喬蕾蕾,楊 敏,秦娟娟,廖海周,季 偉,李 茜
(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)理學(xué)院,甘肅 蘭州 730070)
原花青素(proanthocyanidins,PC)是天然多酚類化合物,具有良好的抗氧化、抗炎等作用[1-2]。然而,PC穩(wěn)定性較差,在特定pH值、光、熱作用下易降解,導(dǎo)致生物利用度低,限制了其在食品及醫(yī)藥行業(yè)中的應(yīng)用[3]。為了改善花青素的穩(wěn)定性和生物利用度,常對其進行適宜的包封和負載,已開發(fā)出多種負載體系,如乳液、脂質(zhì)體、生物聚合物顆粒等[4-6]。研究表明,利用魔芋葡甘聚糖制備的微粒負載PC,經(jīng)過胃和小腸各消化4 h后,保留率可達79.47%[5]。以膠原蛋白、果膠、殼聚糖復(fù)合物為基質(zhì)的微膠囊對花青素的包封率高達92.58%,負載量為12.34 g/100 g[6]。葡萄皮中的花青素在W/O/W雙乳液中的包封率達(87.74±3.12)%[7]。另外,以淀粉為基質(zhì)的乳液凝膠對PC和姜黃素具有較好的同時負載和控釋效果;可見,乳液凝膠在遞送活性物質(zhì)方面具有一定的潛力[8]。
乳液凝膠是基于蛋白質(zhì)、多糖等大分子制備的一種復(fù)雜的膠體材料,其中既有乳液滴又具有凝膠結(jié)構(gòu),兼?zhèn)淞巳橐汉湍z的雙重優(yōu)點,具有更好的貯藏穩(wěn)定性和腸道給藥性[9-10]。乳液凝膠可作為新型遞送系統(tǒng),使活性成分更好地到達靶向部位,提高生物利用度[11-13]。Lin Duanquan等[14]研究發(fā)現(xiàn),海藻酸鹽和大豆分離蛋白為基質(zhì)的乳液凝膠對番茄紅素包封后,可通過改變pH值控制釋放和提高包封率,且乳液凝膠包封提高了番茄紅素的穩(wěn)定性。大豆分離蛋白基乳液凝膠對槲皮素的包封率可達(66.62±0.98)%[15]。包封在W/O/W型乳液凝膠中的槲皮素化學(xué)穩(wěn)定性和溶解度均得以改善,有效生物利用度提高了2~4 倍[16]。由此可見,乳液凝膠在包埋和遞送活性分子方面具有優(yōu)異的性能。
酪蛋白膠束(micellar casein,MC)是乳中酪蛋白的天然存在形態(tài),具有納米級多孔結(jié)構(gòu)和兩親性,可作為一種天然載體,用于負載活性物質(zhì)[17-18]。本團隊前期研究表明,MC負載改善了PC的熱穩(wěn)定性和H2O2氧化穩(wěn)定性[19]。目前,已有研究對酪蛋白-海藻酸鈉(sodium alginate,SA)復(fù)合乳液凝膠進行了結(jié)構(gòu)和流變性分析,發(fā)現(xiàn)該乳液凝膠具有良好的持水性[20]。此外,酪蛋白酸鈉-阿拉伯糖基木聚糖復(fù)合凝膠在遞送表沒食子兒茶素沒食子酸酯時以pH值響應(yīng)模式釋放,在低pH值下可保護其不降解[21]。然而,MC基乳液凝膠性質(zhì)及其對PC的包封研究較少。
以MC、SA為基質(zhì),以葡萄糖酸-δ-內(nèi)酯(gluconateδ-lactone,GDL)為酸化試劑,制備含油量為70%的乳液凝膠,研究GDL添加量對乳液凝膠微觀結(jié)構(gòu)、穩(wěn)定性和流變行為的影響;分析乳液凝膠對PC的釋放特性。研究結(jié)果可為乳液凝膠在負載PC方面的應(yīng)用提供參考依據(jù),也可為MC在乳液凝膠中的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。
MC參照本團隊前期方法制備,將巴氏殺菌牛乳在4000×g離心30 min,所得脫脂乳進行膜過濾,截留分子質(zhì)量為100 kDa,跨膜壓力為0.4 MPa,流速為480 L/h;收集截留濃縮液后冷凍干燥至恒質(zhì)量,即得MC,測得總蛋白質(zhì)含量為(83.26±1.87)%;金龍魚大豆油 益海嘉里食品工業(yè)有限公司;SA、PC、GDL 上海麥克林生化科技有限公司;胃蛋白酶(1500 U/mg)、胰蛋白酶(>2500 U/mg)上海源葉生物科技有限公司;其他試劑均為分析純。
