古威芹 李晨曦 陳小紅 蘇麗萍 鄭亞杰



【摘要】目的探求O6甲基鳥嘌呤DNA甲基轉移酶(MGMT)啟動子甲基化對新發野生型膠質母細胞瘤(GBM)患者術后預后質量的影響。方法回顧性分析2019年1月—2022年12月在新疆醫科大學第一附屬醫院神經外科新診斷的41例異檸檬酸脫氫酶(IDH)野生型GBM患者的臨床資料,通過焦磷酸測序評估GBM患者的MGMT啟動子甲基化狀態,同時分析與患者預后質量的相關性。結果所有患者的MGMT啟動子甲基化發生率為43%。MGMT啟動子甲基化的患者中位生存期明顯長于未甲基化患者(P<0.05),甲基化患者的總生存期也明顯長于未甲基化患者(P<0.05)。結論MGMT啟動子甲基化可延長IDH野生型GBM患者術后放化療后生存期,但未見線性關系,提示MGMT啟動子甲基化對預后的影響程度可能不同。
【關鍵詞】膠質母細胞瘤;MGMT;甲基化;烷化治療;焦磷酸測序
【中圖分類號】R739.41【文獻標志碼】A【文章編號】16727770(2024)02018205
Prognostic role of MGMT promoter methylation in emerging wildtype glioblastoma patients undergoing chemoradiotherapy GU Weiqin, LI Chenxi, CHEN Xiaohong, et al. Second Department of Neurosurgery, the First Affiliated Hospital of Xinjiang Medical University, Urumqi 830054, China
Corresponding author: LI Chenxi
Abstract: ObjectiveTo explore the O6methylguanine DNA methyltransferase(MGMT) promoter methylation on the quality of postoperative prognosis in patients with new wildtype glioblastoma(GBM). MethodsThe clinical data of 41 patients with wildtype GBM isocitrate dehydrogenase(IDH) newly diagnosed in Department of Neurosurgery, the First Affiliated Hospital of Xinjiang Medical University from 2019 to 2022 were analyzed retrospectively. MGMT promoter methylation status was assessed in GBM patients by pyrosequencing, while simultaneously analyzed for correlation with patient outcome quality. ResultsThe incidence of MGMT promoter methylation in all patients was 43%. Patients with MGMT methylated promoters had significantly higher median survival than unmethylated patients(P<0.05), and overall survival was significantly longer than unmethylated patients(P<0.05). ConclusionMGMT promoter methylation can prolong the survival after postoperative chemoradiotherapy in patients with IDH wildtype GBM, but no linear relationship is observed, which suggesting that the effect of MGMT promoter methylation on prognosis may be different.
Key words: glioblastoma; MGMT; methylation; alkylation therapy; pyrosequencing
基金項目:國家自然科學基金資助項目(82360256)
