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苯甲基磺酰氟對三鄰甲苯磷酸酯暴露母雞腦組織基因表達譜的影響

2010-01-29 03:17:33王祥虎樸豐源
大連醫科大學學報 2010年6期
關鍵詞:差異

王祥虎,樸豐源

(大連醫科大學 勞動衛生與環境衛生學教研室,遼寧 大連 116044)

一些有機磷化合物(OPs)可誘發遲發性神經毒性(OPIDN)。其病理特點是中樞神經及周圍神經軸突變性及脫髓鞘,以周圍神經長軸突損害為主。對OPIDN的發病機制,有不少假說,其中主要集中在Johnson[1]提出的“神經毒性酯酶學說”和Abou-Donia等[2]提出的“鈣穩態失衡學說”上,另有學者認為OPIDN是由T細胞介導的遲發變態反應。由于這些OPs既具有急性毒性又有OPIDN,使得在OP暴露早期階段,很難把由急性毒性和OPIDN作用各自引起的一些分子毒理學變化加以區分,給OPIDN本身的深入研究帶來了困難,OPIDN的發病機制到目前仍不清楚。

苯甲基磺酰氟(PMSF)是一種非有機磷化合物,在OPs暴露前給予時可防止誘發OPIDN,但對OPs的急性毒性不產生影響[3,4]。三鄰甲苯磷酸酯 (tri-ortho-cresyl phosphate,TOCP),屬有機磷類化合物,常作為經典的OPIDN誘發劑。本實驗根據PMSF這一特點,以雞為實驗對象,通過觀察PMSF干預對TOCP暴露雞大腦組織基因表達譜的影響,篩選與OPIDN相關的差異表達基因,為進一步研究OPIDN的發病機制提供靶基因信息譜。

1 材料和方法

1.1 主要試劑和設備

TOCP (化學純度>96%)、PMSF(苯甲基磺酰氟)、TRIzol試劑盒(Invitrogen公司);RNeasy Mini試劑盒(OIAGEN公司);DEPC-Water(Ambion公司); Gene ArrayTM掃描儀3000 (Affymetrix公司)、基因芯片雜交箱640(Affymetrix公司)、Microarray Suite Version 5.0分析軟件(Affymetrix公司)。其他試劑均為分析純試劑。

1.2 實驗動物處理

羅曼鶴母雞12只,10月齡,體重1.5~2.0 kg,由大連市韓偉養雞場提供。適應性飼養1周后隨機分為3組,即對照組、TOCP組和PMSF前干預組,每組4只。所有實驗雞均在給藥前15 min給予阿托品(10 mg/kg,皮下注射)以防止急性膽堿能中毒。TOCP組一次性灌胃給予TOCP (1000 mg/kg), PMSF前干預組先皮下注射PMSF (40 mg/kg),再一次性灌胃給予TOCP (1000 mg/kg),對照組一次性灌胃給予生理鹽水(1000 mg/kg)。給藥后每天檢查實驗雞的變化及運動功能,第5天將動物麻醉放血處死,并立即取腦組織儲存于RNA later儲存液中,-80℃冰箱保存備用。

1.3 基因芯片

1.3.1 總RNA的提取:將樣品按不同處理方式(對照、TOCP和PMSF前干預組)分成3個樣品,分別在液氮中進行研磨至粉末狀,待液氮揮發干,按照TRIzol試劑盒的操作說明從腦組織中提取總RNA。

1.3.2 定量和檢測總RNA:用紫外分光光度計檢測 RNA的產量,在260 nm處的吸光度(A),1 A=40 μg/mL。根據在 260 nm和280 nm處的吸光值,檢測RNA的純度,純RNA的A260/A280比值應接近2.0 (比值最好在 1.9~2.1 之間)。再用變性膠電泳質檢測RNA是否有降解。

