張建棟 李梁和 程海玉 姜洞彬 楊勤 詹瑋
作者單位:550004 貴陽 貴州醫科大學臨床醫學院(張建棟,姜洞彬);貴州醫科大學附屬腫瘤醫院胃腸外科(李梁和);貴州醫科大學附屬醫院肛腸外科(程海玉,詹瑋);貴州醫科大學病理生理學教研室(楊勤)
肝癌是人類最常見的惡性腫瘤之一,最新一項流行病學調查顯示,亞太地區肝臟疾病死亡的患者中43.6%為肝癌患者,高于美國33.9%及歐洲地區39.4%[1]。由于肝臟結構和功能特殊性,肝癌早期確診和就診率不高,是肝癌病死率偏高和5年生存率較低的原因之一[2-4]。肝癌的發生、發展被認為與異常的組蛋白乙?;揎椝疥P聯密切,在肝癌細胞組蛋白H3的肽鏈結構中,位于第9位的賴氨酸常常發生乙酰化修飾 (histone H3 lysine 9 acetylation, acH3K9) 異常,而關于肝癌細胞組蛋白H3K14、H3K18、H3K27位點的乙?;揎椀难芯旷r有報道。本實驗旨在探索人肝癌細胞株MHCC-97L中組蛋白乙?;揎椀南嚓P位點的變化情況,以期了解相關位點組蛋白乙酰化與肝癌發生之間的相關性,旨為臨床肝癌的早期診療和藥物靶點設計和藥物開發提供參考。
人正常肝細胞株LO2及人低轉移性肝癌細胞株MHCC-97L由貴州醫科大學病理生理實驗室保存;胎牛血清、DMEM培養基購自Gibco公司;DNaseⅠ、彩虹Maker購于Solarbio公司;細胞裂解液、蛋白酶抑制劑、BAC蛋白定量試劑盒、Annexin V-FITC/PI細胞凋亡檢測試劑盒、AlexaFiuor488標記山羊抗小鼠IgG(H+L)、DyLight549標記山羊抗兔IgG(H+L)均購自上海碧云天公司;E-Plate檢測板購自埃森生物有限公司;acH3K14、acH3K18、acH3K27抗體購于Abcam公司,低速多管架自動平衡離心機TDZ-WS,購于湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司。
(一)體外細胞培養 復蘇人正常肝LO2細胞及人低轉移性肝癌MHCC-97L細胞,分別置于含青、鏈霉素及10%胎牛血清的DMEM培養基中培養(溫度37 ℃,CO2體積分數5%),根據細胞生長狀態,及時進行培養基換液,細胞傳代,取對數生長期細胞用于實驗研究。
(二)RTCA檢測細胞增殖情況 向E-Plate檢測板中加入培養基并測定背景阻抗值;向相同培育條件下的兩組E-Plate檢測板中加入適量狀態良好的人正常肝LO2細胞或人低轉移性肝癌MHCC-97L細胞,室溫超凈臺內放置30 min;后置于37 ℃、CO2體積分數為5%、飽和濕度的培養箱,于培養箱中予RTAC xcell-Ligence動態觀察對數增長的LO2細胞或MHCC-97L細胞,進行實時動態的細胞增殖檢測并將二者的增長曲線繪制成圖。
(三)免疫熒光實驗對比細胞凋亡情況 分別取對數生長期的人正常肝LO2細胞、人低轉移性肝癌MHCC-97L細胞于培育皿中孵育培養,培養48 h后使用Annexin V-FITC/PI雙染法,順序加入Annexin V-FITC結合液15 μL/皿,Annexin V-FITC 5 μL/皿,PI 10 μL/皿,室溫搖床避光孵育20 min,倒置熒光顯微鏡下觀察細胞形態,分析細胞凋亡情況。
(四)提取細胞核及核蛋白制備 通過核漿分離技術提取人正常肝LO2細胞及人低轉移性肝癌MHCC-97L細胞核蛋白,按每1×106個細胞比率加入裂解液100 μL,核蛋白酶抑制劑1 μL,冰上裂解30 min,以60 g轉速低溫離心10 min,-80 ℃下保存待用[5]。
(五)Western Blot檢測組蛋白乙酰化位點修飾情況 將提取的核蛋白分別置入120 g/L的SDS-PAGE中電泳,使用甲醇濕法電轉移法,轉膜,PVDF膜室溫下以5%脫脂奶粉搖床封閉2 h;加入單克隆抗體(一抗,分別采用組蛋白乙?;揎椢稽cH3K14、H3K18、H3K27抗體1:1000及H3抗體1:400),4 ℃下低溫過夜;加入TBS洗滌液,洗膜后3~4次,再放入用TBS(按1∶1000稀釋的辣根過氧化物酶標記的羊抗兔二抗以及羊抗鼠二抗),于室溫下搖床上反應1 h進行標記;TBS洗滌液洗膜,加入曝光液,進行化學發光法顯色,曝光后以H3為內參,通過Image Lab圖像軟件定量分析H3K14、H3K18、H3K27組蛋白條帶灰度值,對比其乙?;揎椝?。
用SPSS 24.0統計軟件進行數據分析。計量資料采用均數±標準差表示,對數據進行t檢驗或相關分析。以P<0.05為差異有統計學意義。
在相同的生長條件下培養,人低轉移性肝癌細胞株MHCC-97L細胞核體積大,呈多形性,核分裂增多。

