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plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定

2023-02-20 05:22:42方梓鵬盧曉晴李志豪羅偉浩石現(xiàn)麗

方梓鵬,盧曉晴,李志豪,羅偉浩,石現(xiàn)麗

(廣東藥科大學(xué)生命科學(xué)與生物制藥學(xué)院,廣東廣州 510006)

CRISPR/Cas 系統(tǒng)是一種最新的由RNA 指導(dǎo)Cas 核酸酶對(duì)靶向基因進(jìn)行特定編輯的技術(shù)。該系統(tǒng)最早發(fā)現(xiàn)于細(xì)菌中,是細(xì)菌對(duì)抗噬菌體的一種適應(yīng)性免疫防御機(jī)制。CRISPR(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,規(guī)律間隔成簇短回文重復(fù)序列),是存在于細(xì)菌和古菌基因組內(nèi)的一段重復(fù)序列。Cas 蛋白是一種CRISPR 關(guān)聯(lián)蛋白,是一種核酸內(nèi)切酶,能與CRISPR基因轉(zhuǎn)錄編輯產(chǎn)生的RNA形成蛋白-RNA復(fù)合體。該復(fù)合體通過RNA 特異識(shí)別DNA,產(chǎn)生靶向定位和切割,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)靶向基因的敲除或者編輯。在噬菌體感染細(xì)菌的過程中,細(xì)菌會(huì)提取噬菌體的一部分DNA 片段,將其整合儲(chǔ)存在CRISPR 位點(diǎn)。之后,細(xì)菌會(huì)將CRISPR 位點(diǎn)轉(zhuǎn)錄加工后的RNA 與Cas 蛋白形成復(fù)合物。該復(fù)合物可以通過RNA上的特異序列(來自于噬菌體DNA的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物)識(shí)別再次感染細(xì)菌的噬菌體DNA,啟動(dòng)Cas 蛋白對(duì)噬菌體DNA 的切割,進(jìn)而阻止噬菌體在細(xì)菌中的增殖[1]。通過張鋒團(tuán)隊(duì)[2]的改造,目前CRISPR/Cas 系統(tǒng)已經(jīng)成為非常成熟的基因編輯或基因敲除的工具。本研究所使用的plenti-Crispr V2 系統(tǒng)(Addgene #52961)也是張鋒團(tuán)隊(duì)在2014 年開發(fā)。該質(zhì)粒包含Crispr sgRNA 和Cas9蛋白等元件,只需根據(jù)靶基因的PAM(位點(diǎn))設(shè)計(jì)sgRNA 的靶序列,再根據(jù)sgRNA 靶序列設(shè)計(jì)并合成sgRNA 引物,構(gòu)建plenti-Crispr V2 sgRNA 重組質(zhì)粒,即可實(shí)現(xiàn)基因敲除的目的;或者在轉(zhuǎn)染plenti-Crispr V2 sgRNA 重組質(zhì)粒的同時(shí)再轉(zhuǎn)染靶基因編碼位點(diǎn)對(duì)應(yīng)的同源序列即可實(shí)現(xiàn)基因的編輯[2]。

ZNF703 是鋅指蛋白家族的成員之一,通過參與組蛋白去乙酰化而抑制轉(zhuǎn)錄,屬于轉(zhuǎn)錄抑制因子;該蛋白由590 個(gè)氨基酸組成,具有1 個(gè)C2H2 型鋅指結(jié)構(gòu)。ZNF703 位于人類8 號(hào)染色體上,而該染色體上的多個(gè)基因都與許多腫瘤的發(fā)生進(jìn)展密切相關(guān)[3]。ZNF703 已被報(bào)道高表達(dá)于乳腺癌、頭頸癌、卵巢癌、肺癌、胃癌、結(jié)腸癌等多種腫瘤中,是一種促癌因子[2,4-8]。但是,目前關(guān)于其在腫瘤發(fā)生、發(fā)展中的功能還不明確。因此,本研究構(gòu)建plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 質(zhì)粒,并在HCT-116 細(xì)胞系中驗(yàn)證其敲除效果,將有望為在腫瘤細(xì)胞中敲除ZNF703基因、探究ZNF703的功能打下基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

DL500 DNA Marker(TaKaRa,貨號(hào):3590A);DL15000 DNA Marker(TaKaRa,貨號(hào)3582A);rTaq酶(TaKaRa,貨號(hào)DR100A);10×NEB Buffer 3.1(NEB#B7203S);10×Loading Buffer(TaKaRa,貨號(hào)9157);核酸染色劑(Biosharp,BS356A)。

