黃俊玲,鐘騰猛,黃森平,高鑫艷
作者單位:1右江民族醫學院附屬醫院消化內科,廣西壯族自治區 百色533000;2百色市人民醫院肝膽外科,廣西壯族自治區 百色533099;3右江民族醫學院臨床醫學院,廣西壯族自治區 百色533000
肝細胞癌(HCC)是世界范圍內最常見的人類癌癥之一,其死亡率居所有癌癥之首[1]。HCC的發病是由于表觀遺傳的改變導致癌基因的激活和抑癌基因的失活,進而誘導的肝細胞癌[2]。表觀遺傳的改變包括異常甲基化、組蛋白修飾和核糖核酸(RNA)干擾,這不會改變遺傳密碼,但會影響mRNA的轉錄[3]。組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1(SET domain, bifurcated 1,ESET)基因位于染色體1q21上,編碼143 kDa的蛋白質,具有多個功能域。大量研究證明,ESET在多種惡性腫瘤中高度表達,與腫瘤細胞的增殖、侵襲緊密相關[4]。ESET的過度表達與HCC進展、腫瘤侵襲性和HCC病人的低生存率顯著相關,ESET的失活降低HCC細胞的增殖和遷移能力,表明ESET是HCC中的重要癌基因。遺憾的是,ESET發揮作用的潛在調控機制研究甚少。長鏈非編碼RNA(lncRNA)起初被認為作為是多余的,現在很多研究已證實,lncRNA在生物功能調控中具有重要作用,尤其肝細胞癌[5]。多種多樣的lncRNA在腫瘤的發生和轉移中起關鍵作用[6],但仍有部分新發現的lncRNA的作用仍不完全清楚。lncRNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1(GDP-Mannose 4,6-Dehydratase Antisense RNA1,lncRNA GMDS-AS1)是近期在肺腺癌中新發現的lncRNA[7],其在肝癌中的作用尚未可知。本研究擬以肝癌細胞為研究對象,觀察ESET、lncRNA GMDS-AS1在肝癌組織中的表達及對肝癌細胞增殖、凋亡、糖酵解的作用,揭示ESET、lncRNA GMDS-AS1在肝癌細胞中發揮調控作用的潛在關系,為肝癌的治療提供新的治療靶點。
1.1 一般資料 樣本來自右江民族醫學院附屬醫院和百色市人民醫院2019年1月至2020年1月期間接診的行肝癌手術切除的49例病人的癌組織及對應的癌旁組織。所有病人均簽署知情同意書,本研究符合《世界醫學協會赫爾辛基宣言》相關要求。
人永生化正常肝細胞THLE-2、肝癌細胞HepG2購自美國菌種保藏中心;DMEM培養液、胎牛血清購自美國Gibco;Lipofectamin 3000試劑購自美國Thermo Fisher Scientific;TRIzol液購自美國Invitrogen;反轉錄試劑盒、定量聚合酶鏈反應(qPCR)試劑盒購自日本Takera;鼠抗ESET(A-1)單抗、ESET siRNA質粒購自美國圣克魯斯生物;兔抗細胞增殖抗原標志物Ki-67單抗、兔抗葡萄糖轉運蛋白1(GLUT1)多抗、兔抗乳酸脫氫酶A(LDHA)單抗、兔抗活化胱天蛋白酶-3(C-caspase-3)單抗均購自Cell Signaling Technology;HRP標記的二抗購自北京索萊寶公司;細胞計數試劑盒(CCK8)購自上海東仁化學研究所;膜聯蛋白-V異硫氰酸熒光素/碘化丙啶(Annexin V-FITC/PI)細胞凋亡檢測試劑盒購自上海翌圣生物;RNA結合蛋白免疫沉淀(RIP)試劑盒購自Millipore公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養 THLE-2、HepG2細胞使用混有10%胎牛血清的DMEM培養液培養。培養條件為37 ℃、5%二氧化碳的恒溫細胞培養箱中培養,隔天更換一次培養液。
1.2.2 細胞轉染與分組 正常培養的THLE-2、HepG2細胞設為THLE-2、HepG2組。將HepG2細胞分為空白組(不做任何處理)、空載體組(轉染pcDNA或si-con)、敲減ESET組(轉染si-ESET)、過表達lncRNA GMDS-AS1組(轉染pcDNA-GMDS-AS1)。具體的轉染方法:使用3倍的Lipofectamin 3000轉染試劑與各組待轉染物質(DNA或質粒)混合與HepG2細胞共轉染8 h,更換新培養液繼續培養。實時熒光定量逆轉錄聚合酶鏈反應(qRT-PCR)或蛋白質印跡法確認轉染效率。
