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貼膏劑微生物限度檢查法研究

2010-06-01 12:22:12任安民由亞寧王小亮繩金房
中國藥業(yè) 2010年8期

任安民,由亞寧,王小亮,繩金房

(1.陜西省食品藥品檢驗(yàn)所,陜西 西安 710061; 2.西安交通大學(xué)藥學(xué)院,陜西 西安 710061)

貼膏劑包括橡膠膏劑、巴布膏劑(凝膠膏劑)和貼劑,是由藥材提取物、藥材或/和化學(xué)藥物與適宜的基質(zhì)和基材制成的,供皮膚貼敷,可產(chǎn)生局部或全身性作用的一類片狀外用制劑。2005年版《中國藥典》收載貼膏劑7種、貼劑2種。BP2007版、EP6.0版、USP30版及美國、歐洲和日本三方協(xié)調(diào)一致的藥品微生物限度檢測方法中,均對(duì)透皮貼劑規(guī)定了檢測方法和限度標(biāo)準(zhǔn)。BP2007版規(guī)定每貼不得檢出金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌和腸桿菌科與其他革蘭陰性菌,需氧菌(細(xì)菌與真菌)不得過5×102CFU;USP30版規(guī)定每貼不得檢出金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌,細(xì)菌數(shù)不得過2×102CFU,霉菌和酵母菌數(shù)不得過20 CFU(國外貼劑與中國貼劑規(guī)格、大小略有不同)。2005年版《中國藥典(二部)》[1]微生物限度檢查法引入驗(yàn)證理念,使得檢測結(jié)果更科學(xué)準(zhǔn)確。實(shí)際工作中,貼膏劑微生物限度標(biāo)準(zhǔn)中供試品溶液的制備方法不十分明確,不利于貼膏劑質(zhì)量控制。筆者參考文獻(xiàn)[2-3]對(duì)兩種市售貼膏劑微生物限度檢查方法進(jìn)行了方法學(xué)驗(yàn)證,報(bào)道如下。

1 試驗(yàn)材料

菌種:金黃色葡萄球菌(Staphylocous aureus)[CMCC(B)26 003],銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)[CMCC(B)10104],枯草芽孢桿菌(Bacillus subilis)[CMCC(B)63501],大腸埃希菌(Escherichia coli)[CMCC(B)44102],黑 曲 霉(Aspergillus niger)[CMCC(F)98003]。

稀釋液:pH=7.0的氯化鈉-蛋白胨緩沖液。

沖洗液:0.1%蛋白胨水溶液。

培養(yǎng)基:胰酪胨大豆肉湯培養(yǎng)基(批號(hào)為080121),沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(批號(hào)為080215),pH=7.0氯化鈉-蛋白胨(批號(hào)為080626),均由北京第三制藥廠生產(chǎn);胰酪胨大豆瓊脂培養(yǎng)基(批號(hào)為080324,北京陸橋技術(shù)有限責(zé)任公司)。

供試品:傷濕止痛貼膏(西安強(qiáng)生藥業(yè)有限公司,規(guī)格為7 cm×10 cm,批號(hào)為20080231);正傷消痛膏(西安千禾制藥有限公司,規(guī)格為7.6 cm×11 cm,批號(hào)為20080503)。

其他:無菌吸管、試管、器皿、鑷子、剪刀、集菌儀、集菌器、90 mm平皿、約為100 cm2滅菌玻璃板、振蕩器、約為80 cm2滅菌紗布等。

2 方法與結(jié)果

2.1 預(yù)試驗(yàn)

2.1.1 稀釋劑選擇

配制各種稀釋劑,即A液為pH=7.0的氯化鈉蛋白胨緩沖液,B液為A液+3%吐溫80+十四烷酸(B1為5%,B2為10%,B3為15%,B4為 20% ),C液為 A液+6%吐溫 80+十四烷酸(C1為5%,C2為10%,C3為15%,C4為20%),D液為A液+9%吐溫80+十四烷酸(D1為5%,D2為10%,D3為15%,D4為20% ),E液為A液+12%吐溫80+十四烷酸(E1為5%,E2為10%,E3為15%,E4為20%),F(xiàn)液為A液+十四烷酸(20%)。選用各稀釋液,分別采用振蕩法(振蕩30 min)與均質(zhì)器拍擊法對(duì)貼膏劑進(jìn)行供試液制備試驗(yàn),觀察其分散情況,以便選擇適合該供試品的稀釋劑。結(jié)果以A液為釋釋劑時(shí),供試液較澄清,便于取用,但膏劑之間相互粘連(可采用在黏膠層粘貼紗布消除),適用于常規(guī)法與薄膜法檢驗(yàn);以B液為稀釋劑時(shí),B1液部分分散,B4液分散較強(qiáng),B2液與B3液分散適中,供試液因有黏性,適用于常規(guī)法,但不適用于薄膜法檢驗(yàn);以C液(與B液基本相似)為稀釋劑時(shí),供試液比B供試液略顯黏、渾;以D液與E液(基本相似)為稀釋劑時(shí),供試液較黏稠,不便于吸取;以F液為稀釋劑時(shí),供試液略顯稀、渾,有明顯的油水分層,不便于檢驗(yàn)操作。因此選A液作為稀釋劑,采用在黏膠層粘貼紗布以消除相互粘連。

