摘 要 以鯡魚精脫氧核糖核酸(Herring sperm DNA)為研究對(duì)象,利用紫外光(UV, 200~275 nm, 66.4 Lx)激發(fā)納米TiO2發(fā)生光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生羥基自由基(Hydroxyl radical, #8226;OH),探討#8226;OH引發(fā)DNA氧化損傷特性。采用凝膠電泳和高效液相色譜(HPLC)分析法跟蹤DNA損傷歷程;應(yīng)用電子自旋共振(Electron spin resonance, ESR)及分光光度法跟蹤損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的變化;運(yùn)用生物標(biāo)準(zhǔn)樣8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷(8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine, 8-OHdG)為內(nèi)標(biāo)物,通過(guò)HPLC分析DNA損傷產(chǎn)物,研究DNA損傷機(jī)理。結(jié)果表明,較單純UV輻照或暗光(Dark)催化條件,DNA濃度10 mg/L,TiO2濃度1.5 g/L、pH 7~8,紫外光激發(fā)納米TiO2介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH引發(fā)DNA損傷程度最大;DNA損傷為#8226;OH氧化歷程,并伴隨有深度氧化過(guò)程;DNA結(jié)構(gòu)中鳥(niǎo)嘌呤最易氧化損傷,8-OHdG為DNA氧化損傷中間產(chǎn)物及鳥(niǎo)嘌呤氧化損傷的特異產(chǎn)物。
關(guān)鍵詞 脫氧核糖核酸損傷; 羥基自由基; 光催化; 8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷
1 引 言
脫氧核糖核酸(DNA)是所有生物的遺傳物質(zhì)基礎(chǔ),能調(diào)控生物的發(fā)育和生命機(jī)能的運(yùn)作。環(huán)境中多種因素如輻射、溫度、重金屬誘導(dǎo)DNA損傷。生物體中自由基參與許多重要的生命過(guò)程,自由基過(guò)多會(huì)使有機(jī)體發(fā)生損傷,主要表現(xiàn)在#8226;OH導(dǎo)致DNA的堿基和脫氧核糖發(fā)生化學(xué)變化,引起堿基改變、破壞或脫落及脫氧核糖分解等。目前對(duì)自由基導(dǎo)致DNA損傷的研究主要從延伸輻射產(chǎn)生介導(dǎo)自由基、自由基的種類引發(fā)DNA損傷及DNA損傷過(guò)程其結(jié)構(gòu)變化幾個(gè)方面展開(kāi)探討,而從光照激發(fā)光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH導(dǎo)致DNA損傷機(jī)理的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。
本研究以鯡魚精DNA(Herring sperm DNA)為研究對(duì)象,利用紫外光(UV, 200~275 nm, 66.4 Lx)激發(fā)TiO2發(fā)生光催化反應(yīng)介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH,研究#8226;OH與DNA相互作用機(jī)理,重點(diǎn)通過(guò)凝膠電泳和HPLC檢測(cè)DNA損傷程度,采用電子自旋共振(Electron spin resonance, ESR)及分光光度法跟蹤損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的變化,同時(shí)以生物標(biāo)準(zhǔn)樣8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷(8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine, 8-OHdG)為內(nèi)標(biāo)物,探究#8226;OH攻擊DNA結(jié)構(gòu)損傷位點(diǎn),進(jìn)一步明確#8226;OH引起DNA氧化損傷機(jī)理。
2 實(shí)驗(yàn)部分
2.1 儀器與試劑
600E-SOLVENT高效液相色譜儀(美國(guó)Waters公司); ESP300E波譜儀(德國(guó)Brucker公司);GE-100凝膠電泳儀(北京市六一儀器廠)。
10.0 mg/L鯡魚精DNA水溶液;10.0 mg/L 8-OHdG溶液;0.4 mol/L 5,5-二甲基-1-吡咯啉-N-氧化物(5,5-Dimethyl-1-pyrroline-N-oxide, DMPO)溶液;1.0 g/L辣根過(guò)氧化物酶(Peroxidase horseradish, POD)溶液;10.0 g/L N,N-二乙基對(duì)苯二胺(N,N-Diethyl-p-phenylenediamine, DPD)溶液;甲醇為色譜級(jí)。