1.2.3 qRT-PCR實驗檢測ESET、lncRNA GMDSAS1的表達 收集細胞,Trizol液提取總RNA,反轉錄試劑盒合成互補DNA(cDNA),-20 ℃保存待用。以cDNA為模板qPCR實驗的模板,按照qPCR試劑盒要求操作,檢測分析ESET、lncRNA GMDS-AS1的表達。以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)為內參,2-ΔΔCt法計算ESET、lncRNA GMDS-AS1的表達水平。儀器程序設置為:95 ℃,2 min;95 ℃,30 min;60 ℃,30 s;72 ℃,30 s;72 ℃,5 min,41個循環。ESET,正向引物5'-AAGACCAGAAGCTCCGTGAA-3',反向引物5'-CCTGGGAACTGCTCTTCTTG-3';lncRNA GMDS-AS1,正向引物5′-AATGCTTTGAGGCCAAGCTA-3′,反向引物5′-TGGGTTCATAAGGGTTGCAT-3′;GAPDH,正向引物5'-GACAACAGCCTCAAGATCATCAG-3',反向引物5'-GTGGCAGTGATGGCATGGA-3'。
1.2.4 蛋白質印跡法檢測ESET、Ki-67、GLUT-1、LDHA、C-caspase-3的蛋白表達 收集細胞或組織勻漿,冰上放射免疫沉淀法裂解30 min,提取總蛋白,測定蛋白濃度,變性。取變性后的蛋白上清做蛋白電泳上樣模板。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳蛋白電泳結束后,用轉膜儀將蛋白從凝膠轉移至NC膜,轉模環境需在0 ℃以下。使用含2.5%脫脂奶粉的封閉液對膜封閉處理(37 ℃孵育2 h)。洗膜3次,將膜浸入稀釋的一抗溶液中(鼠抗ESET(A-1)單抗,1∶800;兔抗Ki-67單抗,1∶1 000;兔抗GLUT-1多抗,1∶1 500;兔抗LDHA單抗,1∶1 000;兔抗C-caspase-3單抗,1∶2 000),4 ℃孵育過夜。充分洗膜,將膜轉入稀釋的二抗溶液中,37 ℃孵育2 h。洗膜,用ECL發光液顯影,曝光。Image J軟件分析蛋白灰度值,以目的蛋白灰度/內參GAPDH的灰度表示蛋白的表達量。
1.2.5 CCK8法檢測細胞活性 收集細胞,調至0.5×105個/毫升,取200 μL細胞接種至96孔板,更換新鮮培養液,分別培養24、48、72、96 h。取出培養24、48、72、96 h的各組細胞,向細胞中加入10 μL的CCK8反應液,避光孵育20 min。在490 nm波長下檢測細胞吸光度[D(λ)490]。
1.2.6 Annexin V-FITC/PI檢測細胞凋亡 收集細胞,洗滌后用結合緩沖液制成懸液,取500 μL至于反應管,再依次加入Annexin V-FITC(5 μL)、PI(5 μL),避光孵育20 min,上流式細胞儀分析細胞凋亡。總凋亡率(%)=早期凋亡率(%)+晚期凋亡率(%)。
1.2.7 RIP實驗檢測ESET與lncRNA GMDS-AS1的相互作用 收集細胞,調至1×107個/毫升,取1.0 mL至EP管,用磷酸緩沖鹽溶液洗滌3次,加入裂解液冰上裂解。結束后,分別向EP管中加入5 μL異染色質相關小RNA、免疫球蛋白G(IgG)抗體、Argonaute 2蛋白(Ago2)抗體,再加入2.5 μL的RNA酶抑制劑,輕輕吹打混勻。4 ℃低溫離心10 min(12 000 r/min),洗滌3次,取上清置于磁珠中,4 ℃孵育過夜。用洗滌液洗滌磁珠3次,將磁珠結合復合物用于qRT-PCR實驗。
1.3 統計學方法 實驗中的數據均用SPSS 22.0進行專業的統計分析。計量資料使用表示。兩組數據比較使用獨立樣本t檢驗,多組數據之間的比較使用單因素方差分析聯合LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 肝癌組織和癌旁組織中ESET mRNA和lncRNA GMDS-AS1表達的影響 與癌旁組織相比,肝癌組織中ESET的mRNA和蛋白表達均顯著升高,lncRNA GMDS-AS1的表達顯著降低(P<0.05),肝癌組織中lncRNA GMDS-AS1的表達與ESET的表達之間呈負相關性,見表1。THLE-2組相比,HepG2組細胞ESET的mRNA和蛋白表達均顯著升高,lncRNA GMDS-AS1表達顯著降低(P<0.05),見表2。
表1 ESET mRNA和lncRNA GMDS-AS1在肝癌組織和癌旁組織的表達/