FD-1-50真空冷凍干燥機 北京博醫(yī)康實驗儀器有限公司;H1850臺式高速離心機 湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司;AD500S-H均質(zhì)機 上海昂尼儀器儀表有限公司;N-180M光學(xué)顯微鏡 河南兄弟儀器設(shè)備有限公司;MF52-N倒置熒光顯微鏡 廣州明美光電技術(shù)有限公司;STA449F5同步熱分析儀 德國耐馳儀器制造有限公司;ZEEnit700P火焰原子吸收光譜儀 德國耶拿分析儀器股份公司;HR-1混合流變儀 沃特世科技有限公司;BXT-SH82恒溫水浴振蕩器 上海能共實業(yè)有限公司;UV-1780雙光束紫外-可見分光光度計 島津儀器有限公司。
1.3.1 乳液凝膠的制備
準確稱取一定量的MC,溶于0.05 mol/L的磷酸鹽緩沖溶液中(pH 6.86),37 ℃恒溫水浴中磁力攪拌2 h,并添加0.02%的疊氮化鈉作為抑菌劑,制得40 mg/mL的MC溶液。將一定量SA溶于0.05 mol/L pH 6.86的磷酸鹽緩沖溶液中,37 ℃恒溫水浴中磁力攪拌至溶解,4 ℃放置過夜至完全水合,制得2%的SA溶液。
取8 mL MC溶液,分別添加0、5、10、15 mg/mL的GDL,37 ℃磁力攪拌2 min,然后與2 mL SA溶液混合,磁力攪拌2 min;取9 mL混合液添加到21 mL大豆油中,采用均質(zhì)器14000 r/min均質(zhì)3 min,制得乳液凝膠,分別記作G-0、G-5、G-10、G-15。
向MC溶液中加入4 mg/mL的PC,參照上述步驟制得乳液凝膠,分別記作G/PC-0、G/PC-5、G/PC-10、G/PC-15。
1.3.2 乳液凝膠微觀結(jié)構(gòu)分析
采用光學(xué)顯微鏡和倒置熒光顯微鏡觀察乳液凝膠的微觀結(jié)構(gòu)。用磷酸鹽緩沖液將樣品稀釋一定倍數(shù)后放置在載玻片上,采用光學(xué)顯微鏡于物鏡×40、目鏡×10下進行觀察,并用ImageJ軟件對油滴的尺寸進行統(tǒng)計。用1 mg/mL的羅丹明B對MC染色,用0.5 mg/mL的尼羅紅對油進行染色,然后制成乳液凝膠,采用熒光顯微鏡進行觀察,激發(fā)波長分別為545 nm和488 nm。
1.3.3 乳液凝膠穩(wěn)定性分析
1.3.3.1 貯藏穩(wěn)定性
將乳液凝膠分裝于小玻璃瓶中,置于4 ℃冰箱保存,動態(tài)觀察其外觀及微觀結(jié)構(gòu)。
1.3.3.2 熱穩(wěn)定性
將乳液凝膠分別置于65 ℃和80 ℃水浴中加熱30 min,自然冷卻至室溫后分析乳液凝膠的外觀和微觀結(jié)構(gòu)變化。
1.3.3.3 稀釋穩(wěn)定性
向去離子水中加入1 mol/L的HCl溶液或NaOH溶液,分別配制成pH值為1、3、4、5、7、9的水溶液,向乳液凝膠中加入3 mL不同pH值的溶液,放置7 d后對其進行外觀及顯微鏡觀察。
1.3.4 乳液凝膠中MC解離程度分析
1.3.4.1 MC解離程度分析
分別取放置0 h和72 h的乳液凝膠4000×g離心60 min;取離心后下層水相,進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)分析。水相與緩沖溶液以1∶1的比例混合,渦旋30 s,在沸水浴中加熱5 min,然后在4000×g離心4 min;上樣量為6 μL,電壓150 V,用考馬斯亮藍R250進行染色。
1.3.4.2 鈣離子的解離程度分析
采用火焰原子吸收光譜儀測定乳液凝膠離心后水相中鈣離子含量。
1.3.5 熱重(thermogravimetry,TG)分析
準確稱取13~15 mg乳液凝膠樣品,置于氧化鋁坩堝中,以空坩堝作為對照,用熱分析儀對樣品的熱穩(wěn)定性進行分析,用氮氣進行吹掃,溫度范圍為25~500 ℃,升溫速率為5 ℃/min。
