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苦杏仁多肽的制備及其抗氧化活性研究

2022-10-14 13:05:02張愛(ài)莉曹丙林崔朝輝胡永生王家占盧作焜
許昌學(xué)院學(xué)報(bào) 2022年5期
關(guān)鍵詞:生物

張愛(ài)莉,曹丙林,張 良,崔朝輝,胡永生,王家占,盧作焜

(1.許昌學(xué)院 食品與藥學(xué)院,河南 許昌 461000;2.許昌學(xué)院 河南省食品安全生物標(biāo)識(shí)快檢技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 許昌 461000)

生物活性肽是對(duì)人體功能具有有益影響、或特定生理調(diào)節(jié)作用的肽類化合物[1].由于生物活性肽能夠與其它蛋白質(zhì)或靶點(diǎn)相互作用從而調(diào)節(jié)人體生理過(guò)程,因而其生物活性與氨基酸序列關(guān)系密切[2].生物活性肽更易于人體吸收利用,并且容易加工[3].活性肽具有很多對(duì)人體有益的功效,例如預(yù)防衰老、改善細(xì)胞代謝等,部分生物活性肽對(duì)預(yù)防腫瘤、降低血壓等方面[4].越來(lái)越多的研究致力于從食品產(chǎn)品及未充分利用的富含蛋白質(zhì)的食品工業(yè)副產(chǎn)品中尋找加工和生產(chǎn)中產(chǎn)生的生物活性肽[5].生物活性肽來(lái)源廣泛,其中應(yīng)用最多的是從雞蛋、牛奶及肉中提取的生物活性肽[6].部分來(lái)源于海洋生物蛋白質(zhì)的多肽甚至具有抗腫瘤活性[7].食物蛋白質(zhì)來(lái)源的生物活性肽一般通過(guò)酶水解[8]和微生物發(fā)酵[9,10]進(jìn)行生產(chǎn).

苦杏仁中含有特有的苦杏仁苷,具有良好的藥用價(jià)值[11].由杏仁蛋白水解制得的生物活性肽—杏仁多肽,其應(yīng)用開發(fā)并沒(méi)得到充分的重視[12].因此,以苦杏仁為研究對(duì)象,通過(guò)酸沉淀法提取總蛋白,利用響應(yīng)面法優(yōu)化抗氧化肽酶解工藝,得到最佳工藝參數(shù).研究對(duì)苦杏仁抗氧化肽活性的優(yōu)化提供了一定程度的理論數(shù)據(jù),同時(shí)為中藥苦杏仁的進(jìn)一步開發(fā)利用提供基礎(chǔ).

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

苦杏仁:河北省霍山縣兆麟堂生物科技有限公司;蛋白酶K、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH):北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司;三羥甲基氨基甲烷鹽酸鹽(Tris-HCl):鄭州派尼化學(xué)試劑廠.

TDZ5-WS多管架自動(dòng)平衡離心機(jī),湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司;TGL-16C高速臺(tái)式離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠.

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 原料預(yù)處理

將苦杏仁首先經(jīng)萬(wàn)能高速粉碎機(jī)粉碎,然后用石油醚(沸程30~60 ℃)對(duì)其進(jìn)行脫脂,按料液比1∶ 1.5脫脂3次.放入通風(fēng)櫥內(nèi)通風(fēng)揮發(fā),經(jīng)24 h后拿出,放入烘干箱50 ℃烘干6 h,過(guò)篩得脫脂苦杏仁粉.

