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四川草地型藏綿羊雜交羊群中FecB基因的檢測與分析

2024-03-13 02:31:36楊小林黃向月余康健蘇元君李星亮
四川畜牧獸醫 2024年2期

陳 勇,楊小林,黃向月,牟 桑,雍 軍,余康健,蘇元君,李星亮

(阿壩藏族羌族自治州畜牧科學技術研究所,四川 紅原 624402)

綿羊的多胎性狀是綿羊多產、高產的基礎。研究發現,FecB基因是在綿羊身上識別出的第一個高繁殖力主效基因,攜帶FecB等位基因的綿羊群體的繁殖力顯著高于不含有該基因的群體。研究人員對中國很多地方綿羊品種都進行了FecB檢測,發現至少9個品種存在FecB突變[1],主要存在于小尾寒羊和湖羊中。故本研究選用湖羊、小尾寒羊作為母本,分別與草地型藏綿羊(賈洛羊)、薩福克羊公羊進行雜交,后對雜交F1代羊群進行FecB基因檢測,計算各基因型的基因頻率,并跟蹤F1 代母羊的產仔情況,為后期優化、篩選和制訂草地型藏綿羊多羔多胎雜交育種計劃提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 試驗羊群及血樣采集6 個試驗羊群分別為湖羊、小尾寒羊、草地型藏綿羊(賈洛羊)等純系以及草地型藏綿羊(♂)×小尾寒羊(♀)、薩福克羊(♂)×草地型藏綿羊(♀)、湖羊(♂)×草地型藏綿羊(♀)等雜交F1代羊。均飼養于若爾蓋縣,健康狀況良好。

根據羊群數量大小,等比例選取一定數量的羊只采集血樣。91只試驗羊于頸靜脈處采血5~10 mL,加入混有1%肝素鈉的抗凝管中,混勻后保存在-20 ℃冰柜中備用[2]。

1.2 試驗羊群的飼養管理 試驗組的湖羊、小尾寒羊、薩福克羊及其雜交F1 代羊每天放牧約8h;日補飼2次,上午、下午各喂1次;成年羊每天補飼玉米粒0.2 kg/只,補飼全價顆粒飼料0.08 kg/只;羔羊每天補飼玉米粒0.08 kg/只,補飼全價顆粒飼料0.08 kg/只;實行規范化驅蟲和免疫預防。對妊娠母羊、產后母羊及羔羊進行精細化飼養管理,對于產羔多但又少奶的哺乳母羊,務必對其羔羊實施人工哺乳,盡量減少羔羊不必要的死亡。

1.3 DNA 提取方法 采用SDS 方法按說明書步驟提取試驗羊只血樣DNA,電泳檢測條帶后,保存于-20 ℃備用。

1.4 多羔多胎基因擴增PCR 采用10 μL 體系:DNA模板1μL,上下游引物各0.5μL,2×Easy TaqPCR Super Mix(+dye)5μL,用ddH2O 補足10 μL。

擴增引物序列參考NY/T 1672-2008 標準,預期擴增片段大小為140 bp。

上游引物:GTCGCTATGGGGAAGTTTGGATG;下游引物:CAAGATGTTTTTCATGCCTCATCAAC ACGGTC。

1.4.1 PCR 擴增體系10 μmol/L 的上下游引物各1μL,SYBR PCRSuperMix 10 μL,DNA 模板2 μL,ddH2O6 μL,總反應體積為20 μL。

PCR 擴增程序:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共33 個循環;72 ℃延伸5 min,4 ℃保存。

1.4.2 PCR 產物檢測及測序5 μL 的擴增產物加上1μL上樣緩沖液(Loading Buffer),5μL DM2000 DNAMarker,于120 V下電泳30 min,凝膠成像儀下觀察產物的擴增情況。

1.5FecB基因型分型 分裝5 μL 的PCR 擴增產物送北京擎科生物科技股份有限公司(成都分公司)測序,檢測目標位點的堿基多態性。

另取5 μL PCR擴增產物用AvaⅡ限制性內切酶進行酶切,酶切反應體系如下[5]:PCR擴增產物5μL,10×NEBBuffer 5μL,AvaⅡ酶1μL,雙蒸水39 μL。整個體系的混合在冰上操作,振蕩、離心后置于37 ℃恒溫箱中過夜。5 μL 的擴增產物加上1μL 上樣緩沖液(Loading Buffer),5μL DM2000DNAMarker,于200V電壓下電泳30min,凝膠成像儀下觀察產物的擴增情況。

1.6 統計分析 對測序結果和FecB基因酶切結果進行判定、統計,并用卡方檢驗分析各試驗羊群的Hardy-Weinberg平衡情況。統計3個雜交組合羊群母羊的第一胎產羔情況。