1.3.6 乳液凝膠流變性測定
使用流變儀測試乳液凝膠的流變性,采用直徑為40 mm的平行板,設(shè)置間隙為1000 μm。測定溫度25 ℃,頻率掃描范圍10~100 Hz,記錄儲能模量(G’)和損耗模量(G”)。穩(wěn)定剪切掃描在剪切速率為10~300 s-1下進行。
1.3.7 乳液凝膠的體外模擬消化
參考Chang Chao等[22]的方法,稍作修改。將1 g乳液凝膠放入截留分子質(zhì)量為1 kDa的透析袋中,加入3 mL含有3.2 g/L胃蛋白酶和0.5%脂肪酶、pH 1.2的模擬胃液,將透析袋浸沒于不加酶的胃液中,于37 ℃、100 r/min下振蕩2 h,每隔0.5 h取3 mL透析液,用同體積模擬胃液補充。振蕩結(jié)束后將透析袋中的溶液pH值調(diào)為7.5,加入3 mL含有10 g/L胰蛋白酶和12 g/L豬膽鹽、pH 7.5的模擬腸液,浸沒于不加酶的腸液中,振蕩8 h;分別在指定時間點取3 mL透析液,用同體積模擬腸液補充。于波長278 nm處對透析液進行吸光度測定,PC釋放量通過同介質(zhì)下繪制的標準曲線(y=0.00642x+0.01563)計算。
由圖1a可以看出,乳液凝膠為O/W型結(jié)構(gòu),MC分布于油滴表面。由圖1b可知,乳液凝膠呈半固體狀,倒置后未見流動,說明其為凝膠。空白或負載了PC的乳液凝膠放置420 d后沒有出現(xiàn)相分離,也未見油相析出,說明凝膠具有極好的貯藏穩(wěn)定性。
由圖2可知,隨著GDL添加量的增大,乳液凝膠中油滴的平均粒徑減小,這是因為GDL添加量越大,酸化反應(yīng)越快,酸化后終點pH值越低。SA在酸的作用下由負電荷變?yōu)檎姾桑cMC間的相互作用由靜電斥力變?yōu)殪o電引力,相互結(jié)合形成復(fù)合物;另一方面,MC在酸化作用下解離出鈣離子,而鈣離子具有交聯(lián)SA的作用,因此MC與SA復(fù)合物結(jié)構(gòu)收縮,致使油滴粒徑減小[23]。相同添加量的GDL下,添加PC的乳液凝膠中油滴粒徑略小于未添加PC的乳液凝膠,這可能是由于PC與MC可通過非共價作用結(jié)合,且由于PC為聚合物,可同時與MC上多個氨基酸殘基或不同MC上的氨基酸殘基結(jié)合,起到交聯(lián)作用,使MC結(jié)構(gòu)更加緊縮和致密。因此,所有樣品中G/PC-15的油滴粒徑最小。有研究發(fā)現(xiàn),酚類分子的數(shù)量和組成可能影響乳液凝膠的物理性質(zhì)和穩(wěn)定性[24]。PC的加入使得乳液凝膠的油滴粒徑更小,有利于提升其穩(wěn)定性。


圖2 不同貯藏期乳液凝膠光學(xué)顯微鏡圖及油滴粒徑分布Fig.2 Optical microscopic images and oil droplet size distribution of emulsion gels during storage
在貯藏期間,隨著放置時間的延長,添加了GDL的凝膠中油滴的粒徑出現(xiàn)先減小后增大的趨勢,說明貯藏初期,pH值逐漸變化,乳液凝膠微觀結(jié)構(gòu)不斷調(diào)整,且其穩(wěn)定的微觀結(jié)構(gòu)形成需要較長時間。當(dāng)貯藏420 d時,油滴的粒徑與0 d樣品的粒徑相差不大,證實了乳液凝膠未發(fā)生明顯的油滴合并和析出,說明其具有極高的穩(wěn)定性,與外觀觀察結(jié)果一致。
2.2.1 熱穩(wěn)定性
如圖3所示,熱處理后,乳液凝膠倒置均未見流動,并且沒有出現(xiàn)油相析出和相分離行為,說明其熱穩(wěn)定性較高。MC在90 ℃以下具有較好的穩(wěn)定性,而且向蛋白質(zhì)中添加多糖可以提高凝膠穩(wěn)定性[25-26]。另一方面,擁擠的油滴限制了油滴的運動,降低了其在熱處理過程中合并析出的可能性,提升了乳液凝膠穩(wěn)定性。因此MC與SA形成的乳液凝膠具有較高的熱穩(wěn)定性。




