氧濃度對調節NOx氧化度協同CABR法脫硝性能及菌群結構的影響

楊景瑞，王瑩，陳虎，呂永康

（1 山西能源學院資源與環境工程系，山西 太原 030000；2 太原理工大學省部共建煤基能源清潔高效利用國家重點實驗室，山西 太原 030024；3 太原理工大學環境科學與工程學院，山西 太原 030024）

氮氧化物（NOx），特別是一氧化氮（NO）和二氧化氮（NO2）是造成環境惡劣和人類健康問題的主要空氣污染物[1]。防止NOx污染的方法之一是減少火電廠煙氣中NOx的排放，火電廠排放的煙氣是大氣中NOx的主要來源[2]。由于煙氣中NOx的主要成分NO在水溶液中的溶解度很低，傳統的吸收方法難以去除。大量研究結果表明，通過使用某些氧化性物質將部分NO 氧化為NO2后可大大提高NOx在堿液中的吸收效率，且NOx氧化度在50%～60%時吸收效率最高[3-6]。因此，基于氧化吸收理念，調節NOx氧化度協同化學吸收-生物還原法是一種可靠、經濟可行的煙氣脫硝技術。該方法首先調節煙氣中NOx氧化度為50%，之后氣相中的NOx經堿液吸收后在液相中生成含氮化合物，最后通過好氧反硝化菌作用將液相中的含氮化合物還原為無毒無害的N2排出。

由于我國實際工業煙氣中通常含有3%～8%的氧氣[7-8]，以往研究結果顯示，氧體積分數是影響NOx去除的關鍵因素之一[9-11]。目前，關于利用化學吸收-生物還原（CABR）法脫硝的研究大多是采用絡合劑Fe(Ⅱ)EDTA 絡合NO 先形成Fe(Ⅱ)EDTANO 絡合物，然后再通過微生物作用將NO 還原為N2[12]。雖然這一方法提高了吸收劑的吸附能力和再生能力，但由于Fe(Ⅱ)易被煙氣中本身含有的氧氣氧化生成Fe(Ⅲ)，從而失去絡合NO的能力。因此，該方法還遠遠不能用于工業規模[13]。

本文采用調節NOx氧化度協同化學吸收-生物還原法去除煙氣中NOx，這一脫硝途徑將氧化吸收與生物還原相結合，不使用絡合吸收劑。因此，研究氧體積分數對這一脫硝過程脫硝性能的影響至關重要。為此，本文考察了煙氣中包含氧體積分數在0～10%范圍內對調節NOx氧化度協同化學吸收-生物還原法去除NOx的影響。此外，研究指出氧氣對NOx還原和反硝化微生物生長均有負面影響[8,14-15]。微生物群落結構會隨操作條件的改變而發生變化，菌群結構決定了生物反應器的性能[16]。因此，在CABR系統的氧氣關鍵工況下，分析生物反應器內微生物群落結構是十分必要的。本文利用高通量測序技術分析了不同氧體積分數下生物反應器內微生物群落結構的變化，同時考察了不同氧體積分數對生物反應器內微生物胞外聚合物的影響。這項研究工作將清楚地說明微生物群落對氧體積分數變化的響應及其對NOx去除性能的影響。本研究也為通過接種富集培養物強化生物反應器提供了有價值的見解。

1 材料與方法

1.1 化學試劑及其制備

氣體：NO（4.999%，其余為N2）、NO2（4.999%，其余為N2）、N2（99.999%）、O2（99.999%）和CO2（99.999%）。實驗室所用氣體均由太原安旭鴻運科技有限公司提供。

富集培養基（LB）成分：NaCl，10g；酵母提取物，5g；胰蛋白胨，10g；pH=7.0。

反硝化培養基（DM）成分：檸檬酸鈉，4.20g；NaNO3，0.607g；NaH2PO4·2H2O，0.250g；K2HPO4·3H2O，0.750g；FeSO4·7H2O，0.050g；NaCl，0.120g；MgSO4·7H2O，0.050g；MnSO4·H2O，0.010g；pH=7.0。