2 結果與分析

2.1 PCR 擴增結果 由圖1 可知,在100 bp 和250 bp 之間有1 條特異性擴增片段,與預期擴增片段大小一樣,約為140 bp。

圖1 FecB基因PCR擴增結果

2.2 PCR-RFLP 檢測結果 將擴增產物(A1~C3)酶切,電泳結果顯示出3 種不同的基因型,如圖2 所示。其中A1、A2、A3 為野生型(++型,無FecB拷貝,140bp/140bp);B1、B2、B3 為雜合型(B+型,一個FecB拷貝的攜帶者,140 bp/110 bp);C1、C2、C3為純合型(BB型,兩個FecB拷貝的攜帶者,110 bp/110 bp)。

圖2 FecB基因擴增產物AvaⅡ酶切結果

2.3 基因分型結果及Hardy-Weinberg 平衡檢驗 湖羊、小尾寒羊、賈洛羊等純系樣本不符合Hardy-Weinberg平衡條件,故不做卡方檢驗。

由表1 可見,藏×小F1 代群體中三個基因型頻率分別為0.05、0.21和0.74,且野生型(++型)是該群體中的優勢基因型。薩×藏F1代群體中沒有檢測出純合型(BB 型),只檢測出雜合型(B+型)和野生型(++型),二者基因型頻率分別為0.20和0.80,且野生型(++型)是該群體的優勢基因型。湖×藏F1代群體中沒有檢測出純合型(BB型),只檢測出雜合型(B+型)和野生型(++型),二者基因型頻率分別為0.70和0.30,且雜合型(B+型)是該群體的優勢基因型。經卡方(χ2)檢驗,藏×小、薩×藏、湖×藏組合的P值分別為0.423、0.940、0.232,均大于0.05,說明三個雜交組合F1 代群體滿足Hardy-Weinberg平衡條件。

表1 試驗羊群多胎基因分型結果與卡方檢驗

2.4 三個雜交組合F1代母本的產仔數情況 由表2 可知,湖×藏、薩×藏組合的產羔均數分別為1.4、1.1頭,低于藏×小組合(2.1頭)。

3 討論

3.1FecB基因的導入情況 產羔數是直接影響養羊業經濟效益的重要因素。鑒于草地型藏綿羊繁殖力較低[4],本研究著力通過雜交方式在草地型藏綿羊中導入FecB基因來提高繁殖力。基因分型結果顯示,藏×小F1 代群體中存在三種基因型[7],即BB 型、B+型和++型,薩×藏F1 和湖×藏F1 代群體中存在兩種基因型,B+型和++型,且B+基因型頻率分別為0.20、0.70,說明FecB基因已經在草地型藏綿羊3 個雜交群體中導入成功。

3.2 基因型頻率分析 研究發現藏×小、湖×藏、薩×藏三個雜交F1 代群體雖未進行人工選擇,但均處于Hardy-Weinberg平衡狀態。同時,群體內BB 基因型頻率較低,分別為0.05、0、0,后期隨著雜交群體的自繁、擴群,群體中BB型基因頻率逐漸增加[6],從而不斷提高子二代、三代等群體的產仔均數。

3.3 產羔數差異分析 若爾蓋縣地處青藏高原東北邊緣,養殖環境多為高海拔(3 300 m以上)及高寒地區,所以本研究選擇已能適應本地區氣候環境的綿羊品種(小尾寒羊、薩福克羊、湖羊)和本地草地型藏綿羊(賈洛羊)作為試驗對象。小尾寒羊和湖羊是中國知名的產多羔型品種,產羔率平均為229%~270%,一般作為配套組合雜交母本。本研究發現,選擇小尾寒羊作為母本,雜交F1 代產羔數量平均為2.2 頭。相對應的,以湖羊作為父本,雜交F1代產羔數量平均僅有1.4頭,說明以多羔型品種作為母本的雜交(藏×小)F1代的產羔數量明顯多于以多羔型品種為父本的雜交(湖×藏)F1代的產羔數量。這一點這與卡那提沙力克[7]報道的結果基本一致。

本研究發現,母本小尾寒羊可能攜帶有少量野生型(++型)基因,三個雜交組合F1代FecB基因的B 配子的基因頻率各不相同,但藏×小、湖×藏雜交F1代組合的B基因型頻率分別為0.14、0.11,前者仍高于后者。因此,以小尾寒羊或者湖羊作為雜交母本,其雜交F1 代的FecB基因頻率高,更有利于FecB基因在藏綿羊群體中的導入。

4 結論

通過分子生物學手段對草地型藏綿羊與小尾寒羊、薩福克、湖羊等雜交后代群體進行FecB基因分型,發現F1代雜交群體均成功導入了FecB基因,母羊產仔均數有一定的提高。在對比分析不同的雜交組合方式后,確定以多羔型品種綿羊(小尾寒羊)作為雜交組合的母本,其FecB基因聚合優勢更大,產羔數更多。

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