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羥基自由基引起的脫氧核糖核酸損傷研究

2011-04-12 00:00:00王曉星方艷芬楊靜陳登霞黃應(yīng)平張愛(ài)清
分析化學(xué) 2011年5期

摘 要 以鯡魚精脫氧核糖核酸(Herring sperm DNA)為研究對(duì)象,利用紫外光(UV, 200~275 nm, 66.4 Lx)激發(fā)納米TiO2發(fā)生光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生羥基自由基(Hydroxyl radical, #8226;OH),探討#8226;OH引發(fā)DNA氧化損傷特性。采用凝膠電泳和高效液相色譜(HPLC)分析法跟蹤DNA損傷歷程;應(yīng)用電子自旋共振(Electron spin resonance, ESR)及分光光度法跟蹤損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的變化;運(yùn)用生物標(biāo)準(zhǔn)樣8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷(8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine, 8-OHdG)為內(nèi)標(biāo)物,通過(guò)HPLC分析DNA損傷產(chǎn)物,研究DNA損傷機(jī)理。結(jié)果表明,較單純UV輻照或暗光(Dark)催化條件,DNA濃度10 mg/L,TiO2濃度1.5 g/L、pH 7~8,紫外光激發(fā)納米TiO2介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH引發(fā)DNA損傷程度最大;DNA損傷為#8226;OH氧化歷程,并伴隨有深度氧化過(guò)程;DNA結(jié)構(gòu)中鳥(niǎo)嘌呤最易氧化損傷,8-OHdG為DNA氧化損傷中間產(chǎn)物及鳥(niǎo)嘌呤氧化損傷的特異產(chǎn)物。

關(guān)鍵詞 脫氧核糖核酸損傷; 羥基自由基; 光催化; 8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷

1 引 言

脫氧核糖核酸(DNA)是所有生物的遺傳物質(zhì)基礎(chǔ),能調(diào)控生物的發(fā)育和生命機(jī)能的運(yùn)作。環(huán)境中多種因素如輻射、溫度、重金屬誘導(dǎo)DNA損傷。生物體中自由基參與許多重要的生命過(guò)程,自由基過(guò)多會(huì)使有機(jī)體發(fā)生損傷,主要表現(xiàn)在#8226;OH導(dǎo)致DNA的堿基和脫氧核糖發(fā)生化學(xué)變化,引起堿基改變、破壞或脫落及脫氧核糖分解等。目前對(duì)自由基導(dǎo)致DNA損傷的研究主要從延伸輻射產(chǎn)生介導(dǎo)自由基、自由基的種類引發(fā)DNA損傷及DNA損傷過(guò)程其結(jié)構(gòu)變化幾個(gè)方面展開(kāi)探討,而從光照激發(fā)光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH導(dǎo)致DNA損傷機(jī)理的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。

本研究以鯡魚精DNA(Herring sperm DNA)為研究對(duì)象,利用紫外光(UV, 200~275 nm, 66.4 Lx)激發(fā)TiO2發(fā)生光催化反應(yīng)介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH,研究#8226;OH與DNA相互作用機(jī)理,重點(diǎn)通過(guò)凝膠電泳和HPLC檢測(cè)DNA損傷程度,采用電子自旋共振(Electron spin resonance, ESR)及分光光度法跟蹤損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的變化,同時(shí)以生物標(biāo)準(zhǔn)樣8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷(8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine, 8-OHdG)為內(nèi)標(biāo)物,探究#8226;OH攻擊DNA結(jié)構(gòu)損傷位點(diǎn),進(jìn)一步明確#8226;OH引起DNA氧化損傷機(jī)理。

2 實(shí)驗(yàn)部分

2.1 儀器與試劑

600E-SOLVENT高效液相色譜儀(美國(guó)Waters公司); ESP300E波譜儀(德國(guó)Brucker公司);GE-100凝膠電泳儀(北京市六一儀器廠)。

10.0 mg/L鯡魚精DNA水溶液;10.0 mg/L 8-OHdG溶液;0.4 mol/L 5,5-二甲基-1-吡咯啉-N-氧化物(5,5-Dimethyl-1-pyrroline-N-oxide, DMPO)溶液;1.0 g/L辣根過(guò)氧化物酶(Peroxidase horseradish, POD)溶液;10.0 g/L N,N-二乙基對(duì)苯二胺(N,N-Diethyl-p-phenylenediamine, DPD)溶液;甲醇為色譜級(jí)。