循環吸收營養液成分：檸檬酸鈉，4.20g/L；K2HPO4·3H2O，0.750g/L；NaH2PO4·2H2O，0.250g/L；FeSO4·7H2O， 0.050g/L； MnSO4·H2O， 0.010g/L；NaCl，0.120g/L；MgSO4·7H2O，0.050g/L；NaHCO3，1.68g/L。所有化學品均為分析純級試劑，無須進一步純化即可直接使用。

1.2 好氧反硝化菌群的富集篩選與保藏

從位于山西省汾陽市國峰污水處理廠收集的廢水中取10mL 泥水混合物，將其添加至含90mL 高壓滅菌LB 培養基的250mL 錐形燒瓶中，用無菌透氣密封膜密封燒瓶，然后將燒瓶放到30℃、120r/min的搖床中培養，以富集異養好氧細菌。培養2 天后，將10mL 富集細胞懸液轉移至含90mL 新鮮無菌LB培養基中，在上述條件下孵育，進行二次富集。之后，將1mL 二次富集細菌懸浮液轉移到250mL錐形瓶中，該燒瓶中裝有100mL 分別以檸檬酸鈉和硝酸鈉作為單一碳源與氮源的無菌DM 培養基，用于選擇性培養好氧反硝化菌群。這一步驟重復三次，并定期檢測其好氧反硝化能力。直至確定菌群具有高效好氧反硝化能力后，將目標菌群命名為HN-04。富集篩選得到的菌群放在試管固體斜面培養基中進行短期保藏，懸浮在25%的甘油溶液中在-80℃進行長期儲存。

1.3 實驗裝置及操作參數

實驗所用裝置及流程如圖1所示，裝置主體生物滴濾塔是內徑為8cm、高度為100cm的有機玻璃柱。生物滴濾塔內填料是邊長為2cm的立方體，塔內填料高度為60cm。含NOx的模擬煙氣由250μL/LNO、250μL/LNO2、5%O2、15%CO2和N2組成，各種氣體組分經質量流量計控制流量后在氣體混合室內混合，控制模擬煙氣總流量為1L/min。循環液貯存罐內裝有6L微生物營養液，營養液中添加了0.02mol/L的NaHCO3作為化學吸收劑。營養液貯存罐置于循環水浴鍋內，控制水浴鍋內溫度為50℃±0.5℃。吸收營養液經蠕動泵作用控制流量為40L/h，每天更換50%的吸收營養液。

圖1 實驗裝置流程

1.4 生物滴濾塔啟動與掛膜

生物滴濾塔啟動與運行一共分為7個階段，具體實驗設置如表1所示。階段Ⅰ和Ⅱ是掛膜啟動階段，階段Ⅰ每天向DM培養基中接種100mL活化的HN-04 菌體溶液，之后在生物滴濾塔內注滿加菌的DM 培養基溶液，使DM 液能充分浸泡填料，以保證微生物有充裕的時間能附著在填料表面，DM液每天更換。階段Ⅱ開始不再額外添加HN-04 菌液。階段Ⅲ-Ⅵ代表生物滴濾塔內微生物對DM 培養基溶液中包含不同的硝酸鹽氮和亞硝酸鹽氮體積分數的降解情況。階段Ⅰ～Ⅵ運行過程中生物滴濾塔內只通入氧氣與氮氣的混合氣體，混合氣體流量為1L/min，其中氧氣體積分數為5%，其余為氮氣。階段Ⅶ開始向生物滴濾塔內通入NOx氧化度為50%的模擬煙氣，并通入循環吸收營養液。

表1 生物滴濾塔啟動與設置

1.5 不同氧體積分數下系統脫硝性能測試

在生物滴濾塔掛膜啟動之后，在系統內通入NOx氧化度為50%的模擬煙氣。通過調節N2和O2流量來控制本研究系統內氧氣的含量。不同氧氣體積分數下，模擬煙氣中通入的NOx相同，都為500μL/L，其中NO 和NO2體積分數各為250μL/L。在循環吸收營養液中添加檸檬酸鈉為碳源，每天更換的吸收營養液中添加的檸檬酸鈉相同，都為4.20g/L，保證每天更換的吸收營養液中包含的COD 體積分數相同。測定氧體積分數在0～10%范圍內連續運行過程中系統出口氣體中包含的NOx體積分數及液相中含氮氧化物的積累量，出口氣體和液相中包含的含氮氧化物越少，說明系統的脫硝性能越好。

