犢牛腹瀉病原菌耐藥性監測及微生態制劑治療效果評價

新生牛群的腹瀉問題高發，影響到犢牛的成活率。養殖戶使用抗生素治療導致犢牛腹瀉的病原菌耐藥性快速演變，引發多重耐藥菌株流行。因此當地的養殖戶使用微生態制劑調節犢牛的腸道菌群平衡，增強犢牛腸道黏膜的免疫機制。

1病例分析

本文的研究納入光明牧場的240頭腹瀉犢牛，犢牛的日齡集中于5～30日齡，犢牛的腹瀉臨床表現以水樣糞便為主并伴發中度的脫水。所有的病例經過獸醫臨床檢查與實驗室檢測確診，排除犢牛感染寄生蟲病的概率。依據特牛的病程嚴重程度分為輕度、中度、重度三組，占犢牛病例總數的 35% ， 50% 、 15% 。實驗室的犢牛腹瀉病原菌分離結果顯示大腸埃希菌檢出率達 68.3% ，產氣莢膜梭菌占 23.8% 混合感染病例占比 12.5%^[1]

2臨床癥狀

所有特牛的患病初期表現為精神沉郁、食欲減退，排出黃綠色稀糞。犢牛所排出的糞便惡臭并含未消化的乳塊。隨著犢牛腹瀉病后續發展，中度的特牛病例出現肛周紅腫、被毛粗亂，重度病例的犢牛體溫快速升高、眼球呈現凹陷的脫水體征。部分病例因為自身的腸道屏障破壞繼發菌血癥，產生全身性感染癥狀導致犢牛死亡。

3病理變化

研究人員剖檢病死的牛犢，發現犢牛的小腸黏膜充血水腫，腸系膜淋巴結腫大。犢牛的腸內容物呈黃綠色水樣，顯微鏡下觀察腸黏膜上皮細胞脫落，隱窩細胞增生，固有層淋巴細胞浸潤2。犢牛的腸絨毛萎縮，杯狀細胞數量減少，腸道屏障功能受損。

4診斷

研究人員在采集犢牛的糞便樣本時要遵循無菌操作原則，使用滅菌棉簽深入犢牛的直腸獲取新鮮的糞便樣本。糞便樣本處理包含直接涂片鏡檢與細菌分離培養兩項技術，直接涂片利用革蘭氏染色技術能初步判斷病原菌的形態與數量，當發現革蘭氏陰性短桿菌時需要立即啟動針對性的培養程序。細菌分離培養則需要養殖人員根據犢牛腹瀉的病原特性選擇培養基，大腸埃希菌培養采用麥康凱瓊脂，產氣莢膜梭菌培養選用硫化氫培養基，研究人員將培養箱的溫度設定為37 C ，細菌的培養時間控制在 18～24h 特牛的腹瀉病原菌鑒定要結合生化試驗與分子生物學技術，生化試驗重點檢測菌株對葡萄糖、乳糖的發酵能力及吲哚、硫化氫產生情況，將其初步區分大腸埃希菌與產氣莢膜梭菌。對于生化特征不典型的菌株，研究人員采用PCR技術完成基因型鑒定，設計特異性引物擴增16SrDNA基因序列確定菌種歸屬。特牛的藥敏試驗采用K-B法，研究人員選擇養殖場常用的抗生素制作藥敏試片，如頭孢類、氟喹諾酮類、氨基糖昔類等12種藥物。抑菌圈的直徑測量使用電子游標卡尺，結果判定參照臨床實驗室標準化協會標準，當抑菌圈直徑小于臨界值時判定為耐藥。采用酶聯免疫吸附試驗檢測犢牛糞便中的大腸埃希菌K99菌毛抗原與產氣莢膜梭菌 ∝ 毒素，當犢牛的糞便樣本吸光度值超過陰性對照2.1倍時判定為陽性。犢牛的血清學檢測結果要結合續牛的臨床表現綜合分析，避免出現單一指標誤診問題3]。

若當地養殖場發生犢牛暴發腹瀉病例且致死率較高時，研究人員實施剖檢并采集犢牛的腸道組織樣本。采用10% 中性緩沖福爾馬林溶液固定組織，常規石蠟包埋后制作4厚切片，使用蘇木精一伊紅染色后進行顯微鏡觀察。犢牛腸道組織的病理變化描述包含了犢牛腸道黏膜完整性、炎癥細胞浸潤類型與程度、腺體結構改變等因素。

5治療方法

針對已經確診為細菌感染的犢牛病例，推薦獸醫使用頭孢噻呋鈉注射液，該藥物對大腸埃希菌、產氣莢膜梭菌等常見病原菌具有廣譜抗菌活性，采用5mg/kg體重的給藥標準，每日對犢牛肌肉注射一次，療程控制在3d以內。若犢牛的病原菌培養結果顯示對頭孢菌素耐藥，獸醫還可以選用氨芐西林鈉舒巴坦鈉復合制劑，氨芐西林鈉舒巴坦鈉復合制劑內的 β -內酰胺酶抑制劑成分能對抗產ESBLs菌株。

