章文,艾樂樂,譚偉龍,馮茜,錢宇清,薛松△(.江蘇省第二中醫院,江蘇 南京 0000;.東部戰區疾病預防控制中心,江蘇 南京 0000)
冠狀病毒(coronavirus,CoVs)是一種有包膜、非節段的單股正鏈RNA病毒,屬于巢病毒目冠狀病毒科正冠狀病毒亞科。該亞科由α冠狀病毒屬、β冠狀病毒屬、γ冠狀病毒屬和δ冠狀病毒屬共四個屬組成[1]。目前主要采用qPCR方法對病毒核酸進行檢測和定量,該方法具有高度的靈敏度和特異性[2]。自COVID-19暴發以來,許多實時qPCR(RT-qPCR)檢測試劑被開發出來,并且用于SARS-CoV-2的實驗室檢測[3]。但qPCR的檢測需要專業的人員和較精密的實驗設備,且檢測時間至少需要1.5小時[4-6]。由于SARS-CoV-2疫情在全球范圍內流行,出現了大量患者、無癥狀感染者和密切接觸者,如何更加快速、準確檢測SARSCoV-2對疫情防控至關重要。本研究建立單管逆轉錄重組酶介導擴增(Reverse transcription recombinase aided amplification,RTRAA)方法,檢測SARS-CoV-2核衣殼(N)基因。運用商用RTqPCR試劑和RT-RAA方法對127人份臨床咽拭子樣本進行檢測,檢測結果一致性達100%。本研究建立的RT-RAA法檢測SARSCoV-2,具有快速、靈敏、操作簡單及設備要求低等特點,對于當前疫情下快速檢測SARS-CoV-2具有重要作用。
1.1 引物和探針設計 在NCBI數據庫中下載20條SARS-CoV-2核酸序列,使用DNAMAN7.0軟件對序列進行比對。在目標ORF1ab基因中發現一個保守區(GenBank:MT559038.1,position 3111-3406),根據這個區域設計RT-RAA引物和探針,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
1.2 RT-RAA方法建立 使用RT-RAA核酸擴增試劑盒(熒光法)(江蘇奇天基因生物科技有限公司,中國)進行建立檢測方法。反應體系共50μL,其中,純化水,13μL;緩沖液Ⅵ,25μL;正向引物(10μM),2μL;反向引物(10μM),2μL;探針,0.5μL;DNA模板,5μL;乙酸鎂,2.5μL。按照上述反應體系(除模板DNA和乙酸鎂外)配置混合液,將混合液手彈混勻短暫離心,加入42.5μL混合液至熒光基礎反應單元中,輕柔手彈,使凍干粉充分重溶均勻,短暫離心將液體收集至管底,然后于每個反應單元管蓋上加入2.5μL乙酸鎂溶液,之后向各反應單元中加入模板DNA或陰性質控品,充分混勻并離心。而后再將反應單元轉移到QT-RAA-F1620儀器(江蘇奇天基因生物科技有限公司,中國)中,擴增條件設定在39℃,反應時間30分鐘。
1.3 RNA提取 使用病毒核酸提取試劑盒(TAKARA,大連,中國)提取106名疑似COVID-19患者的咽拭子樣本中的病毒核酸。取200ul咽拭子病毒液,經過病毒裂解,核酸提取,用40ul RNase free dH2O洗脫后,放入-80℃冰箱保存備用。
1.4 靈敏度實驗 委托上海生工合成序列CTGCTCTTCAACCTGAA GAAGAGCAAGAAGAAGATTGGTTAGATGATGATAGTCAACAAA CTGTTGGTCAACAAGACGGCAGTGAGGACAATCAGACAACTAC TATTCAAACAATTGTTGAGGTTCAACCTCAATTAGAGATGGAAC TTACACCAGTTGTTCAGACTATTGAAGTGAATAGTTTTAGTGGTT ATTTAAAACTTACTGACAATGTATACATTAAA AATGCAGACATTGTGGAAGAAGCTAAAAAGG TAAAACCAACAGTGGTTGTTAATGCAGCCAA TGTTTACCTT構建含新型冠狀病毒基因序列質粒,載體:PUC57;載體大小:2710bp;克隆位點:SmaI;宿主菌:DH5α;抗性:氨芐。拷貝數(拷貝/μL)={[6.02×1023]×[質粒濃度(ng/μL)×10-9]}/[DNA長度×660])。將質粒梯度稀釋為106、105、104、103、102、101、100拷貝/μl 7個濃度,依次對上述定量樣品利用RT-RAA反應擴增體系進行測定,評價檢測方法的靈敏度。將ORF1ab基因的一段保守序列(GenBank: MT559038.1,position 3111-3406)構建到質粒上,載體:PUC57;載體大小:2710bp;克隆位點:SmaI;宿主菌:DH5α;抗性:氨芐。