表1 ESET mRNA和lncRNA GMDS-AS1在肝癌組織和癌旁組織的表達/
注:ESET mRNA為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1微小RNA,lncRNA GMDS-AS1為長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1。
lncRNA GMDS-AS1 1.02±0.31 0.63±0.20 7.57<0.001組別癌旁組織肝癌組織t值P值例數49 49 ESET mRNA 0.99±0.33 5.18±0.94 29.44<0.001 ESET蛋白0.23±0.07 0.69±0.14 20.57<0.001
表2 ESET mRNA和lncRNA GMDS-AS1在THLE-2、HepG2中的表達/

表2 ESET mRNA和lncRNA GMDS-AS1在THLE-2、HepG2中的表達/
注:ESET mRNA為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1微小RNA,lncRNA GMDS-AS1為長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1,ESET為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1。
lncRNA GMDS-AS1 1.01±0.13 0.51±0.08 9.83<0.001組別THLE-2組HepG2組t值P值重復次數9 9 ESET mRNA 1.00±0.17 4.15±0.32 26.08<0.001 ESET蛋白0.24±0.03 0.67±0.10 12.36<0.001
2.2 敲減ESET抑制肝癌細胞的增殖 與空載體組相比,敲減ESET組細胞ESET的mRNA和蛋白表達均顯著降低,Ki-67蛋白表達顯著降低,細胞在48、72、96 h的活性顯著降低(P<0.05)。見表3。
表3 敲減ESET抑制肝癌細胞增殖/

表3 敲減ESET抑制肝癌細胞增殖/
注:ESET為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1,Ki-67為細胞增殖抗原標志物。①與空載體組比較,P<0.05。
組別空白組空載體組敲減ESET組F值P值細胞活性(A490)96 h 0.96±0.10 0.95±0.13 0.77±0.09①8.82 0.001重復次數48 h 0.46±0.08 0.44±0.06 0.32±0.06①11.38<0.001 ESET mRNA 0.98±0.22 0.96±0.03 0.50±0.24①18.62<0.001 ESET 9蛋白0.58±0.07 0.60±0.09 0.24±0.04①75.70<0.001 Ki-67 0.70±0.11 0.69±0.05 0.35±0.11①40.15<0.001 24 h 0.25±0.04 0.26±0.02 0.24±0.03 0.93 0.408 72 h 0.71±0.13 0.68±0.07 0.46±0.07①18.84<0.001 9 9 9
2.3 敲減ESET對肝癌細胞糖酵解和凋亡的影響與空載體組相比,敲減ESET組細胞GLUT-1、LDHA的蛋白表達均顯著降低,C-caspase-3蛋白表達顯著升高,細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。見表4,圖1。