1.2 方法

1.2.1ZNF703 sgRNA 雙鏈寡核苷酸片段的制備根據(jù)GFP Web Portal-Home(broadinstitute.org)網(wǎng)頁中的CRISPpick 工具設(shè)計(jì)ZNF703 的靶序列,加上黏性末端合成ZNF703 sgRNA 的前引物和后引物(Forward primer 和Reverse primer,詳細(xì)設(shè)計(jì)過程參見結(jié)果2.1 部分)。在1.5 mL 的離心管中加入2 μLZNF703 sgRNA 前引物、2 μLZNF703 sgRNA后引物、2 μL 10×T4 Ligation Buffer、14 μL dd H2O,混勻后置于裝有1 L 95 ℃熱水的燒杯,待自然冷卻至室溫,完成退火,得到ZNF703 sgRNA雙鏈寡核苷酸片段。

1.2.2 plenti-CrisprV2 質(zhì)粒酶切回收在1.5 mL離心管中加入2.5 μL 10×NEB Buffer(r 3.1)、1 μL 1×BsmBI酶、21.5 μL plenti-Crispr V2 質(zhì)粒配制酶切體系,混勻后放置55 ℃水浴過夜。用1%瓊脂糖凝膠分離酶切產(chǎn)物,取6 μL DL15000 Marker、25 μL 酶切體系分別加入1 μL 和2.5 μL 核酸染料(SYBR Gold,Thermo Fisher,貨號(hào):S11494),混勻上樣,電泳至適當(dāng)位置后,紫外凝膠成像儀(北京賽智創(chuàng)業(yè)科技有限公司創(chuàng),SmartGel 6000)照膠,切取目的片段(12 988 bp),使用DNA 純化試劑盒(天根試劑盒DNA 純化膠回收試劑盒DP214)回收目的片段(12 988 bp)。

1.2.3 連接、轉(zhuǎn)化和克隆鑒定 在1.5 mL 離心管中配制連接體系:2 μL plenti-Crispr V2 酶切回收片段(12 988 bp)、4 μLZNF703 sgRNA 雙鏈寡核苷酸片段、1 μL T4 Buffer、0.8 μL T4 DNA Ligase、2.2 μL dd H2O,混勻放置室溫2 h。連接體系中加入100 μL DH5α感受態(tài)細(xì)胞,冰浴15 min,42 ℃水浴熱擊90 s,再冰浴10 min;加入200 μL LB 培養(yǎng)基,37 ℃220 r/min 搖床中培養(yǎng)1 h;4 000 r/min,3 min,收集菌液,將菌液均勻涂布在氨芐LB 瓊脂平板上,37 ℃,培養(yǎng)過夜。

1.2.4 單克隆鑒定 挑取單克隆,加入500 μL LB 培養(yǎng)基,37 ℃220 r/min 搖床中培養(yǎng)1 h,進(jìn)行PCR鑒定,PCR 體系如下:12.5 μL rTaq 聚合酶、3 μL Template(單克隆培養(yǎng)得到的菌液)、1 μL 上游引物(Crisp-F)、1 μL 下游引物(Crisp-R)、7.5 μL dd H2O,PCR 條件:95 ℃2 min,95 ℃10 s,60 ℃30 s,72 ℃1 min,30個(gè)循環(huán),4 ℃存放;用2%瓊脂糖凝膠鑒定,在25 μL 的PCR 體系和6 μL 的DNA marker 中分別加入2.5 μL 和1 μL 核酸染料,上樣,電泳,紫外凝膠成像儀照膠拍照。

1.2.5 測序鑒定 將上述單克隆鑒定陽性的菌種接種到5 mL含有氨芐的LB培養(yǎng)基中,37 ℃220 r/min搖床中培養(yǎng)過夜,利用天根(貨號(hào):DP103)質(zhì)粒小提試劑盒提取質(zhì)粒,送去生工生物工程公司進(jìn)行雙向測序。測序上游引物是hU6F,測序的下游引物是Crisp-R引物。

1.2.6 細(xì)胞培養(yǎng) 利用含有10%(φ)胎牛血清(Invitrogen,10270106)和100 u/mL 青霉素/鏈霉素(Invitrogen,15140122)的DMEM(Invitrogen,12800017)培養(yǎng)基培養(yǎng)HEK293T,HCT-116 細(xì)胞,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱(5%CO2,37℃)中生長。