2.2 實(shí)驗(yàn)方法

在圓柱型硬質(zhì)石英瓶中加入10 mg/L鯡魚精DNA及1.0 g/L TiO2,放置暗處攪拌4 h,使DNA在催化劑表面吸附平衡,計(jì)時(shí)引入紫外光,間時(shí)取樣分析,以Dark/TiO2和單純UV為對(duì)照。在相同實(shí)驗(yàn)條件下,調(diào)節(jié)不同底物pH及TiO2濃度,分析光催化損傷DNA的影響因素。電泳分析:1%正常熔點(diǎn)的瓊脂糖凝膠,電壓101 V,電流80 mA,電泳時(shí)間30 min。瓊脂糖凝膠在302 nm利用凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行分析。HPLC分析:Kromasil C18色譜柱(200 mm×4.6 mm, 5

@ m),流動(dòng)相為甲醇-0.05%醋酸鈉(10∶90,V/V)溶液,流速0.5 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)260 nm。以DMPO為自旋捕獲劑,捕獲自由基生成DMPO-#8226;OH加合物,利用ESR分析DNA損傷過(guò)程#8226;OH相對(duì)濃度變化。利用DPD法分析DNA損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度變化。間時(shí)取樣1 mL加入到已裝好H2O2測(cè)定液(30

@ L POD, 1 mL pH 6.8 NaH2PO4-NaOH, 150 mL DPD)的比色管中,定容,靜置10 min,離心,取上清液在510 nm處進(jìn)行檢測(cè)。參照HJ/T 399-2007,測(cè)定DNA損傷過(guò)程化學(xué)需氧量(Chemical oxygen demand, COD)的變化。

3 結(jié)果與討論

3.1 DNA損傷的電泳分析

電泳圖譜中DNA超螺旋(SC)、線性(L)和開(kāi)環(huán)(OC)3種形態(tài)分布可衡量DNA損傷程度。采用凝膠電泳檢測(cè)DNA損傷程度,結(jié)果見(jiàn)圖1。隨著光催化輻照時(shí)間的延長(zhǎng),DNA片段減少,DNA氧化損傷程度增加,尤其UV/TiO2輻照DNA時(shí)長(zhǎng)180 min時(shí)(泳道1),SC DNA已不存在,且未見(jiàn)L DNA及OC DNA形態(tài),DNA完全損傷。

圖1 脫氧核糖核酸損傷的凝膠電泳圖像

Fig.1 Gel electrophoresis image of deoxyribonucleic acid (DNA) damage

泳道(Lane)1, 2, 3, 7: UV/TiO2 180, 120, 100, 60 min; 泳道(Lane)5: 11. DNA-MarkerⅢ; 泳道(Lane)4, 8: UV 100, 60 min; 泳道(Lane)9, 10: Dark/TiO2 60, 100 min; 泳道(Lane)6: None\\.

利用HPLC-紫外檢測(cè)器間時(shí)取樣分析DNA色譜譜圖(圖2a)。隨著光催化輻照時(shí)間的延長(zhǎng),保留時(shí)間為10.4 min的DNA物質(zhì)峰面積不斷減小;輻照時(shí)長(zhǎng)40 min樣品的色譜圖中出現(xiàn)損傷產(chǎn)物峰 (保留時(shí)間分別為12.0和20.4 min),隨著輻照時(shí)間的延長(zhǎng),DNA損傷產(chǎn)物峰面積呈先增加后減小的過(guò)程。

以8-OHdG為內(nèi)標(biāo)物,證明DNA損傷中間產(chǎn)物(保留時(shí)間為20.4 min)為8-OHdG。圖2 DNA損傷過(guò)程色譜譜圖(a)及DNA損傷及其損傷產(chǎn)物的動(dòng)力學(xué)曲線(b)

Fig.2 HPLC chromatogram of DNA damage (a) and kinetic curves of DNA damage and product (b)