1.3.3 純化總RNA:將總 RNA的體積用 RNase-free 的水調整到 100 μL,加入 350 μL RLT工作液充分混勻。加入 250 μL無水乙醇,充分混勻(不要離心)。將混好的 700 μL樣品加到 QIAGEN純化柱中,>8000 r/min,離心 15 s。棄濾液,加入 500 μL RPE工作液(1份 RPE 加入4 份無水乙醇混勻而成),>8000 r/min,離心 2 min。將純化柱放入1個新的收集管,12000 r/min,離心 1 min。將純化柱換入1個 EP 管中,在純化柱膜中間加 25 μL RNase-free 的水,室溫放置 1 min,12000 r/min,離心 1 min。將 EP管中的樣品移入1個新的 EP管中。

1.3.4 基因芯片雜交:將提取的RNA反轉錄成cDNA。用RNA轉錄標記試劑盒進行體外轉錄合成cRNA探針,合成的同時進行生物素標記;生物素標記的cRNA探針經片段化處理后與Chick Genome 430 2.0 Araay基因芯片在雜交箱640中45%雜交16 h,然后于全自動芯片洗滌工作站450中洗脫、染色;最后用Gene Array TM掃描儀3000掃描雜交信號。

1.4 基因芯片數據處理和生物學信息分析

雜交結果用 Microarray Suite Version 5.0軟件進行分析。在對單個樣本表達分析的前提下,根據P<0.04為表達,0.04~0.06為臨界,P>0.06為不表達,分別建立對照組、TOCP組和PMSF前干預組大腦皮質全基因表達譜;然后將基因表達譜進行兩兩比較,表達差異倍數 >2為表達上調,表達差異倍數<-2為表達下調,篩選得到基因探針號輸入NetAffy網站 (www.affmetrix.con)中進行批量處理查詢(Batch Query),查詢出對應的基因和生物學信息。

2 結 果

2.1 TOCP暴露雞腦組織中差異表達基因

TOCP暴露雞腦組織中的差異表達基因數量見圖1。與對照組比較,TOCP組雞腦組織中共有462個基因差異表達有顯著性意義,其中上調基因261個和下調基因201個。

圖1 TOCP暴露雞腦組織差異表達基因結果Fig 1 Result of the differentially expressed genes in the brain tissue of TOCP-treated hensA組:與對照組比較,TOCP暴露組雞腦組織中表達差異有顯著性意義的基因總數; B組:與對照組比較,TOCP暴露組雞腦組織中表達有顯著上調的基因數; C組:與對照組比較,TOCP暴露組雞腦組織中表達有顯著下調的基因數

2.2 TOCP暴露雞腦組織中OPIDN相關差異表達基因

如圖2所示,從 TOCP組雞腦組織中共篩選出與對照組比較表達差異有顯著性意義而與PMSF前干預組比較差異無顯著性意義的基因311個,其中包括上調基因171個和下調基因140個。

圖2 TOCP暴露雞腦組織OPIDN相關差異表達基因結果Fig 2 Result of the differentially expressed genes related OPIDN in the brain tissue of TOCP-treated hensA組:TOCP組中與對照組比較表達差異顯著而與PMSF前干預組比較差異無顯著性意義基因總數; B組:TOCP組中與對照組比較表達顯著上調而與PMSF前干預組比較差異無顯著性意義基因數;C組:TOCP組中與對照組比較表達顯著下調而與PMSF前干預組比較差異無顯著性意義基因數

對TOCP組雞腦組織中與對照組比較差異表達3倍以上,且在PMSF前干預組無差異表達的基因,作為OPIDN密切相關基因,共篩選36個。其中與對照組比較表達上調的基因有17個(表1),主要包括離子跨膜轉運、細胞骨架、神經信號轉導等相關功能蛋白基因。與對照組比較表達下調的基因有19個(表2),主要包括細胞凋亡、Ca2+轉運、細胞骨架、細胞代謝等相關功能蛋白基因。