1.2.7 構(gòu)建ZNF703 敲除HCT-116 細(xì)胞系 利用脂質(zhì)體2000(Invitrogen 公司,11668)將構(gòu)建成功的plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 質(zhì)粒和psPAX2、PMD2.G 質(zhì)粒同時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293T 細(xì)胞,包裝病毒,分別收取質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后48 h和72 h的病毒。提前1天將HCT-116 細(xì)胞按5×106接種到10 cm 細(xì)胞培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)過夜。病毒、終質(zhì)量濃度為8 μg/mL 的聚凝胺和新鮮培養(yǎng)基一起加到HCT-116 細(xì)胞中,進(jìn)行感染。感染2 d 后,利用含有5 μg/mL 嘌呤霉素的新鮮培養(yǎng)基進(jìn)行篩選,篩選2~3 d后,存活下來的陽性細(xì)胞系可用于后續(xù)的鑒定。

1.2.8 利用q-PCR 驗(yàn)證ZNF703 敲除效果 提前1 d將以上篩選得到的嘌呤霉素陽性的細(xì)胞和HCT-116對(duì)照細(xì)胞按3×105分別種到2 個(gè)3 cm 細(xì)胞培養(yǎng)皿中。用1×PBS 洗2 次后,分別加入300 μL Trizol(Invitrogen,15596-018),用刮子將細(xì)胞刮下來收集到1.5 mL的離心管中,充分裂解后,加入60 μL三氯甲烷,振蕩混勻,靜置分層,4 ℃條件下12 000g離心20 min ;取上清,加入等體積異丙醇,室溫靜置10 min,4 ℃條件下12 000g離心10 min;棄上清,得到RNA 沉淀。用70%(φ)酒精清洗沉淀2 次,用30 μL DEPC 處理水溶解RNA。使用nanodrop 測定RNA的濃度,使用SYBR PrimeScriptTMRT-PCR試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn),取400 ng 總RNA 用于反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)用(10 μL 反應(yīng)體系),同時(shí)使用隨機(jī)引物(Random 6 mers)和oligo dT 引物,反應(yīng)條件為:37 ℃15 min,85 ℃5 s。使用擎科生物公司的熒光定量PCR試劑2×TSINGKE?Master qPCR Mix(TSE201)進(jìn)行定量PCR,mRNA 的表達(dá)量以GAPDH 作為內(nèi)參進(jìn)行相對(duì)定量。引物序列如下:

ZNF703 前引物:5′-TTGGGCCTAAGCCGG TAC CAC-3′;后引物:5′-AGGCTGAAGCTAGTCTCTGT CCA-3′;GAPDH 前引物:5′-CCATGTTTGTGATGGG TGT GAA CCA-3′;后引物:5′-ACCAGTGGATGCA GGG ATG ATG TTC-3′

使用ΔΔCt法計(jì)算ZNF503 mRNA 的相對(duì)表達(dá)量,不同組之間或不同基因之間的相對(duì)表達(dá)量用公式2-ΔΔCt計(jì)算。

2 結(jié)果

2.1 ZNF703 sgRNA靶向序列的設(shè)計(jì)

利用GFP Web Portal-Home(broadinstitute.org)網(wǎng)頁中的CRISPpick 工具分別設(shè)計(jì)靶向人源ZNF703 和鼠源ZNF703 的sgRNA,得到的靶向人源ZNF703和靶向鼠源ZNF703的sgRNA 靶序列列表,取交集部分,再從中選取特異性(specificity)最高、有效性(efficiency)最好的sgRNA 靶序列。人源ZNF703 基因組序列中有2 個(gè)外顯子,鼠源zfp703(ZNF703 在鼠中的命名)基因組序列中含有3 個(gè)外顯子,所選取的特異性最高、有效性最好的一條sgRNA 靶序列能靶向人源ZNF703 或鼠源zfp703 基因組中的第一外顯子的共同序列,序列如圖1B 所示:5′-CCAAGGACACCCGAAAGCAG-3′。再根據(jù)plenti-CrisprV2 質(zhì)粒的操作說明(如圖1A),在靶序列的兩端分別加上黏性末端(如圖1B),得到ZNF703 sgRNA 的引物:前引物(F):5′-CACCGC CAAGGACACCCGAAAGCAG-3′;后引物(R):5′-AAACCTGCTTTCGGGTGTCCTTGGC-3′。將引物送去生工生物公司合成,并進(jìn)行退火,得到可以直接用于連接的ZNF703 sgRNA 雙鏈寡核苷酸片段。