作者單位:830054 烏魯木齊,新疆醫科大學第一附屬醫院神經外二科(古威芹,陳小紅),病理科(蘇麗萍);新疆醫科大學第一附屬醫院(附屬口腔醫院)口腔頜面腫瘤外科,新疆維吾爾自治區口腔醫學研究所(李晨曦);華中科技大學同濟醫學院附屬協和醫院,口腔頜面發育與再生湖北省重點實驗室(李晨曦);漢堡埃彭多夫大學醫學中心腫瘤遺傳學和再生醫學實驗室神經內科(鄭亞杰)
通信作者:李晨曦
膠質母細胞瘤(glioblastoma multiforme,GBM)是最常見的原發性惡性腦腫瘤類型[1],患者一般以頭痛、癲癇為首發癥狀,隨后可出現運動和/或感覺神經功能障礙等表現。現階段,最大程度安全手術切除以及隨后同步放療和替莫唑胺(temozolomide,TMZ)維持化療(STUPP方案)是新診斷GBM患者標準治療方案[2],然而臨床數據顯示,此類患者經治療后中位總生存期僅為15~18個月[34],5年生存率不到7%[5]。O6甲基鳥嘌呤DNA 甲基轉移酶[O6methylguanine(O6MeG)DNA methyltransferase,MGMT]是一種DNA修復蛋白,可催化甲基從O6位的鳥嘌呤DNA核苷酸轉移到其自身145位的半胱氨酸殘基,并發揮修復作用,在維持基因組的完整性以及修復DNA復制和轉錄過程中的差異和錯誤方面發揮著重要作用[6],同時這種修復機制防止了由于烷化劑導致的細胞死亡、基因突變和腫瘤轉化。CpG島主要位于基因的啟動子和外顯子區域,正常細胞的CpG島處于非甲基化狀態。MGMT啟動子的甲基化導致基因沉默,降低MGMT蛋白表達和其DNA修復活性,增加腫瘤對烷化劑(如TMZ)的敏感性[78]。Hegi等[9]研究證明,MGMT啟動子甲基化可以預測TMZ的療效。研究發現,CpG 8487和89對MGMT蛋白表達的影響最大,與之相反,CpG 7381的分析與MGMT蛋白表達的相關性最好[10]。然而,CpG 7489區域的平均甲基化與GBM患者的中位生存時間顯著相關[1113]。本研究回顧性分析了2019年1月—2022年12月在新疆醫科大學第一附屬醫院神經外科新診斷的41例異檸檬酸脫氫酶isocitrate dehydrogenase,IDH)野生型GBM患者的臨床資料,旨在評估MGMT啟動子甲基化在接受放化療的新診斷野生型GBM患者的預后意義及其與臨床變量的關聯?,F報告如下。
1資料與方法
1.1一般資料共納入41例通過焦磷酸測序(pyrosequencing,PSQ)評估MGMT啟動子甲基化狀態的連續IDH野生型GBM患者,其中男32例,女9例;年齡49~81歲,平均年齡(53.06±12.92)歲。PSQ方法檢測了75~84個CpG位點的MGMT基因啟動子。納入標準:(1)經組織病理學證實的GBM診斷(根據WHO 2007年和2016年);(2)美國東部腫瘤協作組(eastern cooperative oncology group,ECOG)的體力狀況評分(performance status,PS)≤2后開始腫瘤治療;(3)以TMZ作為一線治療的放化療。排除標準:(1)植入卡莫司汀晶片(Gliadel)的患者;(2)患有IDH 12突變腫瘤的患者,以避免干擾對該特定患者群體的結果評估。所有患者均為新診斷GBM患者,根據STUPP方案,所有患者均接受術后同步放療和TMZ治療,同時根據有否MGMT啟動子甲基化分為甲基化組(18例)和未甲基化組(23例)。本研究已通過新疆醫科大學第一附屬醫院倫理委員會審查批準(審批號:K2022022585)。
1.2組織樣本提取每個組織樣本提供10 μm的石蠟包埋腫瘤組織切片并進行處理以分離DNA。為了避免壞死組織的污染,通過顯微解剖,選擇至少有60%的腫瘤細胞組織樣本。
1.3DNA甲基化水平檢測采用PSQ方法測定GBM組織DNA樣本中MGMT基因啟動子甲基化的程度,其中DNA樣本按照試劑說明書使用QIAamp DNA Mini Kit(Qiagen, Hilden, Germany) 提取,測序選用PyroMark Q24型(QIAGEN Lmt.Co.,Germany)焦磷酸測序儀進行分析,基本流程:組織DNA樣本提取→亞硫酸氫鹽處理→DNA樣本純化→聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction,PCR)擴增→凝膠電泳→焦磷酸測序。使用Nanodrop機器(Thermo Scientific,Rockford,IL,USA)通過分光光度法評估DNA質量和濃度。根據試劑說明書,將250 ng的基因組DNA置于MGMT Plus亞硫酸氫鹽轉化試劑盒(Diatech,Iesi,Italy)中。用亞硫酸氫鹽處理DNA,以確定10個CpG位點(CpG 7584)的甲基化狀態。PSQ的模板通過Rotorgene 6000用針對模板鏈(MGMT Plus Kit,Diatech,Iesi,Italy)生物素化的引物進行擴增。然后將20 μL生物素化PCR產物固定在鏈霉親和素包被的瓊脂糖珠(GE Healthcare,Uppsala,Sweden)上,并使用PyroMark Q96系統(Diatech,Iesi,Italy)分析單鏈DNA模板。使用PyroMark Q96 配套軟件對分析的10個CpG甲基化密度進行量化,并通過計算所有10個甲基化位點的平均值,獲得每個樣品的甲基化百分比。樣品一式兩份運行。