2.1.2 供試液制備方法

進(jìn)行了振蕩法(30 mm)與均質(zhì)器拍擊法(拍擊3,6,9 min)比較試驗(yàn)。拍擊法操作時(shí)間較短,但其無菌操作的安全性與簡便性卻不如振蕩法,且設(shè)備成本大于振蕩法。結(jié)果拍擊3 min時(shí),分散效果不太理想;拍擊6 min與9 min時(shí),會(huì)不同程度出現(xiàn)橡膠黏團(tuán)而影響供試液吸取。綜合考慮,選用振蕩法(30 min)。

2.1.3 取樣量選擇

取10貼(規(guī)格為7 cm×10 cm)溶于500 mL稀釋劑時(shí)根本無法振蕩,若采用容量大于500 mL的三角瓶,則使試驗(yàn)難度增加且不符合實(shí)際。取5貼(規(guī)格為7 cm×10 cm)溶于500 mL稀釋劑時(shí)振蕩效果尚可,但三角瓶會(huì)在振蕩器中擺動(dòng)而不安全;若取2貼溶于200 mL稀釋劑,由于各產(chǎn)品規(guī)格不同,不能按貼報(bào)告。若按100 cm2大小取貼劑,溶于100 mL稀釋劑,則適用于不同類型、規(guī)格的貼膏劑。因此采用按100 cm2大小取貼劑溶于100 mL稀釋劑的方法取樣,以10 cm2報(bào)告結(jié)果。

2.2 傷濕止痛貼膏微生物限度檢查

2.2.1 菌回收率測定

1)菌懸液制備

分別接種金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌和枯草芽孢桿菌的新鮮培養(yǎng)物至胰酪胨大豆肉湯培養(yǎng)基,于35℃培養(yǎng)24 h;分別接種白色念珠菌和黑曲霉的新鮮培養(yǎng)物至沙氏葡萄糖肉湯和沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基,于25℃分別培養(yǎng)3 d和7 d。將上述培養(yǎng)物均用pH=7.0的無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液制備成每1 mL所含菌數(shù)不大于100 CFU的菌懸液。

2)供試液制備

取傷濕止痛貼膏,置滅菌玻璃板上,將粘面朝上,以無菌操作揭除粘膠層,粘貼滅菌紗布,剪取大小約100 cm2的塊狀,溶于100 mL稀釋液中,振蕩30 min,作為1∶10的供試液。

3)常規(guī)法[4]

試驗(yàn)組:取1∶10供試液1 mL和試驗(yàn)菌50~100 CFU,采用常規(guī)法進(jìn)行細(xì)菌、霉菌和酵母菌菌數(shù)測定;供試品對(duì)照組:取1∶10供試液1 mL,按試驗(yàn)組方法(不加試驗(yàn)菌)測定供試品的本底菌菌數(shù);菌液組:依法測定所加的試驗(yàn)菌菌數(shù)。結(jié)果見表1。可見,金黃色葡萄球菌回收率低于70%,不可采用常規(guī)法;試驗(yàn)組霉菌和酵母菌的回收率均高于70%,可采用常規(guī)法。

表1 傷濕止痛貼膏常規(guī)法菌回收率測定結(jié)果(n=2)

4)薄膜過濾法

取1∶10的供試液10 mL,加入含50 mL稀釋液的薄膜過濾器中過濾,用沖洗液(100 mL/次)沖洗3次。在最后一次沖洗液中加入50~100 CFU試驗(yàn)菌,取出濾膜貼于已制備的培養(yǎng)基上,平行2皿,求其平均數(shù),測定其菌數(shù)。結(jié)果試驗(yàn)組、供試品對(duì)照組、菌液組金黃色葡萄球菌的菌數(shù)分別為73,0,79個(gè)/mL,回收率為92.40%,說明可采用薄膜過濾法(沖洗液100 mL/次,沖洗3次)對(duì)樣品進(jìn)行細(xì)菌菌數(shù)測定。

2.2.2 控制菌驗(yàn)證

試驗(yàn)組:取菌回收率測定項(xiàng)下供試液10 mL和金黃色葡萄球菌試驗(yàn)菌液1 mL,加入到100 mL營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,按金黃色葡萄球菌檢查法試驗(yàn);取菌回收率測定項(xiàng)下供試液10 mL和銅綠假單胞菌試驗(yàn)菌液1 mL,加入到100 mL膽鹽乳糖增菌培養(yǎng)基中,按銅綠假單胞菌檢查法試驗(yàn)。

