs)的發現為腫瘤治療靶點的研究帶來了新的曙光,它是一類長約22個核苷酸的非編碼小RNA,通過降解靶基因mRNA或抑制其翻譯而在腫瘤的發生、發展過程中發揮著類似于癌基因和抑癌基因的功能[1]。Li等[2]應用 miRNAs芯片建立LSCCmiRNAs表達譜,發現微小RNA-24(microRNA-24,miR-24)表達水平顯著低于癌旁組織,且與淋巴結轉移相關,提示miR-24在LSCC發生、發展中可能發揮著抑癌基因的功能。因此,本研究中我們將以LSCCHep2細胞系為研究對象,體外生物合成miR-24前體(pre-miR-24),通過轉染、MTT 和 Transwell小室法進一步探討miR-24對LSCC細胞增殖、侵襲能力的影響,以期為miR-24介導的LSCC分子機制研究乃至LSCC有效分子靶標的開發提供依據。

1 材料與方法

1.1 細胞培養

人LSCCHep2細胞系和鼠NIH3T3細胞系由本室保存,常規培養于RPMI 1640培養基(Gibco)中,取對數生長期的細胞用于后繼實驗。

1.2 miR-24前體合成與細胞轉染

miRNA-24前體(pre-miR-24)由 Ambion公司合成,cotrol miR為陰性對照。Hep2細胞于轉染前24 h接種于 24孔板中(4×104/孔),按照脂質體 LipofectamineTM2000操作說明將50 nmol/L pre-miR-24和control miR分別轉入Hep2細胞中,單獨轉染脂質體組為空白對照。37℃5%CO2培養箱中重新培養后進行相關檢測。

1.3 熒光定量PCR檢測轉染效果

用mirVana miRNA分離試劑盒(Ambion)提取總miRNA。QuantiMir反轉錄試劑盒(System Biosciences)逆轉錄成小RNA的cDNA。根據操作說明應用SYBR熒光染料(Ambion)檢測pre-miR-24的表達,U6-snRNA為內參。miR-24特異性上游引物為:5′-TGGCTCAGTTCAGCAGGAACAG-3′,通用下游引物為:5′-CGAATTCTAGAGCTCGAGGCAGGCGACATGGCTGGCTAGTTAAGCTTGGTACCGAGCT CGGATCCACTAGTCC(T)25VN-3′。反應體系為 30 μL,反應條件為:95 ℃ 10 min,然后按 95 ℃ 15 s,60℃1 min進行40個循環。應用的儀器是ABI公司的7500熒光定量PCR儀,使用的軟件是7500 Software V2.0.5。3次獨立樣本經過3次獨立實驗后得到的數據通過比較 CT 值法(2-ΔΔCT)進行相對定量分析。

1.4 相差顯微鏡下觀察細胞生長情況

Pre-miR-24轉染Hep2細胞36 h后,分別在相差顯微鏡下觀察各組細胞的生長情況并拍攝照片。

1.5 細胞增殖檢測

Hep2細胞轉染pre-miR-24及其對照control miR 1、3、5、7 d 后,細胞增殖檢測同參考文獻[3]。

1.6 體外細胞侵襲能力檢測

[3]。

1.7 統計學分析

所有實驗重復3次,應用SPSS13.0統計分析軟件對實驗數據進行t檢驗,結果表示為x±s,P<0.05為有統計學意義。

2 結果

2.1 熒光定量PCR驗證轉染效果

為了確定pre-miR-24是否已經成功導入Hep2細胞中,我們在轉染36 h后,用熒光定量PCR相對定量的方法檢測了miR-24的表達情況,結果發現,轉染36 h時,pre-miR-24轉染組中miR-24的表達較對照組明顯升高(圖1A、1B),該結果表明瞬時轉染成功,后繼實驗可以采用pre-miR-24轉染36 h的細胞進行分析。

圖1 熒光定量PCR檢測miR-24表達結果。Fig.1 Result of miR-24 expression assayed by real-time quantitative PCR

2.2 miR-24抑制LSCCHep2細胞增殖

為了了解miR-24在LSCC Hep2細胞中的作用,我們在Hep2細胞中轉染pre-miR-24 36 h后,通過相差顯微鏡觀察pre-miR-24對Hep2細胞形態的影響,結果發現轉染pre-miR-24組Hep2細胞明顯變圓、細胞數量明顯減少(圖2A-2C),提示pre-miR-24能抑制Hep2細胞的生長;同樣MTT實驗表明,與轉染control組相比,pre-miR-24轉染組Hep2細胞增殖能力顯著降低(圖2D),進一步證實了miR-24具有抑制Hep2細胞增殖的能力。