表1 OPIDN密切相關上調基因Tab 1 The up-regulated genes closely related to OPIDN

3 討 論

一些OPs同時具有急性毒性和OPIDN[6-8],使得在OPs暴露早期階段,很難把由急性毒性和OPIDN各自誘發所引起的一些基因或蛋白的差異表達變化加以鑒別,給OPIDN本身的深入研究帶來了困難。而PMSF在OPs暴露前給予時,可防止OPs誘發OPIDN,但對OPs的急性毒性不具有拮抗作用[3,4]。利用PMSF這一特點,通過PMSF干預可從OPs暴露動物模型的神經組織中篩選OPIDN相關差異表達基因線索。

表2 OPIDN密切相關下調基因Tab 2 The down-regulated genes closely related to OPIDN

本研究結果顯示,在TOCP暴露組雞腦組織基因表達譜38535個轉錄本中,共篩出與對照組比較有顯著差異表達的基因462個,可能與急性毒性或OPIDN或兩者相關。在這些基因中,與對照組比較表達差異有顯著性意義且與PMSF前干預組差異無顯著性意義的匹配基因有311個,可能與誘發OPIDN有關。尤其與對照組比較差異表達3倍以上,且在PMSF前干預組無差異表達的基因,共篩選36個,可能與誘發OPIDN密切相關。其中上調基因17個和下調基因19個,主要包括離子跨膜轉運、細胞骨架、神經信號轉導、細胞凋亡、Ca2+轉運、細胞代謝等相關功能蛋白基因。這些基因中一些基因的功能蛋白已引起部分學者的關注。文獻報道,TOCP暴露組雞腦組織微管相關蛋白2(MAP2)含量顯著增高,認為這種改變可能與遲發性神經毒性誘發有關[4,5]。王英鵬等[9]發現,在雞OPIDN 發病過程中出現腰髓前角神經元細胞凋亡現象,認為細胞凋亡可能在OPIDN 發病機制中起重要作用。從本研究基因芯片結果中發現,與上述文獻結果相關聯的基因都出現明顯的差異表達,進一步從基因水平證實了上述文獻的結果。

通過PMSF干預,從TOCP暴露雞腦組織中篩選出可能與OPIDN誘發相關的基因信息譜,今后應對這些基因進一步從蛋白水平加以驗證,并深入探索與OPIDN誘發之間的關聯性。

[1] Johnson MK.The delayed neurotoxic effect of some organophosphorous compounds.Identification of the phosphorylation site as an esterase [J].Biochem J,1969,114(4):711-717.

[2] Abou-Donia MB,Lapadula DM.Mechanisms of organophosphorus ester-induced delayed neurotoxicity:type Ⅰ and type Ⅱ[J].Annu Rev Pharmacol Toxicol,1990,30:405-440.

[3] 樸豐源.苯甲基磺酰氟對有機磷化合物誘導的遲發性神經毒性的影響[J].大連醫科大學學報,2009,31 (2):123-127.

[4] 韓曉英,程東,趙秀蘭,等.TOCP誘發OPIDN后雞神經組織MAP2的變化[J].毒理學雜志,2005,19(1):23-25.

[5] Chang PA,Sun Q,Ni XM,et al.Molecular cloning and expression analysis of cDNA ends of chicken neuropathy target esterase[J].Chemico Biol Interact,2008,172(1):54-62.

[6] 呂飛燕,樸豐源,呂虹.三鄰甲苯磷酸酯暴露雞大腦總蛋白雙向電泳圖譜差異表達分析[J].癌變 畸變 突變,2010,22(3):202-205.

[7] 辛星,裴晶晶,曾濤,等.磷酸三鄰甲苯酯對母雞神經組織線粒體膜通透性的影響[J].環境與健康雜志,2009,26(8):684-686.

[8] Piao F,Ma N,Yamamoto H,et al.Effect of prednisolone and complex of vitamin B1,B2,B6 and B12 on organophosphorus compound-induced neurotoxicity[J].J Occup Health,2004,46(5):359-364.

[9] 王英鵬,宋俊峰,饒志仁,等.三磷酸甲酯中毒致母雞脊髓神經元凋亡的研究[J].中華勞動衛生職業病雜志,2004,22(1):19-21.

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