注:A.LO2(×200);B.MHCC-97L(×200)
根據RTCA結果顯示,在相同條件下,培養初期人低轉移性肝癌細胞株MHCC-97L與人肝細胞株LO2均保持一定的增殖速度,MHCC-97L細胞株增殖速度高于LO2細胞株,兩組細胞株增殖數目均與時間呈正比。隨培養時間的推移,LO2細胞株增殖速度逐漸下降,相同條件下培育48 h后,人肝細胞株LO2細胞指數趨于穩定,而人低轉移性肝癌細胞株MHCC-97L有無限增殖趨勢,增殖速度明顯大于LO2細胞株(P<0.05,見表1)。

表1 兩組細胞株細胞指數水平隨培養時間增加的對比(±s, n=3 )
經Annexin V-FITC/PI法染色后,凋亡早期的細胞,細胞膜會被綠染,熒光顯微鏡下觀察發現,正常LO2細胞、MHCC-97L細胞48 h后自然凋亡情況差異不大。

注:A.LO2;B.MHCC-97L
通過Western Blot法檢測分析,與LO2細胞株相比,MHCC-97L細胞株中acH3K14、acH3K18、acH3K27位點乙?;揎椇蟮牡鞍琢勘磉_較正常細胞株更低,差異有統計學意義(P<0.05,見圖3及表2)。

表2 兩組細胞株間acH3K14、acH3K18、acH3K27相對表達水平的比較(H3, ±s, n=6 )
肝癌早期檢出率不高,多數患者被確診為肝癌時已達晚期[5],提升早期診斷率與治療途徑,是肝癌防治的艱巨任務。國內外研究[6-8]陸續證實,肺癌、乳腺癌、前列腺癌及甲狀腺癌患者中乙?;慕M蛋白表達低于同類正常人,組蛋白乙?;揎椝降漠惓J前┌Y發生、發展的潛在通路。

圖3 Western blot檢測LO2與MHCC-97L的acH3K14、acH3K18、acH3K27位點乙酰化修飾情況
針對肝癌細胞中組蛋白乙?;揎椝綄Ω伟┻M展的影響,研究表明人肝癌細胞中H3組蛋白乙?;矫黠@低于人正常肝細胞[9],且已有學者通過對手術切除肝癌組織的研究發現,人肝癌組織的H3組蛋白乙?;矫黠@低于臨近的非癌變的正常肝臟組織[10]。肝臟組蛋白H3乙?;较抡{與肝癌發生相關,有學者預測這可能是組蛋白H3乙?;浇档?,間接導致抑癌基因轉錄的沉默而誘導肝癌發生[11-12]。組蛋白乙?;揎椂喟l生在H3組蛋白賴氨酸殘基上的9、14、18、23位點[13],國內學者張婷[14]通過免疫共沉淀實驗鑒定出人肝癌細胞中組蛋白H3K9位點的乙?;捷^人正常肝細胞低。學者Wang等[15]通過人正常肝細胞、人肝癌細胞、人肝癌轉移細胞系進行對比研究,結果證實人肝癌細胞組蛋白H3乙?;磉_下調,肝癌轉移細胞表達水平較肝癌細胞的H3乙?;?。關于肝癌發生、發展過程中具體哪些位點發生變化,以及這些位點的變化與腫瘤發生的關系罕見報道,尚無報道證實轉移性人肝癌細胞中組蛋白H3K14、H3K18及H3K27位點修飾水平的變化情況。
本研究以人正常肝細胞株LO2為對照,對比研究低轉移性肝癌細胞株MHCC-97L的組蛋白乙?;剑琖estern Blot法檢測acH3K14(組蛋白H3位于第14位的賴氨酸發生乙?;揎?,histone H3 lysine 14 acetylation)、acH3K18、acH3K27修飾水平是否存在異常。研究結果顯示相比正常肝細胞株LO2,低遷移肝癌細胞株MHCC-97L的acH3K14、acH3K18、acH3K27修飾水平出現明顯下調,提示以上位點組蛋白乙?;揎椝降南抡{程度可能與肝癌細胞的發生有關,這與已有相關肝癌組蛋白乙?;难芯烤哂幸恢滦?。組蛋白乙酰化與去乙酰化之間保持動態平衡,特定位點組蛋白乙酰化修飾水平的改變,也可激活或沉默基因的轉錄[16],這一特性為腫瘤早期的臨床診療和藥物開發提供了一種思路。國外學者已通過實驗證實,組蛋白修飾水平的異常發生在肝癌早期[17],通過檢測H3組蛋白特定位點如K36甲基化修飾的表達水平,可對肝癌的生物學特征如血管浸潤程度、異質性及分化程度等情況進行判斷[18-19],使得從表觀遺傳分子水平進一步診治肝癌成為可能。本研究對于肝癌組蛋白特定位點乙?;礁淖兊奶接懣山沂舅鼈冊诟伟┌l生中的作用,且有可能為肝癌早期診斷提供新思路,有助于尋找防治肝癌的可能靶點。
肝癌的發生是多因素參與的復雜過程,本研究探討了肝癌細胞中相應組蛋白修飾位點乙?;淖兓闆r,acH3K14、acH3K18及acH3K27修飾水平下調與肝癌發生存在關聯,而是否可通過改變上述組蛋白位點的乙?;接绊懜伟┘毎麪顟B,仍需進一步的實驗證實。
利益沖突聲明:所有作者均聲明不存在利益沖突。