1. 暗光激發(fā)TiO2催化體系DNA損傷動(dòng)力學(xué)曲線 (Kinetic curves of DNA damage under Dark/TiO2); 2. 單純紫外光輻照體系(Kinetic curves of DNA damage under UV); 3. 紫外光激發(fā)TiO2催化體系(Kinetic curves of DNA damage under UV/TiO2); 4: DNA損傷產(chǎn)物動(dòng)力學(xué)曲線(Kinetic curves of DNA damage product)。以DNA峰面積及其損傷產(chǎn)物8-OHdG峰面積對(duì)輻照時(shí)長(zhǎng)作圖,其動(dòng)力學(xué)變化曲線如圖2b所示。DNA氧化損傷程度為UV/TiO2>UV>Dark/TiO2。UV/TiO2體系DNA氧化損傷程度最大,輻照120 min DNA損傷99%,生成損傷產(chǎn)物8-OHdG濃度最高,其動(dòng)力學(xué)反應(yīng)常數(shù)為K=0.0165 min-1; 8-OHdG是先生成后消失的物質(zhì),是DNA氧化損傷的中間產(chǎn)物之一。pH值對(duì)TiO2表面態(tài)、界面電位和表面電荷及聚集性均有明顯影響,同時(shí)TiO2濃度也影響光催化效率(圖3)。從圖3a可見(jiàn),pH值近中性時(shí),光催化導(dǎo)致DNA損傷程度最大。由圖3b可見(jiàn),TiO2濃度為1.5 g/L時(shí),輻照時(shí)長(zhǎng)30 min DNA損傷30%,光催化對(duì)DNA損傷程度最大。實(shí)驗(yàn)表明,DNA濃度10 mg/L,TiO2 濃度1.5 g/L、pH 7~8時(shí),光催化反應(yīng)效率最高,DNA損傷嚴(yán)重。

圖3 底物pH (a)及TiO2濃度(b)對(duì)光催化引發(fā)DNA氧化損傷的影響?yīng)?/p>

Fig.3 Effect of pH (a) and TiO2 concentration (b) on DNA damage

3.2 DNA損傷過(guò)程氧化物種及H2O2相對(duì)濃度的分析

跟蹤DNA氧化損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度的變化(圖4a)。檢測(cè)紫外光催化體系產(chǎn)生的#8226;OH波譜信號(hào), 并比較不同體系產(chǎn)生#8226;OH相對(duì)強(qiáng)度變化的曲線(圖4b和圖4c)。

圖4 DNA氧化損傷過(guò)程H2O2相對(duì)濃度變化(a)、UV/TiO2體系DMPO-#8226;OH加合物的ESR波譜信號(hào)(b)及不同體系#8226;OH相對(duì)強(qiáng)度的比較(c)

Fig.4 Change of H2O2 concentration (a), electron spin resonance (ESR) signals of 5,5-dimethyl-1-pyrroline-N-oxide

(DMPO) -#8226;OH adducts for UV/TiO2 system (b) and comparison of DMPO-#8226;OH intensity under different systems (c)

由圖4a可知,UV和Dark/TiO2體系不產(chǎn)生H2O2,DNA無(wú)損傷。但體系中引入紫外光并且有催化劑時(shí),紫外光激發(fā)TiO2產(chǎn)生TiO2(e-),O2捕獲光生e-產(chǎn)生#8226;O-2自由基,#8226;O-2自由基與H+在光生e-作用下生成大量H2O2,反應(yīng)8 h處H2O2的濃度最大。伴隨輻照時(shí)間的延長(zhǎng),H2O2經(jīng)紫外光分解或被光生e-還原轉(zhuǎn)化為#8226;OH。使用ESR檢測(cè)不同體系產(chǎn)生的#8226;OH波譜信號(hào)。UV/TiO2輻照DNA的ESR譜圖有一個(gè)四重峰,其強(qiáng)度比為1∶2∶2∶1,表明有#8226;OH生成(圖4b),同等條件UV/TiO2催化產(chǎn)生的DMPO-#8226;OH加合物的ESR信號(hào)強(qiáng)度比單純UV體系產(chǎn)生的信號(hào)強(qiáng)度強(qiáng)(圖4c),且其特征信號(hào)峰強(qiáng)度具有逐漸減弱的趨勢(shì)。結(jié)果表明,UV/TiO2光催化作用介導(dǎo)產(chǎn)生大量的H2O2及#8226;OH,DNA氧化損傷涉及#8226;OH氧化歷程。