圖1 ZNF703 sgRNA引物設(shè)計(jì)Figure 1 ZNF703 sgRNA primer design

2.2 plenti-Crispr V2 質(zhì)粒酶切回收

plenti-Crispr V2質(zhì)粒的構(gòu)建需要使用BsmBI限制性內(nèi)切酶,BsmBI 屬于IIs 類的限制性核酸內(nèi)切酶,會(huì)在離它的不對(duì)稱識(shí)別位點(diǎn)(CGTCTC)一側(cè)的下游N1 和N5 切割DNA 雙鏈,產(chǎn)生黏性末端(如圖2A)。雖然BsmBI 有特定的識(shí)別位點(diǎn),但是切割位點(diǎn)可以不同,進(jìn)而可以產(chǎn)生不同的黏性末端。在plenti-Crispr V2 質(zhì)粒中有2 個(gè)不同的BsmBI 酶切位點(diǎn)(如圖2B、2C),分別在2 234 bp 和4 119 bp 處,所以用BsmBI 酶切plenti-Crispr V2 可得到2 個(gè)條帶:12 988 bp 和1 885 bp;在plenti-Crispr V2 的質(zhì)粒骨架(12 988 bp)上會(huì)產(chǎn)生2 個(gè)不同的黏性末端。而與這2 個(gè)黏性末端對(duì)應(yīng)的序列,在ZNF703 sgRNA 引物設(shè)計(jì)的時(shí)候已經(jīng)加到ZNF703 sgRNA靶序列的兩端,所以回收的plenti-Crispr V2 的質(zhì)粒骨架(12 988 bp)可以直接用于構(gòu)建plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA質(zhì)粒。圖2D顯示,BsmBI酶切plenti-Crispr V2 質(zhì)粒后的1%瓊脂糖凝膠電泳圖顯示得到2 個(gè)條帶:12 988 bp 和1885 bp,符合預(yù)期。本實(shí)驗(yàn)切膠回收了12 988 bp的條帶。

圖2 用BsmB I 酶切回收plenti-Crispr V2質(zhì)粒Figure 2 Purification of plenti-Crispr V2 backbone after BsmB I digestion

2.3 連接轉(zhuǎn)化得到的陽性克隆

將上述回收的plenti-Crispr V2骨架(12 988 bp)與ZNF703 sgRNA 雙鏈寡核苷酸片段通過T4 DNA連接酶連接,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,并涂于氨芐LB 瓊脂平板上,培養(yǎng)過夜后,得到氨芐篩選陽性單克隆菌落。見圖3。

圖3 plenti-Crispr V2(12 988 bp)骨架和ZNF703 sgRNA雙鏈寡核苷酸片段連接、轉(zhuǎn)化后得到的大腸桿菌陽性克隆Figure 3 Positive clone of E.coli obtained by connecting and transforming the plenti-Crispr V2 (12 988 bp) skeleton and ZNF703 sgRNA double stranded oligonucleotide fragment

2.4 菌落PCR鑒定和酶切鑒定

在重組質(zhì)粒plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 質(zhì)粒的sgRNA 序列的上、下游設(shè)計(jì)菌落PCR 的引物(Crisp-F:5′-GTGGAAAGGACGAAACACCG-3′;Crisp-R:5′-CTAGGCACCGGATCAATTGC-3′(如圖4A));用Crisp-F 和Crisp-R引物來擴(kuò)增含 有ZNF703 sgRNA靶序列的DNA片段(248 bp)。并用2%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,在上述得到的7個(gè)陽性克隆中,只有7號(hào)在248 bp處有明顯的條帶出現(xiàn)(如圖4B),初步確認(rèn)7 號(hào)陽性克隆的大腸桿菌中有plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 重組質(zhì)粒。取7 號(hào)大腸桿菌進(jìn)行培養(yǎng)過夜、提取質(zhì)粒。為了保證結(jié)果的準(zhǔn)確性,用提取的plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 質(zhì)粒再次進(jìn)行了EcoRⅠ酶切鑒定。在plenti-Crispr V2中只有1個(gè)EcoRI酶切位點(diǎn),且該位點(diǎn)在plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 重組質(zhì)粒被保存了下來,所以酶切會(huì)產(chǎn)生和質(zhì)粒大小相同的一條帶(13 013 bp)(如圖4C)。經(jīng)過以上實(shí)驗(yàn),初步得到了plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA重組質(zhì)粒。

圖4 plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA菌落鑒定Figure 4 Colony identification of plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA by colony-PCR and EcoR I digestion

2.5 質(zhì)粒測序結(jié)果

選擇重組質(zhì)粒plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA質(zhì)粒的sgRNA序列上游的通用引物hU6F和sgRNA序列下游的Crisp-R引物進(jìn)行雙向測序(引物位置如圖5A),測序結(jié)果顯示ZNF703 sgRNA 靶序列已經(jīng)成功插入plenti-Crispr V2質(zhì)粒中。見圖5B。