1.6 樣本采集、DNA提取、PCR擴增及測序

在煙氣中包含氧體積分數為0這一個運行階段末期，從生物滴濾塔內上中下三個部位分別收集一個生物膜載體合為一個樣本，并將其命名為S1。之后分別在煙氣中包含氧氣體積分數為3%、5%、8%和10%的運行階段末期，按同樣的方法各收集一個樣本，分別命名為S2、S3、S4 和S5。并委托上海生工公司運用高通量測序技術對五個樣本進行了分析和鑒定。

根據制造商的說明，使用EZNA?Soil DNA Kit（OMEGA，USA）分別提取各個樣本總群落基因組DNA。使用Qubit 2.0（life，USA）來測量DNA體積分數，以確保提取了足夠數量的高質量基因組DNA。利用PCR 擴增菌群16S rRNA V3-V4 高變區，正反引物分別為341F（CCTACGGGNGGCWGCAG）和805R（GACTACHVGGGTATTCTAATCC）?？倲U增反應混合物為30μL，其中包含15μL的2×Taq master Mix，2μL 的基因組DNA（10ng/μL），10μmol/L 的正反向引物各1μL和高純水。PCR擴增的反應條件如下：95℃變性3min；接下來95℃30s、45℃30s、72℃30s 進行5 個循環；然后95℃30s、55℃30s、72℃30s 進行20 個循環；最后72℃延伸5min。每個反應混合物的擴增子根據其體積分數以相同的摩爾比合并。然后通過Illumina MiSeq 平臺（USA，Illumina MiSeq）按照制造商的說明進行測序。

測序后，數據收集如下：①利用PEAR(v0.9.6)軟件根據重疊部分對兩個短的Illumina 讀數進行拼接，對fastq文件進行處理，生成單獨的fasta和qual文件；②然后將含有不明確堿基且長度超過480bp或短于200bp的序列去除；③將所有相同的序列合并為一個；④根據定制的參考數據庫對序列進行比對；⑤檢查索引和接頭的完整性，并刪除所有索引和接頭序列；⑥使用Pre.cluster工具去除干擾信號。將每個樣本的有效序列提交給RDP分類器，以識別古細菌和細菌序列。使用mothur 計算覆蓋率、Chao1、ACE、Simpson 和Shannon 在內的物種豐富度和多樣性統計數據。

1.7 分析與檢測方法

按照Niu等[17]描述的方法提取松散結合型胞外聚合物（LB-EPS）和緊密結合型胞外聚合物（TBEPS）。LB-EPS 和TB-EPS 含量通過蛋白質和多糖的加和量來表示。采用福林-酚法[18]和苯酚-硫酸法[19]利用總有機碳（TOC）分析儀在700nm和490nm處分別測定蛋白質和多糖含量。

NO 與NO2體積分數采用便攜式煙氣分析儀（KANE, KM-9106）進行檢測。NOx去除效率用如式（1）計算。

2 結果與討論

2.1 生物滴濾塔啟動期間表現

生物滴濾塔內微生物在啟動階段表現出的反硝化性能如圖2所示。從圖中可以看出，在接種階段（第Ⅰ階段）除第一天液相中約有25mg/L的硝酸鹽氮殘留外，其余時間出水中基本不含氮氧化物。即使從第Ⅱ階段開始不再向生物滴濾塔內額外接種HN-04 活化菌液，生物滴濾塔出水中硝酸鹽氮體積分數依然保持不變，基本為零。因此，在第Ⅱ階段運行末期從生物滴濾塔內取出一生物膜載體進行觀察，結果表明與原始填料相比，掛膜后在聚氨酯填料表面肉眼可見有大量淺黃色微生物質生成，結合此時出水中硝酸鹽氮體積分數基本為零，說明此時已掛膜成功。