圖3 熱處理后乳液凝膠的外觀、光學(xué)顯微鏡圖及油滴粒徑分布Fig.3 Appearance,optical microscopic images and oil droplet size distribution of emulsion gels after heat treatment at different temperatures
同一樣品經(jīng)過不同溫度熱處理后油滴粒徑不同。其中,65 ℃處理樣品油滴粒徑小于80 ℃。這是因為當(dāng)溫度達到80 ℃時,MC可能發(fā)生熱聚集,部分小油滴出現(xiàn)合并現(xiàn)象,導(dǎo)致粒徑增大[27]。
2.2.2 稀釋穩(wěn)定性
將制備的乳液凝膠浸泡在不同pH值溶液中放置7 d后的表觀狀態(tài)如圖4所示。所有凝膠均具有較好的酸堿穩(wěn)定性,未見油相析出。經(jīng)不同pH值溶液處理后,乳液凝膠G-0上清液具有一定程度的渾濁,其中pH 1、7、9時渾濁程度較大,而pH 5時上清液澄清透明。這是因為MC在遠離等電點的pH值下溶解性較好,凝膠中的MC在水溶液稀釋下因溶解進入了稀釋液中。另外,G/PC-0上清液較G-0上清液澄清,說明PC具有交聯(lián)MC的作用,使其更好地固定在凝膠網(wǎng)絡(luò)中,難以溶出。添加GDL后,乳液凝膠在不同pH值下稀釋后上清液較為澄清,因為MC經(jīng)GDL酸化,逐漸團聚或沉淀,穩(wěn)定性提升,在不同pH值下難以溶出。由此可見,GDL的添加提升了乳液凝膠的酸堿穩(wěn)定性,使其在pH 1~9范圍內(nèi)保持凝膠結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,有利于乳液凝膠在酸堿環(huán)境中的加工。

圖4 不同pH值下乳液凝膠的外觀Fig.4 Appearance of emulsion gels at different pH
通過乳液凝膠在不同pH值溶液中浸泡后油滴粒徑的變化進一步評價其酸堿穩(wěn)定性,如表1所示,不同pH值溶液浸泡后乳液凝膠油滴粒徑不同;溶液pH值由低到高變化時,油滴的平均粒徑逐漸增大,即pH 1時油滴粒徑最小,pH 9時粒徑最大。這是因為MC在酸化過程中結(jié)構(gòu)變得更加致密,且充斥在油滴間的SA由負電荷變?yōu)檎姾桑cMC形成靜電引力而結(jié)合在一起,進一步促使油滴粒徑收縮[28]。當(dāng)pH 9時,MC所帶負電荷增加,結(jié)構(gòu)變得松散,因此油滴粒徑增大。

表1 不同pH值下乳液凝膠中油滴的平均粒徑Table 1 Average size of oil droplets in emulsion gels at different pH μm
圖5 為乳液凝膠的T G 和微商熱重(derivative thermogravimetry,DTG)曲線。所有樣品在100 ℃內(nèi)出現(xiàn)第一失重階段,為水分蒸發(fā)所致。SA的第二失重階段在225~275 ℃,為其熱分解所致,分解溫度為237 ℃。MC在200~460 ℃出現(xiàn)第2次失重,為蛋白質(zhì)的熱分解,分解溫度為316 ℃。PC的降解溫度為295 ℃。油的失重主要發(fā)生在320~460 ℃范圍內(nèi),分解溫度為406 ℃,殘留量為1.84%,基本分解完全。乳液凝膠的第二失重階段與油類似,其分解溫度為407.5 ℃,這是因為乳液凝膠中70%為油相。但是,乳液凝膠殘余量大于油,因為其中含有SA和MC。另外,由于GDL和PC添加量較少,對乳液凝膠的TG曲線及分解溫度沒有顯著影響。

圖5 乳液凝膠的DTG和TG曲線Fig.5 DTG and TG curves of emulsion gels
2.4.1 MC的解離程度分析