1.2.2 苦杏仁蛋白與多肽的制備

首先稱取50 g苦杏仁粉,以1∶ 16的料液比加入0.1 mol·L-1的氯化鈉溶液,磁力攪拌器攪拌30 min后加入0.1 mol·L-1的氫氧化鈉溶液,調(diào)節(jié)溶液的pH值為9.0.隨后使用四層紗布過(guò)濾取上清液倒入50 mL離心管中,3 800 r·min-1離心15 min,上清液調(diào)節(jié)至pH=4.1,靜置10 min.最后3 800 r·min-1離心15 min,將沉淀進(jìn)行冷凍干燥得到苦杏仁粗蛋白粉,置于干燥皿中保存?zhèn)溆?苦杏仁蛋白粉溶解在含有50 mmol·L-1pH為8.0的Tris-HCl和10 mmol·L-1CaCl2溶液中,每0.8 mL蛋白溶液加入2 μl的蛋白酶K溶液(5 mg·mL-1).

1.2.4 單因素實(shí)驗(yàn)

以DPPH清除率為指標(biāo),只改變一個(gè)因素其他因素保持不變,探究水浴時(shí)酶解溫度、酶解時(shí)間、蛋白底物濃度三個(gè)因素對(duì)苦杏仁酶解液DPPH清除率的影響.

1.2.5 DPPH自由基清除率計(jì)算方法

稱取0.001 4 g DPPH 粉末,以無(wú)水乙醇為溶劑,在100 mL褐色容量瓶中定容,并避光保存.取1 mL無(wú)水乙醇+1 mL DPPH溶液于EP管中充分混勻,避光條件下反應(yīng)30 min為空白對(duì)照組A0,于波長(zhǎng)517 nm處使用分光光度計(jì)測(cè)其吸光值.Ai為樣品值(0.2 mL樣品+0.8 mL無(wú)水乙醇、1 mL DPPH溶液)的吸光度;A裂為樣品本身(0.2 mL裂解液+1.8 mL無(wú)水乙醇)的吸光度.計(jì)算公式為

1.2.6 響應(yīng)面試驗(yàn)

將由單因素實(shí)驗(yàn)得出的3個(gè)最佳條件作為自變量,酶解液DPPH自由基清除率為響應(yīng)值,以每個(gè)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果的最適值為中心,在其區(qū)域內(nèi)往上取一個(gè)水平值作為水平1,往下取一個(gè)水平值為-1,設(shè)計(jì)3因素3水平17個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)的Box-Behnken試驗(yàn).采用Design-expert 12進(jìn)行處理,所有試驗(yàn)均重復(fù)三次.

2 結(jié)果與討論

2.1 因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 酶解溫度對(duì)酶解效果的影響

由圖1可知,酶解液的DPPH清除率受水浴溫度的影響較為明顯,到50 ℃之后,DPPH清除率迅速下降.因此選取酶解溫度為50 ℃.

圖1 酶解溫度對(duì)DPPH清除率

2.1.2 酶解時(shí)間對(duì)酶解效果的影響

由圖2可知,在前2 h,DPPH自由基清除率受酶作用的時(shí)間增長(zhǎng)趨勢(shì)明顯;酶解2 h后,雖然酶解時(shí)間一直在繼續(xù),但清除率的增長(zhǎng)卻并不明顯;到達(dá)2 h之后,酶解反應(yīng)趨于平衡,產(chǎn)物不再增加,清除率增長(zhǎng)不明顯.

圖2 酶解時(shí)間對(duì)DPPH清除率的影響

圖3 底物蛋白濃度對(duì)酶解效果

2.1.3 底物蛋白濃度對(duì)DPPH清除率的影響

在酶解溫度為50 ℃、酶解時(shí)間為1.5 h條件下,當(dāng)?shù)孜锏鞍诐舛嚷黾訒r(shí)(5、10、15、20、25 mg·mL-1),酶解產(chǎn)物的DPPH自由基清除率先升高后降低,在底物蛋白濃度為10 mg·mL-1時(shí)清除率到達(dá)最高點(diǎn)(圖3).原因可能是隨著底物蛋白濃度的增加,底物蛋白和活性多肽進(jìn)一步被降解,導(dǎo)致DPPH自由基清除活性降低;也可能是隨著酶解液濃度增大,蛋白分子之間互相影響,酶與底物蛋白之間的相互作用點(diǎn)減少,間接影響了底物蛋白分子與酶之間的反應(yīng).因此最佳酶解液濃度為10 mg·mL-1.