圖2 生物滴濾塔啟動運行階段

考慮到煙氣中NOx被循環液吸收后可能在液相中生成不同體積分數的硝酸鹽氮和亞硝酸鹽氮。因此，在生物滴濾塔掛膜成功后，緊接著研究了營養液中包含不同體積分數的硝酸鹽氮和亞硝酸鹽氮對生物滴濾塔內微生物反硝化性能的影響（階段Ⅲ～Ⅵ）。由圖2 可知，當營養液中存在不同比例的硝酸鹽氮和亞硝酸鹽氮體積分數時，生物滴濾塔出水中氮氧化物體積分數不變。這說明吸收營養液中硝酸鹽氮和亞硝酸鹽氮不管以何種比例存在時，都不會對生物滴濾塔內微生物的好氧反硝化性能造成影響。

因此，從第Ⅶ階段開始不再向營養液中額外添加氮源，開始添加體積分數為0.1mol/L 的NaHCO3作化學吸收劑形成NOx吸收液。同時開始向生物滴濾塔內通入模擬煙氣，其中包含NO 和NO2體積分數各250μL/L。圖中顯示，在生物滴濾塔內初次通入NOx氣體時，出口氣體中含有約50μL/L的NO氣體，但幾乎不存在NO2氣體。然而隨著運行時間的增加，尾氣中NO的體積分數在逐漸降低，運行4天后檢測到出口尾氣中NO 含量維持在5μL/L 左右，從而使NOx的去除效率達到99%左右。這說明生物滴濾塔內的微生物群落逐漸適應了通入模擬煙氣的環境，可以維持穩定運行的狀態。綜上所述，生物滴濾塔在啟動階段后運行良好，可進一步研究。

2.2 氧氣體積分數對調節NOx氧化度協同CABR法脫硝效率的影響

如圖3 所示，將煙氣中NOx氧化度調節為50%后，考察了不同氧氣體積分數對CABR 系統去除NOx性能的影響。由圖3(a)可知，隨著煙氣中氧氣體積分數從0 增加到8%，系統在連續運行的整個過程中脫硝性能穩定，對NO 的去除效率保持在99%以上。這與Fe(Ⅱ)Cit/Fe(Ⅱ)EDTA 系統相比，NO 的去除效率提高了約9%[21]。Li 等[11]采用絡合吸收耦合生物還原法去除煙氣中的NO，結果表明該系統中NO的去除效率隨煙氣中氧氣體積分數的增加而逐漸降低，當煙氣中氧氣體積分數增加到8%時，NO去除效率由原來的93.7%降到70.2%。絡合吸收劑特別容易被氧氣氧化這一結論已經被許多文獻所證實，表明氧氣體積分數與NO去除效率密切相關[22-23]。而在本研究脫硝系統中，將煙氣中氧氣體積分數升高至10%時，NO 去除效率仍超過90%，NOx去除效率可達到94%以上[圖3(c)]。由圖3(b)可知，在氧氣體積分數為0～10%的范圍內，系統出口氣體中幾乎不存在NO2氣體。

圖3 不同氧氣體積分數對CABR系統去除NOx的影響

氧氣的存在對液相中NO-3-N 和NO-2-N 的形成至關重要，NO-3-N 和NO-2-N 在不同氧氣體積分數下的體積分數變化如圖3(d)所示。隨著氧氣體積分數的增加，液相中NO-3-N 體積分數呈現輕微上升趨勢，NO-2-N體積分數則保持穩定，不存在NO-2-N的積累。在整個運行過程中，液相中NO-3-N 含量顯著高于NO-2-N，但NO-3-N 積累量未超過2mg/L。而Li 等[8]的研究報道指出，采用絡合吸收劑的CABR系統進行煙氣脫硝時，液相中NO-3-N積累量從氧氣體積分數為0的15mg/L左右增加到了氧氣體積分數為10%的45mg/L。這一結果表明，絡合吸收耦合生物還原煙氣脫硝系統在很大程度上是將部分煙氣中的NOx從氣相轉移到了液相中，液相中積累的含氮氧化物并沒有被完全去除。這可能是因為絡合吸收劑對微生物的生長和還原有一定的抑制作用。而本研究首先通過調節煙氣中NOx氧化度為50%，然后再利用弱堿液吸收與生物還原相結合的方法來進行煙氣脫硝。該過程不使用絡合吸收劑，煙氣中NOx進入生物滴濾塔后經堿液作用，將氣相中的NOx轉化為液相中的NO-3-N和NO-2-N，然后通過微生物的反硝化作用幾乎可將液相中的含氮氧化物全部去除，可以實現煙氣中NOx最終被去除的目的。實驗結果還表明，隨著氧氣體積分數從0增加到10%，液相中COD 的含量在逐漸降低，由原來的910mg/L降低至11mg/L。