犢牛因腹瀉原因會出現脫水問題，犢牛的補液治療優先選擇口服補液鹽溶液，溶液的配方包含了氯化鈉、氯化鉀、碳酸氫鈉與葡萄糖成分。若犢牛出現輕度的脫水病例，每小時的飼喂量控制在特牛體重的 12% ，養殖戶使用帶刻度的飼喂器確保劑量精準，特牛中重度脫水病例需要建立靜脈通道，選擇復方氯化鈉注射液與 5% 葡萄糖注射液完成比例混合輸注。在犢牛的患病期間需要暫停全乳飼喂，改用酸化乳替代品，養殖戶添加檸檬酸將酸化乳替代品的pH值調控至 4.5～5.0 ，激活特牛的胃蛋白酶活性。酸化乳需加熱至38℃后飼喂，首日的飼喂量控制在正常量的 50% 此后每日遞增 25% ，直至第7天恢復常規飼喂量。

獸醫使用微生態制劑調控犢牛的腸道微環境，用微生態制劑的菌株間具有協同定植能力。制劑活性需通過低溫冷鏈運輸與儲存保障，使用前以40℃以下溫水活化，避免高溫導致微生態制劑內部的菌體失活。在犢牛飼喂時間應與抗生素用藥間隔4h以上，防止抗菌藥物殺滅有益菌群。搭配黏膜保護劑，如獸醫使用蒙脫石散空腹飼喂，使用前與適量的生理鹽水混合制成混懸液，結合帶有軟管的飼喂器緩慢注入特牛的口腔。藥用炭制劑選擇顆粒度200目以上的產品，與微生態制劑間隔2h使用，避免吸附活性菌體。針對特牛的治療效果要建立多維評價體系，判定的臨床指標包含了犢牛的排便頻率、糞便性狀、脫水程度等參數，當犢牛的排便頻率降至3次/d以下、糞便含水量低于 75% 、眼窩凹陷度小于0.2cm時獸醫可以判定犢牛腹瀉的臨床癥狀緩解。

6預防措施

犢牛的病原監測要求養殖場建立常態化的監測機制，相關技術人員要定期采集牛只產房環境樣本，開展細菌分離培養與牛病毒耐藥性追蹤。養殖戶在檢測到特定菌株耐藥率突破臨界值時立即啟動應急預案，調整針對犢牛的用藥方案，強化養殖場消毒程序。妊娠期母牛的產房需要執行全進全出制度，每批次犢牛轉群后要進行徹底清洗消毒。養殖人員使用的接產工具必須使用高壓蒸汽滅菌處理，母牛產道擦拭要使用無菌生理鹽水浸潤紗布。在孕牛妊娠的后期需要養殖人員實施精準的營養調控，在母牛的日糧中蛋白質水平需要控制在 15% 左右，避免母牛攝入過高蛋白導致牛初乳中免疫球蛋白G分子改變。母牛的維生素A與維生素E補充需要遵循階段性方案，母牛的產前60d養殖戶每日額外添加2萬IU維生素A及1000IU維生素E，提升母牛初乳中的特異性抗體含量。犢牛出生后需在1h內飼喂初乳，研究人員使用初乳質量檢測儀，確保母牛初乳中的IgG含量 ≥50g/L 。養殖戶針對弱胎犢牛采用胃管灌服方式確保續牛攝入充足的免疫物質，但要嚴格控制牛初乳的灌服速度。

養殖戶的牛群飼養密度在冬季保溫階段，每頭犢牛的占地面積不應低于 4m² ，在夏季的通風期需要適當增加至6m² 。牛的墊料推薦使用稻殼與木屑混合墊料，此種墊料的吸水性與緩沖性能優于單一材質。養殖場采用16h光照與8h黑暗交替的模式，光照的強度維持在 150～200lux 牛的飼料儲存間需要保持干燥通風，定期檢測飼料中的黃曲霉毒素B含量。牛的飲水系統安裝水線清潔裝置，每周完成酸性電解水沖洗，將水的pH值維持在 3.5～4.0 特牛的人工哺乳奶瓶與奶嘴需要采用82 °C 熱水循環沖洗 10min ，輔以季銨鹽類消毒劑浸泡。當地的獸醫部門為犢牛建立腹瀉預警體系，主要判斷指標為犢牛的排便頻率超過4次/h、糞便含水量突破 85% 、犢牛的眼窩凹陷度達 0.5cm 以上。任意兩項指標達標時養殖戶要立即啟動干預程序，對犢牛使用葡萄糖-電解質復合配方，每小時飼喂量控制在犢牛體重的2% ，搭配枯草芽孢桿菌與屎腸球菌的復合制劑，飼喂的水溫不得超過 40‰ 。

結語

本文證實了犢牛腹瀉病原菌耐藥性呈現上升趨勢，養殖戶使用的傳統抗生素有療效下降的問題，且會誘發養殖場周圍生態風險。使用微生態制劑恢復犢牛腸道菌群的穩態，改善特牛腹瀉臨床癥狀，有效預防犢牛腹瀉復發。但微生態制劑的治療效果與菌株的活性、制劑工藝密切相關。

參考文獻：

[1]馬澤豪，王純潔，敖日格樂，等.犢牛腹瀉的病因及中草藥治療研究進展[J].飼料研究，2024，47（7）：121-125.

[2] 馬忠，馬燕玲，張繼維，等.甘肅某牛場隱孢子蟲引起犢牛腹瀉的蟲種鑒定及亞型分析[J].中國動物傳染病學報，2024，32（3）：164-172.

[3] 羅鵬飛，夏俊，張凌，等.特牛腹瀉病因分析及診斷防控綜述[J].草食家畜，2023（5）：30-38.

收稿日期：2025-05-27

作者簡介：王標（1982—），男，漢族，本科，執業獸醫師。研究方向：奶牛養殖技術。