圖5 plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA質(zhì)粒測序Figure 5 Sequencing of the plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA plasmid

2.6 在HCT-116 細(xì)胞系中,驗(yàn)證plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA靶向敲除ZNF703的效果

利用慢病毒包裝體系構(gòu)建ZNF703 敲除的HCT-116 細(xì)胞系,利用熒光定量PCR 檢測敲除效果。q-PCR 結(jié)果顯示(圖6)和對(duì)照HCT-116 細(xì)胞相比,在ZNF703 敲除HCT-116 細(xì)胞系中,ZNF703 的敲除效果在60%以上。結(jié)果表明,所構(gòu)建的plenti-Crispr V2ZNF703 sgRNA 可以特異有效地敲除ZNF703。

圖6 plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA 靶向敲除ZNF703 的效果Figure 6 Effect of targeted knockout of ZNF703 by plenti-Crispr V2 ZNF703 sgRNA

3 討論

腫瘤已經(jīng)成為全世界最主要的人類致死原因之一,也是中國居民最主要的死亡原因之一。目前對(duì)于腫瘤的治療方法包括手術(shù)切除、化療、放療、靶向藥物、免疫治療等,但是由于缺乏有效的早期篩查方法,腫瘤具有復(fù)發(fā)、轉(zhuǎn)移及對(duì)化療、放療、靶向藥物產(chǎn)生抗藥性,以及對(duì)免疫治療臨床有效反應(yīng)率低等,目前腫瘤仍舊是人類亟待攻克的醫(yī)學(xué)難題。因此深入探索腫瘤的發(fā)生、發(fā)展過程中的分子機(jī)制將為腫瘤治療提供支持。

鋅指703(ZNF703)屬于NocA/Nlz、Elbow、Tlp-1(NET)家族,是一種高度保守的轉(zhuǎn)錄抑制因子。研究表明,ZNF703 和許多種癌癥的腫瘤發(fā)生和不良預(yù)后有關(guān),并且在乳腺癌等多種腫瘤中高表達(dá),能顯著提高腫瘤細(xì)胞的增殖、遷移、侵襲活性。因此,為了探究ZNF703 在腫瘤中發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移、惡化過程中的分子生物功能,本研究利用GPP Web Portal-Home(broadinstitute.org)中的CRISPpick 工具,根據(jù)人源ZNF703 或鼠源zfp703 基因序列中的相同部分序列設(shè)計(jì)ZNF703 sgRNA 靶向序列,該序列可以同時(shí)高效靶向人源ZNF703 和鼠源zfp703。并構(gòu)建plenti-Crispr V2 sgZNF703 重組質(zhì)粒,利用CRISPR/Cas9 基因編輯工具敲除ZNF703 基因。利用慢病毒包裝體系,在HCT-116 細(xì)胞中通過構(gòu)建ZNF703敲除細(xì)胞系,并利用熒光定量PCR 技術(shù)驗(yàn)證ZNF703的敲除效果。

CRISPR/Cas9 技術(shù)是繼“鋅指核酸內(nèi)切酶”(ZFN)和“類轉(zhuǎn)錄激活因子效應(yīng)物核酸酶”(TALEN)后的第3代,最新的基因編輯技術(shù),能通過guide-RNA 靶向定位產(chǎn)生DNA 雙鏈切割,DNA 雙鏈切割損傷可以通過非同源性末端相連修復(fù)(NHEJ)或同源修復(fù)(HDR)。NHEJ 的結(jié)果就是從基因組水平的基因敲除效果。HDR 的結(jié)果就是可以實(shí)現(xiàn)基因特定位點(diǎn)的精確編輯。雖然CRISPR/Cas9 技術(shù)更多是應(yīng)用在基因編輯上,但是其應(yīng)用在基因敲除上也比以往的基因敲除工具更具優(yōu)勢(shì):該技術(shù)可以實(shí)現(xiàn)基因組水平的基因敲除,所以敲除效果更加穩(wěn)定。現(xiàn)有的siRNA、shRNA 等基因敲除技術(shù)都是mRNA 水平的降低,所以不如CRISPR/Cas9技術(shù)的敲除效果穩(wěn)定。

綜上所述,本研究成功構(gòu)建了plenti-Crisp V2ZNF703 sgRNA 重組質(zhì)粒,并通過構(gòu)建ZNF703敲除HCT-116 細(xì)胞系以及利用熒光定量PCR 驗(yàn)證。所構(gòu)建plenti-Crisp V2ZNF703 sgRNA 可以有效地敲除ZNF703 基因,為進(jìn)一步探索ZNF703 在腫瘤中的分子生物學(xué)功能打下了基礎(chǔ)。

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