3.3 跟蹤DNA深度氧化歷程

通過(guò)跟蹤DNA氧化損傷過(guò)程化學(xué)需氧量(COD)的變化,評(píng)價(jià)DNA氧化損傷(礦化)的程度(圖5)。相對(duì)于Dark/TiO2體系而言,UV和UV/TiO2體系DNA的COD值都隨著輻照時(shí)間的增加而減少。 UV/TiO2輻照12 h DNA礦化率達(dá)83.37%,DNA的礦化程度高于單純UV輻照體系。結(jié)果表明,DNA損傷伴隨著深度氧化過(guò)程,最終氧化為CO2、H2O等小分子無(wú)機(jī)物。 圖5 DNA損傷過(guò)程化學(xué)需氧量的變化

Fig.5 Change of chemical oxygen demand in the process of DNA damage

3.4 羥基自由基引起的DNA氧化損傷作用機(jī)理

紫外光激發(fā)TiO2光催化作用產(chǎn)生具有強(qiáng)氧化能力的#8226;OH,#8226;OH誘導(dǎo)DNA氧化損傷。鳥(niǎo)嘌呤是#8226;OH攻擊DNA結(jié)構(gòu)氧化損傷的首要位點(diǎn), 8-OHdG是鳥(niǎo)嘌呤氧化損傷的特異產(chǎn)物。DNA損傷歷程:鳥(niǎo)嘌呤(結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖6)自身發(fā)生氧化反應(yīng), 轉(zhuǎn)移一個(gè)-H+, 轉(zhuǎn)化為鳥(niǎo)嘌呤基團(tuán),該基團(tuán)不穩(wěn)定,易與空氣中的氧與H+結(jié)合為ROOH,伴隨體系重排反應(yīng)生成8-氧脫氧鳥(niǎo)嘌呤(8-OdG)。紫外光激發(fā)TiO2介導(dǎo)產(chǎn)生#8226;OH,8-OdG在#8226;OH作用下氧化損傷生成8-羥基脫氧鳥(niǎo)苷8-OHdG,三者的結(jié)構(gòu)式如圖6所示。隨著光催化反應(yīng)的進(jìn)行,中間體8-OHdG在強(qiáng)氧化能力的氧化物種#8226;OH作用下深度氧化為CO2, H2O等小分子無(wú)機(jī)物。

圖6 鳥(niǎo)嘌呤及DNA損傷產(chǎn)物的結(jié)構(gòu)式

Fig.6 Structures of guanine and damage products in DNA damage process

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Damage of Deoxyribonucleic Acid Caused by Hydroxyl Radical

WANG Xiao-Xing1, FANG Yan-Fen1, YANG Jing1, CHEN Deng-Xia1, 

HUANG Ying-Ping1, ZHANG Ai-Qing2

1(Engineering Research Center of Eco-environment in Three Gorges Reservoir Region,

Ministry of Education, China Three Gorges University, Yichang 443002)

2(Key Laboratory of Catalysis and Materials Science of Hubei Province,

South-Central University for Nationalities, Wuhan 430074)

Abstract Oxidative damage characteristic of Herring Sperm DNA by hydroxyl radical (#8226;OH) which was excited by TiO2 under UV irradiation (200-275 nm, 66.4 Lx) was studied. The process of DNA damage was detected by gel electrophoresis and high performance liquid chromatographic analysis. Electron spin resonance (ESR) and spectrophotometry were used to determine the oxygen species and the relative concentration of H2O2, respectively. The mechanism of DNA damage was studied using 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine (8-OHdG) as an internal standard. The results showed that DNA can be damaged by #8226;OH generated from photocatalysis. Compared with UV or Dark/TiO2 system, the degree of DNA damage reached the maximum in the UV/TiO2 system under the condition of DNA concentration 10 mg/L, TiO2 concentration 1.5 g/L and pH 7-8. The damage was caused by the process of #8226;OH oxidation of TiO2 under UV irradiation and deep mineralization of DNA took place. Guanine was easy to damage than the other groups in DNA. 8-OHdG was one intermediate product of DNA damage and a special product of guanine damage.

Keywords Deoxyribonucleic acid damage; Hydroxyl radical; Photocatalysis; 8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine

(Received 13 November 2010; Accepted 7 January 2011)

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