1.5 特異性實驗 選用5種呼吸道病毒對本實驗的特異性進行驗證。用腺病毒3型、7型、55型,甲型流感病毒(2009H1N1,H3N2)和陽性樣本核酸作為模板,評價RT-RAA方法的特異性。5種呼吸道病毒核酸在本實驗室保存。
1.6 兩種方法對臨床樣本檢測 收集了106名新型冠狀病毒患者和疑似人員的咽拭子,所有樣本均由專業人員在P2實驗室中進行核酸的提取和檢測,提取的核酸樣本用RT-RAA和商用RT-qPCR兩種方法進行檢測。
2.1 靈敏度檢測 以梯度稀釋106-100copies/μl的7個RNA樣本為模板,驗證RT-RAA方法的檢測靈敏度。結果顯示該方法在模板濃度為106-101copies/μl時,均表現出良好的擴增曲線,100copy/μl時無擴增曲線。該檢測方法的最低檢測濃度為10copies/μl。當模板濃度大于103copies/μl時,反應在第10分鐘時就表現出良好的擴增曲線。見圖1。

圖1 RT-RAA檢測方法靈敏度檢測
2.2 特異性檢測 特異性檢測結果顯示,陽性對照和陽性樣本均表現出良好的擴增曲線,腺病毒3型、7型、55型,甲型流感病毒(2009H1N1,H3N2)和陰性對照均無擴增曲線。由此可知該檢測方法表現出良好的特異性。見圖2。

圖2 RT-RAA檢測方法特異性檢測
2.3 臨床樣本的檢測 使用商用RT-qPCR和RT-RAA檢測方法對106名COVID-19患者和疑似感染者的臨床咽拭子樣本進行檢測,32個陽性和74個陰性樣本用這兩種檢測方法結果一致,說明該RT-RAA檢測方法具有良好的穩定性,適合推廣應用。
據報道,SARS-CoV-2主要通過飛沫傳播,人感染SARSCoV-2并出現癥狀后,鼻咽部的病毒載量更高[7]。早期發現、早期隔離和治療對防止病毒傳播和臨床治療具有重要意義。目前對COVID-19的診斷主要依靠RT-qPCR的方法,中國衛生機構通過大量的RT-qPCR檢測,精準定位傳染源,采取有效的隔離措施,最終國內COVID-19已得到遏制,但其在全球其他國家仍在迅速傳播。由于RT-qPCR方法需要精密的儀器設備、專業的操作人員和較長的檢測時間,許多不發達國家很難進行大規模檢測。RT-RAA方法具有操作簡單、檢測用時短和高靈敏度等特點,這對SARS-CoV-2感染的早期診斷和及時采取衛生措施具有重要意義[8]。
本實驗建立的SARS-CoV-2的RT-RAA方法,采用重組酶介導的等溫擴增法檢測SARS-CoV-2核酸。該方法利用重組酶能夠在常溫下實現DNA解鏈并快速進行擴增,不依賴精密設備、反應快速。該方法所使用的RAA熒光檢測儀體積較小,便于攜帶,只需提供39℃等溫環境,電量消耗小,使用鋰電池即可運行,適用于現場快速檢測。當檢測核酸濃度大于103copies/ul時,可在10分鐘內檢測出陽性樣本。該方法的靈敏度可達到10copies/ul,與RT-qPCR的檢測靈敏度接近。運用該方法檢測5種呼吸道病毒和SARS-CoV-2陽性樣本,只有陽性樣本出現擴增曲線,其他5種呼吸道病毒均未出現擴增曲線,表現出良好的特異性。使用RTRAA和商用RT-qPCR方法對106名COVID-19患者和疑似感染者咽拭子樣本進行檢測,兩種方法的一致性為100%,表現出良好的穩定性,該種方法的檢測結果值得信賴。
本研究建立的RT-RAA檢測方法較現有的RT-qPCR方法具有操作簡單、檢測時間短、靈敏度高、特異性強等特點,為COVID-19疫情的快速診斷提供了準確可靠的檢測技術,為此次疫情提供了更加低成本的檢測方法。