綜上所述，本研究煙氣脫硝系統在高含氧量條件下仍具備高效脫硝的能力，這一結果進一步體現了本研究脫硝技術的優勢。

2.3 氧氣體積分數對微生物胞外聚合物的影響

微生物聚集體的胞外聚合物（EPS）是一種復雜的高分子量聚合物，由微生物分泌和細胞裂解產生，并從廢水中吸附有機物。EPS對微生物聚集體的理化性質有顯著影響，包括結構、表面電荷、絮凝、沉降、脫水和吸附能力。EPS通過復雜的相互作用與細胞結合，形成巨大的網狀結構，含有大量的水，它們為細胞形成一層保護層，可以抵御有毒物質或者外部惡劣環境對細胞的危害，在營養缺乏的條件下，部分EPS 可作為碳源或能源[24]。多糖（PS）和蛋白質（PN）通常是EPS 的主要成分[25]。根據空間位置的不同，EPS可分為松散結合型EPS（LB-EPS）和緊密結合型EPS（TB-EPS）[26]。對EPS的深入研究不僅可提高對液相中生物脫氮的認識，而且對通過優化操作參數來提高本研究系統煙氣脫硝的效率具有重要意義。

基于上述研究背景，對本研究脫硝系統在不同氧氣體積分數（0、3%、5%、8%和10%）下運行階段末期微生物產生的LB-EPS 和TB-EPS 含量進行了檢測，結果如圖4 所示。結果表明，微生物EPS 含量與煙氣中包含的氧氣體積分數密切相關，LB-EPS 和TB-EPS 含量隨著氧氣體積分數的增加都呈現先升高后降低的趨勢，且都在氧氣體積分數為5%時達到最大值。不同氧氣體積分數下，微生物群落產生的LB-EPS含量普遍高于TB-EPS含量。LB-EPS 具有黏附作用，可以增強細胞聚集過程。TB-EPS 具有一定的絮凝作用。微生物產生的EPS組分中LB-EPS占主要部分，這說明在外界不斷升高的氧環境下，微生物細胞可能是通過聚集來抵御外界的惡劣環境，使細胞保持活性，進而使系統在高氧環境下繼續維持高效的脫硝效率。此外，LBEPS含量的增加使細菌的黏附作用增強，這可能在一定程度上也增強了微生物對氣相中NOx的吸附作用。圖4(a)顯示，在氧氣體積分數由0 逐漸增加至5%的過程中，LB-EPS中PN/PS的比值由1.72上升到2.18，表明氧氣體積分數的增加更容易引起LBEPS 中PN 含量的變化，導致PN 的含量顯著增加。造成這一現象的原因可能是因為面對氧氣體積分數升高的惡劣環境，微生物在未適應之前，通過分泌更多的PN 來提高細胞的抵抗能力，保護細胞免受惡劣環境的侵害。隨著氧氣體積分數從0 增加至5%，而TB-EPS 中PN/PS 的比值從1.21 降至0.706，這表明氧氣體積分數的增加更容易引起TB-EPS中PS含量的增加[圖4(b)]。PS分子中含有較多的極性基團，其與水分子結合能力較強，PS 含量的增加可以降低細胞內水分的流失，這在一定程度上保護了細胞的活性。在氧氣體積分數達到8%和10%的條件下，LB-EPS 和TB-EPS 含量減少的原因一方面可能是因為微生物逐漸適應了高氧環境導致自身分泌物減少，另一方面可能是因為細胞的解體減少，因為細胞解體也會釋放部分PN和PS。

圖4 不同氧氣體積分數運行階段末期的LB-EPS和TB-EPS成分含量

綜上所述，微生物分泌物EPS的含量及組分與微生物的活性密切相關，EPS含量較多時能較好地保護細胞免受惡劣環境的侵害，使細胞維持正常的新陳代謝活動。而細胞的正常代謝確保了具有反硝化功能的微生物能夠正常高效地完成脫氮過程，進而保證了煙氣中NOx的高效去除。