對乳液凝膠放置0 h和72 h的離心清液進行SDS-PAGE分析,結(jié)果如圖6所示。就新制備的乳液凝膠而言,未添加GDL的樣品上清液基本沒有酪蛋白條帶,說明酪蛋白以膠束態(tài)存在,全部位于凝膠內(nèi)部用于乳化和穩(wěn)定油滴。添加GDL后,上清液中出現(xiàn)酪蛋白條帶,其含量在GDL添加量為10 mg/mL時達到最大值。當(dāng)GDL添加量為15 mg/mL時,酪蛋白條帶消失,且乳清蛋白含量降低,明顯低于G-0。GDL添加量較低時,雖然酸化程度較弱,但仍然在短時間內(nèi)引起MC的局部酸化,使其出現(xiàn)輕度解離,因此上清液中出現(xiàn)酪蛋白單體,且其含量隨著GDL添加量的增大而增大。當(dāng)GDL添加量為15 mg/mL時,其對局部接觸的MC酸化程度較強,pH值迅速下降,MC尚未解離便開始聚沉,因此上清液中未見酪蛋白單體。添加PC后,上清液中酪蛋白解離程度與未添加PC的乳液凝膠變化趨勢一致,但酪蛋白單體含量明顯低于未添加PC組,可見PC具有交聯(lián)酪蛋白的作用,使其解離程度降低,穩(wěn)定性提高[29]。

圖6 乳液凝膠放置0 h和72 h后離心清液的SDS-PAGE圖Fig.6 SDS-PAGE profiles of the supernatant from emulsion gels after standing for 0 and 72 h
就放置72 h后的乳液凝膠而言,在不添加PC的情況下,GDL添加量為0、5 mg/mL的乳液凝膠上清液中酪蛋白單體含量高于0 h的樣品,這是因為隨著放置時間的延長,MC在SA的靜電斥力作用下出現(xiàn)了輕度解離,加上少量GDL的酸化誘導(dǎo)并未達到等電點,使MC解離程度增大。添加PC后,其通過交聯(lián)作用將酪蛋白連接在一起,GDL酸化使交聯(lián)的MC相互聚集,成為一個整體,加上SA的靜電作用,使MC解離程度大幅度降低,因此上清液中未見酪蛋白單體。由此可見,GDL添加量為15 mg/mL時,可防止MC的解離;添加PC也可降低MC的解離程度,提高其穩(wěn)定性。
2.4.2 MC中鈣離子的解離程度分析
如圖7所示,未添加PC時,隨著GDL添加量的增大,清液中鈣離子含量顯著增加(P<0.05),可見GDL誘導(dǎo)了MC酸化,鈣離子解離[30-32]。添加PC后,清液中鈣離子濃度隨著GDL添加量的增加而增大,但當(dāng)GDL添加量為0~10 mg/mL時,其鈣離子含量均低于未添加PC的樣品,再次證實了PC的交聯(lián)作用;當(dāng)GDL添加量為15 mg/mL時,清液中鈣離子含量迅速增大,且大于未添加PC的樣品。這可能是因為PC交聯(lián)使酪蛋白分子間、酪蛋白與SA之間的間隙增大,酸化雖然使酪蛋白、SA相互聚集,但分子間具有一定的間隙,因此鈣離子易于逸出至清液。

圖7 乳液凝膠上清液鈣含量Fig.7 Calcium concentration in the supernatant of emulsion gels
如圖8a所示,乳液凝膠的表觀黏度隨剪切速率的增加而降低,表現(xiàn)出剪切稀化行為,因為隨著剪切速率的增加,乳液凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)被破壞,油滴開始出現(xiàn)移動,表觀黏度降低[33]。隨著GDL添加量的增大,乳液凝膠表觀黏度增大,這歸因于GDL改變了凝膠體系的pH值,使MC與SA分子間的相互作用發(fā)生變化,油滴粒徑減小,凝膠結(jié)構(gòu)變得致密,所以表觀黏度增加。另外,由于PC與MC和SA之間產(chǎn)生交聯(lián)作用,因此添加PC后乳液凝膠的表觀黏度均高于未添加組。


圖8 乳液凝膠的表觀黏度和流變性Fig.8 Apparent viscosity and rheological properties of emulsion gels