2.2 響應(yīng)面優(yōu)化

2.2.1 響應(yīng)面模型的建立及結(jié)果

通過(guò)確定的響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平表,以DPPH自由基清除率為考察指標(biāo),研究各因素對(duì)DPPH自由基清除率的影響,從而確定最佳酶解工藝條件.響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果如表2所示.

表2 響應(yīng)面分析的試驗(yàn)結(jié)果

2.2.2 方差分析

采用Design-expert 12軟件,對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行計(jì)算分析,得到底物蛋白濃度(A)、酶解溫度(B)、酶解時(shí)間(C)與DPPH自由基清除率(Y)之間的回歸方程為

Y=-4.5625A+5.8125B-2.175C-3.15AB-0.475AC-0.325BC-12.045A2-10.645B2-6.42C2+62.94.

為了更好地探究此方程的可靠性,進(jìn)一步探究響應(yīng)值與各因素之間的關(guān)聯(lián)程度,對(duì)該回歸方程進(jìn)行方差分析(表3).

表3 二次響應(yīng)面回歸模型方差分析

由表3可以看出,模型p值小于0.05,證明該模型方程存在顯著性水平差異,其決定系數(shù)R2=0.941 6,這表明自變量和因變量之間存在顯著的因果關(guān)系,其實(shí)際值與預(yù)測(cè)值之間的擬合度良好.分析結(jié)果表明,該模型可以預(yù)測(cè)和分析苦杏仁抗氧化肽的制備過(guò)程.

通過(guò)顯著性分析可以看出,A和B均對(duì)響應(yīng)值影響顯著,且B的p值相較于A更小,可以說(shuō)明對(duì)響應(yīng)值的影響程度為:B>A>C,酶解溫度的影響力更大,其次是底物蛋白的濃度,水解時(shí)間的影響程度最小.

2.3 工藝確定及優(yōu)化驗(yàn)證

為了進(jìn)一步確定最佳工藝,采用Design-expert12程序?qū)γ附鈼l件進(jìn)行分析,可得到苦杏仁抗氧化肽的最佳提取方案為:底物蛋白濃度為9.444 mg·mL-1、酶解時(shí)間為1.921 h、酶解溫度為51.607 ℃,此時(shí)DPPH自由基清除率為64.197%.結(jié)合實(shí)際操作,將其最佳提取參數(shù)修改為:酶解溫度52 ℃、酶解時(shí)間115 min、底物蛋白濃度9 mg·mL-1.在這些條件下進(jìn)行三組實(shí)驗(yàn),測(cè)得平均提取率為64.9%,與理論最佳提取率相比,相對(duì)誤差為0.71%.為了使實(shí)際操作更加簡(jiǎn)便,采用修改后的方法,具有很好的實(shí)用價(jià)值.

3 結(jié)論

實(shí)驗(yàn)以苦杏仁為原材料,以堿提酸沉法分離得到苦杏仁粗蛋白,以酶解法酶解得到苦杏仁多肽.在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,用響應(yīng)面試驗(yàn)對(duì)苦杏仁多肽的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,得到最佳工藝參數(shù)為:酶解溫度52 ℃、酶解時(shí)間115 min、底物蛋白濃度9 mg·mL-1.在此最佳工藝條件下,苦杏仁蛋白酶解液DPPH自由基清除率可以達(dá)到64.9%.方差分析結(jié)果顯示,對(duì)DPPH自由基清除率影響程度為:酶解溫度>底物蛋白濃度>酶解時(shí)間.研究對(duì)苦杏仁抗氧化肽活性的優(yōu)化提供理論參考,有助于中藥苦杏仁的進(jìn)一步開發(fā)利用.

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