2.4 不同氧氣體積分數對微生物群落結構的影響

2.4.1 微生物群落的多樣性和豐富性

通過高通量測序對不同氧氣體積分數下收集的微生物樣本S1、S2、S3、S4 和S5 的群落結構進行評價。Alpha多樣性通常使用Chao1、ACE、Shannon和Simpson 指數計算。當前三項指標較大或后一項指標較小時，則認為樣本中的物種相對豐富。其中Chao1 和ACE 指數用來估計微生物群落中包含的OTU數目，Chao1和ACE指數值越大，表明微生物群落的豐富度越高。Shannon和Simpson指數用來估算樣品中微生物的多樣性，Shannon 指數值越大或者Simpson指數值越小，代表物種的多樣性越高。

表2 中Coverage 指數表明，5 個樣本的細菌基因庫覆蓋率均為100%，說明各個樣本中大部分微生物都已被檢測到，測序結果具有較高的可信度。隨著氧氣體積分數的升高，樣本表面微生物的Chao1 和ACE 指數逐漸升高（即S5>S4>S3>S2>S1）。這說明隨著氧氣體積分數的升高，物種的豐富度也逐漸升高。根據表2中Shannon和Simpson指數值變化趨勢可知，在氧氣體積分數逐漸增加到8%的過程中，微生物多樣性呈現先減小后增大的趨勢，表明適應高氧環境的微生物種類逐漸增多。此外，韋恩圖分析表明S1～S5樣本中產生的OTU數量為227～630，在氧氣體積分數為10%的樣本中包含的OTU 數最多。而且S1～S5 樣本間有57 個OTU數是共享的，說明不同氧氣體積分數樣本的微生物群落結構具有顯著的相似性。

表2 S1、S2、S3、S4和S5樣本的Alpha多樣性指數

2.4.2 微生物群落的組成和變化

圖5顯示了不同氧氣體積分數樣本中微生物群落結構在門、類和屬水平的相對豐度分布情況。在門水平上[圖5(a)]，Proteobacteria是所有樣本中最豐富的門（55.0%～85.7%），其次是Firmicutes（1.57%～33.0%）和Bacteroidetes（2.14%～11.0%）。這些優勢菌門被發現有助于去除污染物，特別是在廢水處理中[27-31]。但這些優勢菌門的豐度隨氧氣體積分數的升高變化明顯，優勢Proteobacteria菌門豐度隨氧氣體積分數的升高呈現先增后減的趨勢，這種變化趨勢與Sun 等[32]的研究結果相一致。而隨著煙氣中氧氣體積分數的升高，Firmicutes豐度則逐漸減小，這可能與Firmicutes菌是典型的厭氧反硝化細菌相關，Firmicutes菌普遍存在于厭氧反硝化系統中[33-34]。當氧氣體積分數升高至10%時，S5樣本中優勢菌門Bacteroidetes的豐度顯著增加。換句話說，在本研究脫硝系統中，升高煙氣中氧氣體積分數會導致系統內優勢菌門發生變化。

圖5 S1～S5 樣本中細菌在門、類和屬水平的分布情況的比較

在類水平上[圖5(b)]，Bacilli是S1 樣本中最占優勢的菌類，其相對豐度達到31.4%。而在S2～S5樣本中，該菌類的相對豐度逐漸降低，最終降為S5 樣本中的1.38%。Verbaendert 等[35]的研究結果已指出Bacilli是具有反硝化能力的菌株。其次，Betaproteobacteria為S1 樣本中的第二優勢菌類，其相對豐度為12.1%。該菌類的相對豐度在樣本中的變化趨勢與Bacilli相同，都是隨著氧氣體積分數的升高其相對豐度呈下降趨勢。而Alphaproteobacteria的豐度則隨著氧氣體積分數的升高呈現先升后降的趨勢，在氧氣體積分數為8%的樣本（S4）中其相對豐度達到最大值42.0%，在氧氣體積分數10%時，其相對豐度又降為17.4%。此外，Gammaproteobacteria也是S1～S5五個樣本中的主要優勢菌類之一，其相對豐度為8.73%～19.7%。有研究報道稱，Alphaproteoba cteria和Gammaproteobacteria都屬于sub-Proteobacteria菌，都具備高效的脫氮能力[36]。五個樣本在類水平上的優勢物種基本一致，但它們的相對豐度受氧氣體積分數影響會發生相應變化。這種變化趨勢與之前的一項研究結果相似[37]，因為氧氣體積分數的變化會影響微生物的群落結構。Zhang 等[37]研究結果表明，隨著生物濾池內溶解氧氣體積分數的升高，對生物濾池內微生物的種類并未造成顯著影響，但對細菌的相對豐度有明顯的影響。