2.2 實(shí)驗(yàn)方法
在圓柱型硬質(zhì)石英瓶中加入10 mg/L鯡魚精DNA及1.0 g/L TiO2,放置暗處攪拌4 h,使DNA在催化劑表面吸附平衡,計(jì)時(shí)引入紫外光,間時(shí)取樣分析,以Dark/TiO2和單純UV為對(duì)照。在相同實(shí)驗(yàn)條件下,調(diào)節(jié)不同底物pH及TiO2濃度,分析光催化損傷DNA的影響因素。電泳分析:1%正常熔點(diǎn)的瓊脂糖凝膠,電壓101 V,電流80 mA,電泳時(shí)間30 min。瓊脂糖凝膠在302 nm利用凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行分析。HPLC分析:Kromasil C18色譜柱(200 mm×4.6 mm, 5
@ m),流動(dòng)相為甲醇-0.05%醋酸鈉(10∶90,V/V)溶液,流速0.5 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)260 nm。以DMPO為自旋捕獲劑,捕獲自由基生成DMPO-#8226;OH加合物,利用ESR分析DNA損傷過(guò)程#8226;OH相對(duì)濃度變化。利用DPD法分析DNA損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度變化。間時(shí)取樣1 mL加入到已裝好H2O2測(cè)定液(30
@ L POD, 1 mL pH 6.8 NaH2PO4-NaOH, 150 mL DPD)的比色管中,定容,靜置10 min,離心,取上清液在510 nm處進(jìn)行檢測(cè)。參照HJ/T 399-2007,測(cè)定DNA損傷過(guò)程化學(xué)需氧量(Chemical oxygen demand, COD)的變化。
3 結(jié)果與討論
3.1 DNA損傷的電泳分析
電泳圖譜中DNA超螺旋(SC)、線性(L)和開(kāi)環(huán)(OC)3種形態(tài)分布可衡量DNA損傷程度。采用凝膠電泳檢測(cè)DNA損傷程度,結(jié)果見(jiàn)圖1。隨著光催化輻照時(shí)間的延長(zhǎng),DNA片段減少,DNA氧化損傷程度增加,尤其UV/TiO2輻照DNA時(shí)長(zhǎng)180 min時(shí)(泳道1),SC DNA已不存在,且未見(jiàn)L DNA及OC DNA形態(tài),DNA完全損傷。
圖1 脫氧核糖核酸損傷的凝膠電泳圖像
Fig.1 Gel electrophoresis image of deoxyribonucleic acid (DNA) damage
泳道(Lane)1, 2, 3, 7: UV/TiO2 180, 120, 100, 60 min; 泳道(Lane)5: 11. DNA-MarkerⅢ; 泳道(Lane)4, 8: UV 100, 60 min; 泳道(Lane)9, 10: Dark/TiO2 60, 100 min; 泳道(Lane)6: None\\.
利用HPLC-紫外檢測(cè)器間時(shí)取樣分析DNA色譜譜圖(圖2a)。隨著光催化輻照時(shí)間的延長(zhǎng),保留時(shí)間為10.4 min的DNA物質(zhì)峰面積不斷減小;輻照時(shí)長(zhǎng)40 min樣品的色譜圖中出現(xiàn)損傷產(chǎn)物峰 (保留時(shí)間分別為12.0和20.4 min),隨著輻照時(shí)間的延長(zhǎng),DNA損傷產(chǎn)物峰面積呈先增加后減小的過(guò)程。
以8-OHdG為內(nèi)標(biāo)物,證明DNA損傷中間產(chǎn)物(保留時(shí)間為20.4 min)為8-OHdG。圖2 DNA損傷過(guò)程色譜譜圖(a)及DNA損傷及其損傷產(chǎn)物的動(dòng)力學(xué)曲線(b)
Fig.2 HPLC chromatogram of DNA damage (a) and kinetic curves of DNA damage and product (b)
1. 暗光激發(fā)TiO2催化體系DNA損傷動(dòng)力學(xué)曲線 (Kinetic curves of DNA damage under Dark/TiO2); 2. 單純紫外光輻照體系(Kinetic curves of DNA damage under UV); 3. 紫外光激發(fā)TiO2催化體系(Kinetic curves of DNA damage under UV/TiO2); 4: DNA損傷產(chǎn)物動(dòng)力學(xué)曲線(Kinetic curves of DNA damage product)。以DNA峰面積及其損傷產(chǎn)物8-OHdG峰面積對(duì)輻照時(shí)長(zhǎng)作圖,其動(dòng)力學(xué)變化曲線如圖2b所示。DNA氧化損傷程度為UV/TiO2>UV>Dark/TiO2。UV/TiO2體系DNA氧化損傷程度最大,輻照120 min DNA損傷99%,生成損傷產(chǎn)物8-OHdG濃度最高,其動(dòng)力學(xué)反應(yīng)常數(shù)為K=0.0165 min-1; 8-OHdG是先生成后消失的物質(zhì),是DNA氧化損傷的中間產(chǎn)物之一。pH值對(duì)TiO2表面態(tài)、界面電位和表面電荷及聚集性均有明顯影響,同時(shí)TiO2濃度也影響光催化效率(圖3)。從圖3a可見(jiàn),pH值近中性時(shí),光催化導(dǎo)致DNA損傷程度最大。由圖3b可見(jiàn),TiO2濃度為1.5 g/L時(shí),輻照時(shí)長(zhǎng)30 min DNA損傷30%,光催化對(duì)DNA損傷程度最大。實(shí)驗(yàn)表明,DNA濃度10 mg/L,TiO2 濃度1.5 g/L、pH 7~8時(shí),光催化反應(yīng)效率最高,DNA損傷嚴(yán)重。