2.3 miR-24降低LSCCHep2細胞體外侵襲能力

Hep2細胞轉染pre-miR-24 36h后,通過Transwell小室侵襲實驗觀察各組細胞侵襲能力的變化,結果顯示pre-miR-24轉染組的跨膜細胞數為(12.37±0.52),明顯低于control miR轉染組和空白對照組的跨膜細胞數[(32.48±0.95);(34±1.25)],差異有統計學意義(P<0.05),提示miR-24具有抑制Hep2細胞侵襲的作用。

圖2 miR-24對Hep2細胞增殖能力的影響Fig.2 Effects of miR-24 on Hep2 cell proliferation

3 討論

miRNAs是一種廣泛存在的對基因表達進行轉錄后水平調控的分子,具有控制基因表達及細胞增殖、分化和凋亡等多種功能,幾乎在所有腫瘤的發生或發展過程中均可檢測到miRNAs的過表達或表達缺失,而且這些異常表達的miRNAs通常超過半數定位于癌基因或抑癌基因的相關遺傳區域,從而表現出類似癌基因或抑癌基因的作用[4,5]。研究表明,miR-24定位于染色體的EST區域,且該區域為染色體上的不穩定區域,在頭頸鱗狀細胞癌(HNSCC)中經常發生改變[6]。

關于miR-24異常表達與腫瘤生物學行為的關系目前仍然存在爭議。有的學者認為miR-24在腫瘤的發生、發展中發揮著類似于腫瘤抑制基因的功能,而有的學者認為miR-24發揮著癌基因的作用。如在宮頸癌Hela細胞中,miR-24表達下調,細胞增殖能力明顯增強;在肺癌A549細胞中,miR-24表達下調導致細胞生長水平的下調[7]。盡管2種觀點存在矛盾之處,但2者一致性認為miR-24在腫瘤中發揮重要的功能,并且目前尚沒有關于miR-24與LSCC發生、發展及生物學功能的研究。本研究發現,通過體外人為的上調miR-24的表達能明顯改變Hep2細胞形態,使細胞數量明顯減少,細胞的增殖和侵襲能力明顯降低,證實miR-24能夠減慢LSCC的發展速度,抑制LSCC的細胞增殖和侵襲能力。另外,由于miRNAs在血液中穩定性很好,而且輕微的miRNAs表達降低即可在患者外周血中檢測到很高水平的miRNAs表達變化[8],并且血液標本的采集損傷性小,進一步揭示血液中miR-24的表達變化亦可能成為臨床上極具價值的非侵入性LSCC診斷材料之一。

但為什么miR-24在不同組織類型中的表達不一樣,并且發揮的作用也不盡相同,甚至完全相反呢?我們推測這一現象的主要原因在于不同類型細胞中的miR-24調控的靶基因存在差異,導致參與的細胞信號轉導通路差異,進而對細胞生長、增殖等生物學活性產生不同的調控效應。因此,在未來的研究中,我們將分析LSCC中miR-24的靶基因,進一步探討miR-24抑制細胞增殖和侵襲的分子機制。

參考文獻:

[1]Farazi TA,Spitzer JI,Morozov P,et al.miRNAsin human cancer[J].JPathol,2011,223(2):102-115.

[2]Li L,Zhang ZM,Liu Y,et al.DNA microarrays-based microRNA expression profiles derived from formalin-fixed paraffin-embedded tissue blocks of squammous cell carcinoma of larynx [J].Zhonghua Bing Li Xue Za Zhi,2010,39(6):391-395.

[3]郭艷,富偉能,尚超,等.HLA-B對喉癌Hep2細胞生物學行為的影響[J].山東醫藥,2011,51(11):21-22,33.

[4]Lal A,Navarro F,Maher CA,et al.miR-24 Inhibits cell proliferation by targeting E2F2,MYC,and other cell-cycle genes via binding to"seedless"3′UTRmicroRNA recognition elements[J].Mol Cell,2009,35(5):610-625.

[5]Sevignani C,Calin GA,Nnadi SC,et al.MicroRNA genes are frequently located near mouse cancer susceptibility loci [J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(19):8017-8022.

[6]Yu YH,Kuo HK,Chang KW.Theevolvingtranscriptome of head and neck squamous cell carcinoma:a systematic review [J].PLoSOne,2008,3(9):e3215.

[7]Cheng AM,Byrom MW,Shelton J,et al.Antisense inhibition of human miRNAs and indications for an involvement of miRNA in cell growth and apoptosis [J].Nucleic Acids Res,2005,33(4):1290-1297.

[8]Lin SC,Liu CJ,Lin JA,et al.miR-24 up-regulation in oral carcinoma:positive association from clinical and in vitro analysis [J].Oral Oncol,2010,46(3):204-208.

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