1.4PCR擴增模板選擇為經甲基化處理的DNA,選用特異甲基化引物MF/MR和未甲基化引物UF/UR進行PCR擴增,見表1。擴增條件:首先95 ℃預變性10 min,95 ℃處理30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃擴增30 s,以上條件進行35個循環,隨后在72 ℃條件下延伸5 min。將擴增產物于2.5%瓊脂糖凝膠進行電泳分離,采用紫外凝膠成像進行結果觀察。分離條帶中非甲基化條帶出現擴增而甲基化條帶未擴增提示甲基化陰性,反之則為甲基化陽性。
1.5手術后輔助治療方案及隨訪調查新診斷GBM患者標準治療方案即STUPP方案,包括最大程度安全手術切除及術后整個放射治療期間使用75 mg/m2的TMZ進行化療,每28天單獨使用150~200 mg/m2的TMZ持續化療5 d。手術后每半年進行1次隨訪,記錄患者的生存狀態,總生存期(overall survival,OS)是指從手術日期到死亡或最后一次隨訪的日期。
1.6統計學分析使用SPSS 25.0統計學軟件進行統計分析。均數±標準差(x±s),中位數[四分位數間距(interquartile range,IQR)]分別用于描述正態分布和非正態分布的數據。使用KaplanMeier法繪制生存曲線,并應用分段分析的Logrank檢驗來評估生存差異。計數資料采用例數(率)進行描述,組間比較采用χ2檢驗,統計效應值可信度使用95%置信區間(confidence interval,CI)表示,以P<0.05被認為具有統計學意義。
2結果
2.1兩組患者的一般資料比較甲基化組與未甲基化組患者的年齡、性別、腫瘤體積、手術切除范圍(全切、次全切)、術前卡氏評分(Karnofsky performance status,KPS)、美國麻醉師協會(American society of anesthesiologists,ASA)評分和累及部位(額葉、顳葉、頂葉、枕葉、多部位)等基本資料比較,差異均無統計學意義(P>0.05),見表2。
2.2MGMT甲基化組與未甲基化組患者的OS比較MGMT甲基化組患者的中位OS為504 d,未甲基化組患者的中位OS為329 d,MGMT甲基化組明顯長于未甲基化組(P<0.05),見圖1。
2.3GBM患者生存時間與MGMT啟動子甲基化和腫瘤切除范圍的相關性在接受全切術的26例患者中,11例(42.3%)發生MGMT啟動子甲基化。全切術后,甲基化患者的中位OS為551 d,而未發生甲基化患者的中位OS為321 d。在接受次全切除術的患者中,有7例患者具有甲基化的MGMT啟動子,中位OS為376.5 d,而8例具有未甲基化MGMT啟動子的患者,中位OS為260 d,MGMT甲基化組明顯長于未甲基化組(P<0.05),見圖2。
2.4GBM患者生存時間與MGMT甲基化和腫瘤大小相關性腫瘤體積≤32 mm3的21例患者中,10例(47.6%)發生MGMT甲基化,11例沒有甲基化。MGMT甲基化的患者具有明顯更長的中位OS(560.5 d vs 329 d,P<0.05)。在腫瘤體積>32 mm3的患者中,MGMT甲基化和非甲基化患者的存活率并沒有顯著差異(P>0.05),見圖3。
3討論
TMZ是一種新型的口服烷化劑化療藥物,具有抗癌活性廣和血腦屏障穿透力強等優勢,是GBM的重要化療藥物,但臨床數據顯示,約有半數GBM患者對TMZ耐藥,其中相關靶基因啟動子甲基化修飾引起基因沉默或激活起著重要作用,同時也是提高GBM化療療效的新方向[1415]。MGMT基因定位于人10號染色體長臂,其功能是將鳥嘌呤O6位點的甲基轉移至半胱氨酸殘基來修復受損的鳥嘌呤核苷酸,實現DNA修復目的,降低烷基化劑所致基因突變、細胞死亡以及腫瘤發生風險,因此常被視作為化療抗性因子。研究表明,MGMT基因表達調控主要以表觀遺傳修飾為主,表現為MGMT啟動子的CpG島甲基化修飾,而發生基因突變、缺失及重排的概率較低,啟動子的甲基化可導致MGMT轉錄和蛋白表達沉默,影響細胞DNA修復活性從而增強烷化劑(如TMZ)敏感性。MGMT基因啟動子包含98個位于轉錄起始位點附近的CpG位點,由2個不同的甲基化區域組成,即CpG 2550和7390[16]。CpG甲基化的情況下,基因的轉錄受阻導致轉錄和蛋白質的酶活性喪失。