圖3 底物pH (a)及TiO2濃度(b)對(duì)光催化引發(fā)DNA氧化損傷的影響?yīng)?/p>
Fig.3 Effect of pH (a) and TiO2 concentration (b) on DNA damage
3.2 DNA損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的分析
跟蹤DNA氧化損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度的變化(圖4a)。檢測(cè)紫外光催化體系產(chǎn)生的#8226;OH波譜信號(hào), 并比較不同體系產(chǎn)生#8226;OH相對(duì)強(qiáng)度變化的曲線(圖4b和圖4c)。
圖4 DNA氧化損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度變化(a)、UV/TiO2體系DMPO-#8226;OH加合物的ESR波譜信號(hào)(b)及不同體系#8226;OH相對(duì)強(qiáng)度的比較(c)
Fig.4 Change of H2O2 concentration (a), electron spin resonance (ESR) signals of 5,5-dimethyl-1-pyrroline-N-oxide
(DMPO) -#8226;OH adducts for UV/TiO2 system (b) and comparison of DMPO-#8226;OH intensity under different systems (c)
由圖4a可知,UV和Dark/TiO2體系不產(chǎn)生H2O2,DNA無(wú)損傷。但體系中引入紫外光并且有催化劑時(shí),紫外光激發(fā)TiO2產(chǎn)生TiO2(e-),O2捕獲光生e-產(chǎn)生#8226;O-2自由基,#8226;O-2自由基與H+在光生e-作用下生成大量H2O2,反應(yīng)8 h處H2O2的濃度最大。伴隨輻照時(shí)間的延長(zhǎng),H2O2經(jīng)紫外光分解或被光生e-還原轉(zhuǎn)化為#8226;OH。使用ESR檢測(cè)不同體系產(chǎn)生的#8226;OH波譜信號(hào)。UV/TiO2輻照DNA的ESR譜圖有一個(gè)四重峰,其強(qiáng)度比為1∶2∶2∶1,表明有#8226;OH生成(圖4b),同等條件UV/TiO2催化產(chǎn)生的DMPO-#8226;OH加合物的ESR信號(hào)強(qiáng)度比單純UV體系產(chǎn)生的信號(hào)強(qiáng)度強(qiáng)(圖4c),且其特征信號(hào)峰強(qiáng)度具有逐漸減弱的趨勢(shì)。結(jié)果表明,UV/TiO2光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生大量的H2O2及#8226;OH,DNA氧化損傷涉及#8226;OH氧化歷程。
3.3 跟蹤DNA深度氧化歷程
通過(guò)跟蹤DNA氧化損傷過(guò)程化學(xué)需氧量(COD)的變化,評(píng)價(jià)DNA氧化損傷(礦化)的程度(圖5)。相對(duì)于Dark/TiO2體系而言,UV和UV/TiO2體系DNA的COD值都隨著輻照時(shí)間的增加而減少。 UV/TiO2輻照12 h DNA礦化率達(dá)83.37%,DNA的礦化程度高于單純UV輻照體系。結(jié)果表明,DNA損傷伴隨著深度氧化過(guò)程,最終氧化為CO2、H2O等小分子無(wú)機(jī)物。 圖5 DNA損傷過(guò)程化學(xué)需氧量的變化
Fig.5 Change of chemical oxygen demand in the process of DNA damage
3.4 羥基自由基引起的DNA氧化損傷作用機(jī)理