如圖8b所示,在角頻率低于100 rad/s時,所有樣品的G’大于G”,說明在此頻率范圍內(nèi)所有樣品都表現(xiàn)出較強的彈性特征且為固態(tài)[34]。隨著角頻率的增大,所有樣品的G’和G”逐漸增加,這是凝膠的典型動態(tài)流變特性[35]。隨著GDL添加量的增加,乳液凝膠的G’和G”交叉點向更高頻率移動,說明凝膠結(jié)構(gòu)的松弛過程和結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)化需要更長時間和更高頻率,且G’和G”之間的差異增大,表明在較短的時間尺度上液滴間運動減少,主要為凝膠狀行為[33]。因此,GDL添加量越多,乳液凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)越穩(wěn)定。GDL添加量越大,乳液凝膠體系的pH值越小,MC與SA之間的相互作用由靜電斥力變?yōu)殪o電引力,使得乳液凝膠的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)更加緊密,更不容易被破壞。加入PC后,乳液凝膠的G’和G”交叉點向更高頻率移動,說明PC與MC之間的交聯(lián)作用使得乳液凝膠的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)更加穩(wěn)定。
如圖9所示,在2 h的模擬胃液消化過程中,乳液凝膠中PC的釋放率均小于游離PC的釋放率,這是因為游離PC在酸性條件下具有較好的溶解性,而乳液凝膠中的PC被結(jié)合和包覆于凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)中,難以擴散至模擬胃液中。在模擬腸液中,乳液凝膠中PC的釋放率顯著高于游離PC。就乳液凝膠組而言,模擬消化4~8 h時,未添加GDL的乳液凝膠中PC釋放率最低,其次為G/PC-5;G/PC-10和G/PC-15中PC的累計釋放量最高,且二者差異不大。

圖9 模擬胃腸條件下乳液凝膠中PC的釋放曲線Fig.9 Release curves of PC from emulsion gels under simulated gastrointestinal conditions
PC在酸性條件下穩(wěn)定,而在中性和堿性條件下會快速降解[36]。因此,游離PC在模擬腸液環(huán)境中發(fā)生降解,其釋放率最低。經(jīng)過乳液凝膠包封后,PC被包封于凝膠網(wǎng)絡(luò)內(nèi)部,難以直接接觸腸液,從而保護了其結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,因此釋放率較高。另外,添加適量的GDL賦予了乳液凝膠酸性環(huán)境,可用于抵消腸液的弱堿性,進而保護了PC的穩(wěn)定。因此,當(dāng)GDL添加量為10、15 mg/mL時PC的釋放率最高。由此可見,添加GDL有利于提升乳液凝膠中PC的穩(wěn)定性。有研究指出,果膠負載對胃腸系統(tǒng)中的花青素具有保護作用,在腸道消化過程中釋放更多的花青素,并提高其生物利用度[36],這與本實驗的研究結(jié)果一致。
以MC和SA為基質(zhì),以GDL為酸化試劑,制備了含油量70%的乳液凝膠。該乳液凝膠貯藏420 d后仍保持結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,未見油相析出。隨著GDL添加量的增加,乳液凝膠中油滴粒徑減小。添加5 mg/mL和10 mg/mL GDL誘導(dǎo)了MC的解離,部分酪蛋白單體析出;但當(dāng)其添加量為15 mg/mL時,酪蛋白單體未見析出,且在GDL的酸化作用下,MC中大量鈣離子解離,與SA交聯(lián),顯著改善了乳液凝膠的穩(wěn)定性和黏彈性。因此,隨著GDL添加量的增大,乳液凝膠的表觀黏度和儲能模量增大。另外,添加PC也具有提高乳液凝膠黏彈性的作用。GDL誘導(dǎo)酸化后,乳液凝膠的酸性環(huán)境可有效防止PC在腸道環(huán)境下的降解,提高PC的累計釋放率,有利于改善其生物利用度。
由此可見,GDL酸化的MC-SA基乳液凝膠負載可顯著改變PC的腸道釋放特性,且該體系具有極高的穩(wěn)定性,具備開發(fā)功能食品的潛力。