正確選擇分析MGMT基因啟動子甲基化狀態的方法對于不同CpG位點的甲基化異質性至關重要。雖然CpG 8487和89對MGMT蛋白表達的影響最大,但CpG 7381的分析與MGMT蛋白表達的相關性最好[17]。然而,也有研究表明,CpG 7489區域的甲基化與GBM患者的中位OS顯著相關。而本研究中,通過分析75~84個MGMT CpG位點,結果符合之前報道的CpG最佳區域[18]。與生存相關的MGMT啟動子甲基化缺失的確定一直被認為是最復雜和最有爭議的方面之一。基因特征對臨床預后和選擇合適的治療方案具有重要作用。在評估GBM患者的OS時,本研究考慮了MGMT啟動子基因甲基化的存在、腫瘤切除的程度、患者的年齡和腫瘤的位置。本研究結果表明,具有MGMT基因啟動子甲基化的GBM患者對輔助治療的反應更有利,因此生存時間更長。具有MGMT甲基化的基線腫瘤體積≤32 mm3的患者生存時間顯著延長(560.5 d vs 329 d,P< 0.05)。這可以歸因于與體積較大的腫瘤相比,較小腫瘤的更易徹底切除。本研究結果還顯示,具有MGMT基因啟動子甲基化的GBM患者對輔助治療的反應更有利,因此生存時間更長。大量研究表明,MGMT甲基化可預測患者較長的生存時間[1921]。Binabaj等[22]對29項報告了MGMT啟動子甲基化對OS影響的研究進行了薈萃分析,在15項研究的單變量分析中,合并風險比為0.67(95%CI:0.58~0.78),在14項研究的多變量分析中,合并風險比為0.49(95%CI:0.38~0.64)[22]。另有幾項試驗也發現,在接受TMZ治療的具有甲基化MGMT啟動子的個體中,患者無進展生存期得到延長[23]。本研究結果與目前文獻報道基本一致,提示MGMT甲基化有助于增強GBM患者化療敏感性,延長手術后生存期。
本研究中,MGMT啟動子甲基化是一個有利的預后因素,診斷時小腫瘤(≤32 mm3)和接受全切術的患者總生存期最長。由MGMT啟動子甲基化導致的DNA修復基因的表觀遺傳沉默與接受烷化劑治療的GBM患者的存活時間更長有關。但仍需要更多中心研究評估MGMT啟動子甲基化與MGMT表達,或MGMT基因甲基化的關系,以充分了解其預后潛力。
本研究存在一些局限性。首先,本研究是針對在單一機構接受治療的相對較小樣本量的患者群體進行的,結局指標不包括無進展生存期。其次,由于本研究隨訪期間沒有評估IDH中的突變效應,可能夸大了MGMT啟動子甲基化的預后意義。
利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突。
[參 考 ?文 ?獻]
[1]Ostrom QT,Patil N,Cioffi G,et al.CBTRUS statistical report:primary brain and other central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2013—2017[J].Neuro Oncol,2020,22(12 Suppl 2):iv1iv96.
[2]Fresnais M,Turcan S,Theile D,et al.Approaching sites of action of temozolomide for pharmacological and clinical studies in glioblastoma[J].Biomedicines,2021,10(1):1.
[3]Seyve A,LozanoSanchez F,Thomas A,et al.Initial surgical resection and long time to occurrence from initial diagnosis are independent prognostic factors in resected recurrent IDH wildtype glioblastoma[J].Clin Neurol Neurosurg,2020,196:106006.
[4]Wen PY,Weller M,Lee EQ,et al.Glioblastoma in adults:a Society for NeuroOncology(SNO) and European Society of NeuroOncology(EANO) consensus review on current management and future directions[J].Neuro Oncol,2020,22(8):10731113.