圖1 敲減組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1(ESET)的肝癌細胞凋亡圖及GLUT-1、LDHA、C-caspase-3的蛋白表達:A為肝癌細胞的凋亡圖;B為GLUT-1、LDHA和C-caspase-3的蛋白圖
表4 敲減ESET對肝癌細胞糖酵解和凋亡的影響/

表4 敲減ESET對肝癌細胞糖酵解和凋亡的影響/
注:ESET為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1,GLUT-1為葡萄糖轉運蛋白1,LDHA為乳酸脫氫酶A,C-caspase-3為活化胱天蛋白酶-3。①與空載體組比較,P<0.05。
組別空白組空載體組敲減ESET組F值P值凋亡率/%4.19±0.59 3.74±0.51 14.41±1.5①329.97<0.001重復次數9 9 9 GLUT-1 0.66±0.04 0.64±0.08 0.47±0.10①16.35<0.001 LDHA 0.72±0.13 0.76±0.05 0.43±0.10①29.79<0.001 C-caspase-3 0.25±0.04 0.27±0.02 0.45±0.18①9.53 0.001
2.4 過表達lncRNA GMDS-AS1對肝癌細胞增殖的影響 與空載體組相比,過表達lncRNA GMDSAS1組細胞lncRNA GMDS-AS1的表達顯著升高,Ki-67蛋白表達顯著降低,在48、72、96 h的活性顯著降低(P<0.05)。見表5。
表5 過表達lncRNA GMDS-AS1抑制肝癌細胞的增殖/

表5 過表達lncRNA GMDS-AS1抑制肝癌細胞的增殖/
注:lncRNA GMDS-AS1為長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1,Ki-67為細胞增殖抗原標志物。①與空載體組比較,P<0.05。
組別空白組空載體組過表達lncRNA GMDS-AS1組F值P值細胞活性(A490)96 h 1.03±0.11 0.98±0.12 0.72±0.08①22.73 0.001重復次數48 h 0.45±0.08 0.46±0.06 0.34±0.06①8.80<0.001 lncRNA GMDS-AS1 1.00±0.14 1.10±0.09 5.19±0.43①725.89<0.001 Ki-67 0.65±0.09 0.63±0.08 0.42±0.06①24.25<0.001 24 h 0.29±0.04 0.28±0.05 0.27±0.03 0.54 0.590 72 h 0.68±0.09 0.65±0.08 0.47±0.07①17.95<0.001 9 9 9
2.5 過表達lncRNA GMDS-AS1對肝癌細胞糖酵解和凋亡的影響 與空載體組相比,過表達lncRNA GMDS-AS1組細胞GLUT-1、LDHA的蛋白表達均顯著降低,C-caspase-3蛋白表達顯著升高,細胞凋亡率顯著升高(P<0.05)。見表6,圖2。

圖2 過表達長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1(lncRNA GMDS-AS1)的肝癌細胞凋亡圖及GLUT-1、LDHA、C-caspase-3的蛋白表達:A為過表達lncRNA GMDS-AS1的肝癌細胞凋亡圖;B為GLUT-1、LDHA、C-caspase-3的蛋白圖
表6 過表達lncRNA GMDS-AS1抑制肝癌細胞糖酵解、誘導細胞凋亡/

表6 過表達lncRNA GMDS-AS1抑制肝癌細胞糖酵解、誘導細胞凋亡/
注:lncRNA GMDS-AS1為長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1,GLUT-1為葡萄糖轉運蛋白1,LDHA為乳酸脫氫酶A,C-caspase-3為活化胱天蛋白酶-3。①與空載體組比較,P<0.05。
凋亡率/%3.89±0.84 3.92±0.86 14.67±1.94①200.23<0.001組別空白組空載體組過表達lncRNA GMDS-AS1組F值P值重復次數9 9 9 GLUT-1 0.61±0.04 0.60±0.08 0.42±0.10①17.15<0.001 LDHA 0.74±0.11 0.75±0.09 0.43±0.07①35.61<0.001 C-caspase-3 0.21±0.04 0.23±0.05 0.49±0.08①62.74 0.001
2.6 ESET與lncRNA GMDS-AS1的結合 與空載體組相比,過表達ESET組Ago2抗體的細胞中lncRNA GMDS-AS1表達顯著升高(P<0.05)。見表7。
表7 RIP實驗結果/