在屬水平上[圖5(c)]，S1～S5五個樣本中共檢測到48個菌屬。Chelatococcus是五個樣本間共有的優勢菌屬，其相對豐度為4.36%～17.6%。Chelatococcus菌屬在高溫50°C 環境中仍可保持活性且具有高效的好氧反硝化能力已被廣泛報道[38-39]，并已將其應用于煙氣脫硝研究。S1 與S2 樣本中優勢菌屬種類沒有太大差別，主要包括Azoarcus、Taibaiella和Chelatococcus。與S1相比，S2和S3樣本中Oxalophagus菌屬的相對豐度顯著增加，由S1中的0.2%增加為S2 和S3 中的3.49%和16.3%，成為S3 樣本中最豐富的菌屬。然而，在S4和S5樣本中，Oxalophagus菌屬已基本滅絕。S4 樣本中Pannonibacter菌屬出現明顯積累，是該樣本中的第二優勢菌屬，相對豐度達到12.6%。Craurococcus是第三豐富的菌屬，相對豐度為10.2%。Chelatococcus、Oxalophagus和Craurococcus菌屬的總豐度高達40.4%，除未歸類的菌屬外，它們是S4樣本中的絕對優勢菌屬。與S4相比，S5樣本中這三種菌屬的豐度明顯降低。S5 樣本中的第二優勢菌屬變為Taibaiella，相對豐度為7.52%。在屬水平上微生物群落結構的差異進一步表明了氧氣體積分數的影響。此外，不同氧氣體積分數下微生物在屬水平的物種豐富度矩陣圖進一步表明S1～S5五個樣本中的優勢菌屬主要包括為Chelatococcus、Taibaiella、Craurococcus和Azomonas（圖6）。這與在屬水平上檢測到的五個樣本中包含的優勢菌屬種類相同。

圖6 不同氧氣體積分數下微生物在屬水平的物種豐富度矩陣

氧氣體積分數作為影響絡合吸收耦合生物還原系統煙氣脫硝效果的負面因素之一已被廣泛報道[40]。而在本研究中，通過調節煙氣中NOx氧化度為50%后協同堿液吸收與生物還原作用建立了CABR煙氣脫硝系統。本研究脫硝系統建立的微生物群落結構更復雜，導致微生物群落具備更強的抗沖擊能力。因此，當煙氣中氧氣體積分數高達8%時，該系統的脫硝效率仍不受影響。而且在不同氧氣體積分數下系統內的優勢菌屬均具備反硝化能力，本研究脫硝系統內豐富的微生物群落結構，尤其是高豐度的反硝化菌屬確保了NOx的高效去除。

3 結論

（1）本文研究了煙氣中不同氧氣體積分數對調節NOx氧化度協同CABR 法脫硝效率及微生物群落結構的影響。結果表明，煙氣中氧氣體積分數為0～8%時，CABR 系統對NOx的去除效率保持恒定，達到99%以上。且在氧氣體積分數增加的整個過程中，液相中不存在氮氧化物的積累。

（2）生物滴濾塔內微生物EPS含量隨氧氣體積分數的增加呈現先增后減的趨勢，在氧氣體積分數為5%時EPS 含量最高。這是由于EPS 含量與微生物對外界惡劣環境的抵抗力密切相關。

（3）高通量測序結果表明，在不同氧氣體積分數下Proteobacteria是系統內的優勢菌門，Chelatococcus是主要的優勢菌屬，系統內優勢菌均為好氧反硝化菌。菌群豐度決定了系統的脫硝效率。