[5]Ostrom QT,Truitt G,Gittleman H,et al.Relative survival after diagnosis with a primary brain or other central nervous system tumor in the National Program of Cancer Registries,2004 to 2014[J].Neurooncol Pract,2020,7(3):306312.
[6]Von Deimling A,Korshunov A,Hartmann C.The next generation of glioma biomarkers:MGMT methylation,BRAF fusions and IDH1 mutations[J].Brain Pathol,2011,21(1):7487.
[7]Yu W,Zhang LL,Wei QC,et al.O6methylguanineDNA methyltransferase(MGMT):challenges and new opportunities in glioma chemotherapy[J].Front Oncol,2019,9:1547.
[8]Ducray F,El Hallani S,Idbaih A.Diagnostic and prognostic markers in gliomas[J].Curr Opin Oncol,2009,21(6):537542.
[9]Hegi ME,Diserens AC,Gorlia T,et al.MGMT gene silencing and benefit from temozolomide in glioblastoma[J].N Engl J Med,2005,352(10):9971003.
[10]Kurdi M,Butt NS,Baeesa S,et al.Prognostic value of TP53 expression and MGMT methylation in glioblastoma patients treated with temozolomide combined with other chemotherapies[J].J Neurooncol,2021,152(3):541549.
[11]Quillien V,Lavenu A,Sanson M,et al.Outcomebased determination of optimal pyrosequencing assay for MGMT methylation detection in glioblastoma patients[J].J Neurooncol,2014,116(3):487496.
[12]Wang J,Zhang M,Liu YF,et al.Potent predictive CpG signature for temozolomide response in nongliomaCpG island methylator phenotype glioblastomas with methylated MGMT promoter[J].Epigenomics,2022,14(20):12331247.
[13]Stegmann SK,Kuhl S,Im NG,et al.Death receptor 6 as a prognostic marker in lowgrade glioma[J].Anticancer Res,2022,42(3):12371245.
[14]Berghoff AS,Preusser M.Clinical neuropathology practice guide 062012:MGMT testing in elderly glioblastoma patients—yes,but how?[J].Clin Neuropathol,2012,31(6):405408.
[15]Zemskova OV,Kurinnyi DA,Rushkovsky SR,et al.Development of tumorinduced bystander effect and radiosensitivity in the peripheral blood lymphocytes of glioblastoma patients with different MGMT gene methylation statuses in tumor cells[J].Cytol Genet,2021,55(2):125131.
[16]Yang JY,Yu L,Gaiteri C,et al.Association of DNA methylation in the brain with age in older persons is confounded by common neuropathologies[J].Int J Biochem Cell Biol,2015,67:5864.
[17]孫亞方,王政,石祥宇,等.老年膠質母細胞瘤患者MGMT甲基化狀態對放化療及預后影響[J].中華放射腫瘤學雜志,2021,30(5):446450.
[18]Choi HJ,Choi SH,You SH,et al.MGMT promoter methylation status in initial and recurrent glioblastoma:correlation study with DWI and DSC PWI features[J].AJNR Am J Neuroradiol,2021,42(5):853860.
[19]Shu C,Wang Q,Yan XL,et al.The TERT promoter mutation status and MGMT promoter methylation status,combined with dichotomized MRIderived and clinical features,predict adult primary glioblastoma survival[J].Cancer Med,2018,7(8):37043712.
[20]Brandner S,McAleenan A,Kelly C,et al.MGMT promoter methylation testing to predict overall survival in people with glioblastoma treated with temozolomide:a comprehensive metaanalysis based on a Cochrane Systematic Review[J].Neuro Oncol,2021,23(9):14571469.
[21]Chai RC,Li GZ,Liu YQ,et al.Predictive value of MGMT promoter methylation on the survival of TMZ treated IDHmutant glioblastoma[J].Cancer Biol Med,2021,18(1):272282.
[22]Binabaj MM,Bahrami A,ShahidSales S,et al.The prognostic value of MGMT promoter methylation in glioblastoma:a metaanalysis of clinical trials[J].J Cell Physiol,2018,233(1):378386.
[23]Li JH,Liang RF,Song C,et al.Prognostic and clinicopathological significance of long noncoding RNA in glioma[J].Neurosurg Rev,2020,43(1):18.