表7 RIP實驗結果/
注:RIP為RNA結合蛋白免疫沉淀,lncRNA GMDS-AS1為長鏈非編碼RNA甘露糖4,6-脫水酶反義RNA1,IgG為免疫球蛋白G,Ago2為Argonaute 2蛋白,Input為異染色質,ESET為組蛋白甲基轉移酶集合域分叉1。
Input 8.84±0.39 8.79±0.92 0.15 0.883組別空載體組過表達ESET組t值P值重復次數Ago2 2.14±0.21 4.97±0.52 15.14<0.001 lncRNA GMDS-AS1 IgG 0.89±0.10 0.91±0.13 0.37 0.719 9 9
ESET是人類肝癌中表達上調最顯著的表觀遺傳調節因子,ESET的上調與肝癌病人的轉移形成、預后較差密切相關[8-9]。近期,Shao等[10]在肝癌的研究中報道,ESET在肝癌組織和細胞中低表達,作為miR-621的下游靶基因調控肝癌的放射敏感性,揭示miR-621/ESET通路通過激活p53信號通路的活性提高肝癌細胞的放射敏感性。本研究發現,ESET在肝癌組織中的表達異常升高,并且敲減ESET具有抑制肝癌細胞增殖、糖酵解,促進凋亡的作用,這均與前人的研究相呼應。但是ESET發揮致癌作用的潛在機制仍需繼續研究。此研究還發現了lncRNA GMDS-AS1在肝癌組織中的表達與ESET的表達具有明顯的負相關性,于是猜測ESET在肝癌細胞中的作用可能與lncRNA GMDS-AS1有一定關系。
lncRNA已被證明是癌癥進展的重要調節因子,包括肝細胞癌[11-12]。lncRNA DEAD/H盒蛋白11反義RNA 1調控肝癌細胞的增殖、遷移、侵襲、糖代謝和凋亡過程[13]。lncRNA遠端同源框6反義RNA1(lncRNA DLX6-AS1)的沉默,可抑制肝癌細胞的增殖、遷移和侵襲,促進凋亡的發生[14]。但是,lncRNA GMDS-AS1在肝癌中的作用仍有待進一步研究。Zhao等[15]在肺腺癌的研究中發現新的失調lncRNA,lncRNA GMDS-AS1作為腫瘤抑制基因在肺腺癌中低表達,過表達lncRNA GMDS-AS1能夠在體內外抑制癌細胞的增殖并促進凋亡;深入研究還發現,GMDS-AS1是miR-96-5p的靶基因,GMDS-AS1與miR-96-5p相關,調節LUAD細胞的增殖和凋亡,說明lncRNA GMDS-AS1作為肺腺癌治療的潛在靶點的前景。但是,lncRNA GMDS-AS1作為新發現的癌癥調控因子,其在肝癌中的功能尚未有人研究。本研究使用qRT-PCR實驗檢測了肝癌組織和癌旁組織中lncRNA GMDS-AS1的表達發現,lncRNA GMDS-AS1在肝癌組織中表達下調,這與Zhao在肺腺癌中的研究結果相吻合[16]。進一步研究,通過構建過表達lncRNA GMDS-AS1的肝癌細胞,檢測細胞增殖、凋亡、糖酵解發現,過表達lncRNA GMDS-AS1抑制了癌細胞的增殖、糖酵解,促進癌細胞的凋亡,說明lncRNA GMDS-AS1在肝癌中也扮演抑癌基因的角色[17]。此研究還通過RIP實驗發現,ESET與lncRNA GMDS-AS1之間存在結合力[18]。
綜上所述,甲基轉移酶ESET促進肝癌細胞的增殖、糖酵解,抑制凋亡,發揮促進癌癥惡化的作用,產生這種作用的潛在機制與負向調節抑癌因子lncRNA GMDS-AS1相關,為肝癌的精準治療提供新靶點。