陰性對(duì)照組:取菌回收率測定項(xiàng)下供試液10 mL和大腸埃希菌試驗(yàn)菌液1 mL,加入到100 mL營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基中,按金黃色葡萄球菌檢查法試驗(yàn);取菌回收率測定項(xiàng)下供試液10 mL和大腸埃希菌試驗(yàn)菌液1 mL,加入到100 mL膽鹽乳糖增菌培養(yǎng)基中,按銅綠假單胞菌檢查法試驗(yàn)。結(jié)果見表2。可見,試驗(yàn)組未檢出試驗(yàn)菌,陰性對(duì)照組未檢出陰性對(duì)照菌。

表2 傷濕止痛貼膏和正傷消痛膏控制菌驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果

2.3 正傷消痛膏微生物限度檢查

2.3.1 菌回收率測定

常規(guī)法:菌懸液制備及測定方法同2.2.1項(xiàng)下方法,結(jié)果見表 3。可見,金黃色葡萄球菌回收率低于70%,不可采用常規(guī)法;試驗(yàn)組霉菌和酵母菌的回收率均高于70%,可采用常規(guī)法。

表3 正傷止痛貼膏常規(guī)法菌回收率測定結(jié)果(n=2)

稀釋法:取1∶10的供試液1 mL,按0.5 mL/皿與0.2 mL/皿接種量,同時(shí)加入試驗(yàn)菌50~100 CFU,采用培養(yǎng)基稀釋法進(jìn)行金黃色葡萄球菌回收率測定,每組平行2份測定其菌數(shù)。結(jié)果金黃色葡萄球菌接種量為0.5 mL/皿時(shí),試驗(yàn)組、對(duì)照組、菌液組菌數(shù)分別為38,0,70個(gè)/mL,回收率為54.29%;接種量為0.2 mL/皿時(shí),試驗(yàn)組、供試品對(duì)照組、菌液組菌數(shù)分別為84,0,88個(gè)/mL,回收率為95.45%。可見,可采用稀釋法(0.2 mL/皿)對(duì)樣品進(jìn)行細(xì)菌數(shù)測定。

2.3.2 控制菌驗(yàn)證

驗(yàn)證方法同2.2.2項(xiàng)下方法,結(jié)果與傷濕止痛貼膏控制菌驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果相同(表2)。

3 討論

按2005年版《中國藥典(一部)》附錄微生物限度檢查法進(jìn)行檢驗(yàn),本品可采用培養(yǎng)基稀釋法(0.2 mL/皿)進(jìn)行細(xì)菌數(shù)檢查,采用常規(guī)法進(jìn)行霉菌和酵母菌數(shù)檢查,采用常規(guī)法進(jìn)行控制菌檢查。

因橡膠膏劑制備過程中常用溶劑有汽油、正己烷,材料為橡膠、松香、松香衍生物、凡士林、羊毛脂等,試驗(yàn)中不易找到可使背襯層與藥物貼庫層、粘膠層分離的適宜溶劑,故選用pH=7.0的無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液,通過振蕩可使大部分藥物貼庫層中可能存在的菌體沉降入水相中。驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果表明,各菌回收率均大于70%,方法可靠。巴布膏劑常用的材料有聚丙烯酸鈉、羧甲基纖維素鈉、明膠、甘油和微粉硅膠等親水性基質(zhì),制備過程用pH=7.0的無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液振蕩30 min,粘膠層迅速膨脹并有小碎片掉落,故考慮振蕩時(shí)間應(yīng)在30 min以內(nèi)。另外,巴布膏劑因系中藥熬制,若有抑菌作用,其供試液也可用稀釋法或薄膜法進(jìn)行驗(yàn)證。

藥典收載品種和非藥典收載品種的貼膏劑面積、規(guī)格不同,建議取樣量為100 cm2大小溶于100 mL稀釋液,結(jié)果以10 cm2為單位報(bào)告。若以每貼為單位報(bào)告,可取2貼溶于200 mL稀釋液,吸取10 mL,采用薄膜法過濾,取濾膜貼與相應(yīng)的培養(yǎng)基計(jì)數(shù)結(jié)果乘以10,即為每貼含菌量。另外,建議限度標(biāo)準(zhǔn)可規(guī)定每10 cm2中細(xì)菌數(shù)不得過100 CFU,霉菌數(shù)不得過10 CFU,不得檢出金黃色葡萄球菌和銅綠假單胞菌,也可折算后按每貼報(bào)告。

[1]國家藥典委員會(huì).中華人民共和國藥典(二部)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2005:93-101.

[2]任安民,李秋菲,繩金房,等.注射劑無菌檢查的方法學(xué)驗(yàn)證試驗(yàn)[J].西北藥學(xué)雜志,2009,24(1):51-52.

[3]李秋菲,唐振宏,徐長根,等.5中外用制劑微生物限度檢查法中菌落計(jì)數(shù)方法驗(yàn)證[J]. 中國藥業(yè),2008,17(22):39.

[4]應(yīng)國紅,鄧 穎,馮豐湊,等.外用制劑微生物限度檢查方法研究[J?.中國藥業(yè),2008,17(21):32-33.

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