紫外光激發(fā)TiO2光催化作用產(chǎn)生具有強(qiáng)氧化能力的#8226;OH,#8226;OH誘導(dǎo)DNA氧化損傷。鳥(niǎo)嘌呤是#8226;OH攻擊DNA結(jié)構(gòu)氧化損傷的首要位點(diǎn), 8-OHdG是鳥(niǎo)嘌呤氧化損傷的特異產(chǎn)物。DNA損傷歷程:鳥(niǎo)嘌呤(結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖6)自身發(fā)生氧化反應(yīng), 轉(zhuǎn)移一個(gè)-H+, 轉(zhuǎn)化為鳥(niǎo)嘌呤基團(tuán),該基團(tuán)不穩(wěn)定,易與空氣中的氧與H+結(jié)合為ROOH,伴隨體系重排反應(yīng)生成8-氧脫氧鳥(niǎo)嘌呤(8-OdG)。紫外光激發(fā)TiO2介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH,8-OdG在#8226;OH作用下氧化損傷生成8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷8-OHdG,三者的結(jié)構(gòu)式如圖6所示。隨著光催化反應(yīng)的進(jìn)行,中間體8-OHdG在強(qiáng)氧化能力的氧化物種#8226;OH作用下深度氧化為CO2, H2O等小分子無(wú)機(jī)物。
圖6 鳥(niǎo)嘌呤及DNA損傷產(chǎn)物的結(jié)構(gòu)式
Fig.6 Structures of guanine and damage products in DNA damage process
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Damage of Deoxyribonucleic Acid Caused by Hydroxyl Radical
WANG Xiao-Xing1, FANG Yan-Fen1, YANG Jing1, CHEN Deng-Xia1,
HUANG Ying-Ping1, ZHANG Ai-Qing2
1(Engineering Research Center of Eco-environment in Three Gorges Reservoir Region,
Ministry of Education, China Three Gorges University, Yichang 443002)
2(Key Laboratory of Catalysis and Materials Science of Hubei Province,
South-Central University for Nationalities, Wuhan 430074)
Abstract Oxidative damage characteristic of Herring Sperm DNA by hydroxyl radical (#8226;OH) which was excited by TiO2 under UV irradiation (200-275 nm, 66.4 Lx) was studied. The process of DNA damage was detected by gel electrophoresis and high performance liquid chromatographic analysis. Electron spin resonance (ESR) and spectrophotometry were used to determine the oxygen species and the relative concentration of H2O2, respectively. The mechanism of DNA damage was studied using 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine (8-OHdG) as an internal standard. The results showed that DNA can be damaged by #8226;OH generated from photocatalysis. Compared with UV or Dark/TiO2 system, the degree of DNA damage reached the maximum in the UV/TiO2 system under the condition of DNA concentration 10 mg/L, TiO2 concentration 1.5 g/L and pH 7-8. The damage was caused by the process of #8226;OH oxidation of TiO2 under UV irradiation and deep mineralization of DNA took place. Guanine was easy to damage than the other groups in DNA. 8-OHdG was one intermediate product of DNA damage and a special product of guanine damage.
Keywords Deoxyribonucleic acid damage; Hydroxyl radical; Photocatalysis; 8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine
(Received 13 November 2010; Accepted 7 January 2011)
注:本文中所涉及到的圖表、注解、公式等內(nèi)容請(qǐng)以PDF格式閱讀原文