王麗娟 林曉茹 陳云婷 陳露文
乳腺癌的早期診斷及治療對患者預后有積極影響,了解影響患者預后的危險因素,采取針對性預防措施也是降低患者預后不良的重要手段。以往研究顯示,腫瘤微環境的改變與乳腺癌的發生有密切的聯系[1]。腫瘤相關巨噬細胞(Tumor?asso?ciated macrophages,TAMs)占間質細胞的50%以上,是腫瘤微環境中的重要成份,眾多研究表明TAMs 與多種惡性腫瘤發生、發展、預后關系密切,多種腫瘤中均存在TAMs 浸潤[2]。研究表明,肝再生磷酸酶(Regenerative Phosphatase?3 ,PRL?3)與腫瘤轉移之間存在聯系,在胃癌、直腸癌等多種惡性腫瘤中均為高表達,可促進腫瘤細胞增殖、黏附及遷移[3]。人類表皮生長因子受體2(Human epi?dermal growth factor receptor 2,C?erbB?2)屬于原癌基因,是目前公認的重要腫瘤標志物[4]。本文將通過分析TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 在乳腺癌中的表達情況,了解其與患者轉移、預后的關系,以期為臨床對乳腺癌轉移、預后評估提供新方向。
收集2017年5月至2020年5月海南省三亞市婦女兒童醫院收治的115 例乳腺癌患者術后病理組織作為觀察組,均為女性,平均年齡(48.33±5.16)歲。淋巴結轉移者46 例,未轉移者69 例。納入標準:①經術后病理檢查及影像學檢查診斷為乳腺癌,且符合《2020年CSCO 乳腺癌診療指南》[5]中的診斷標準;②臨床資料完整;③簽署知情同意書;④均為首次手術治療者。排除標準:①合并其他臟器惡性腫瘤者;②入院前曾接受過放療、新輔助化療及腫物切除者;③合并免疫性疾病者。同時取觀察組患者距腫瘤切緣>5 cm 處遠癌組織作為對照組。本研究經院醫學倫理委員會批準。
1.2.1 TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 檢測方法
TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 均使用免疫組化學檢測方法,檢測試劑:TAMs 為鼠抗人單克隆CD68 抗體(北京中杉生物技術公司);PRL?3 為一抗PRL?3 兔抗人多克隆抗體(北京中杉生物技術公司);C?erbB?2 為兔抗人C?erbB?2 單克隆抗體(福州邁新生物技術開發有限公司),制片完成后以光學顯微鏡進行觀察。
結果判讀[6]:TAMs:在細胞膜、細胞漿內可見棕黃色或黃褐色顆粒為陽性;PRL?3 細胞質中見黃色或棕黃色顆粒為陽性;C?erbB?2 以細胞膜出現棕色或細胞膜漿著棕色為陽性。在100 倍鏡下觀察切片情況,計數時使用高倍鏡(×400)。每個視野中計數100 個癌細胞中陽性表達細胞數,總共計數5 個視野,取平均值。
使用半定量積分法對結果進行判讀[6]。0 分:無陽性細胞;1 分:陽性細胞數≤25%;2 分:陽性細胞數26%~50%,3 分:陽性細胞數51%~75%,4 分:陽性細胞數≥76%。以細胞著色程度進行評分:0 分:無著色細胞;1 分:細胞著色為淡黃色;2 分:著色為棕黃色;3 分:著色為著色為棕褐色。根據兩結果得分計算結果:積分低于3 分為陰性,3 分以上則為陽性。
1.2.2 隨訪
患者手術治療后隨訪12 個月,隨訪截止至2021年5月31日,了解患者預后情況,根據2020年CSCO 乳腺癌診療指南[5]分為預后不良組(高復發風險者):①腋窩淋巴結≥4 個陽性,②淋巴結1~3 個陽性并伴有其他復發風險,③三陰乳腺癌;預后良好組(低復發風險者):①淋巴結1~3 個(LumnianA 型),②Ki?67 高表達(≤30%),③腫瘤≤2 cm,④年齡≤35 歲。
采用SPSS 20.0 軟件進行統計分析,計量資料采用()表示,行t檢驗;計數資料采用n(%)表示,行χ2檢驗;采用多元Logistic回歸分析影響乳腺癌患者預后生存的危險因素,以P<0.05為差異具有統計學意義。
觀察組TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 陽性表達均明顯高于對照組,差異有統計學意義(P<0.05)。見圖1、表1。

圖1 TAMs、PRL?3 及C?erbB?2SP 染色圖(SP,×400)Figure 1 TAMs,PRL?3 and c?erbb?2sp staining diagram(SP,×400)

表1 兩組TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 表達情況比較[n(%)]Table 1 Comparison of the expression of TAMs,PRL?3 and C?erbB?2 between the two groups[n(%)]
轉移組TAMs、PRL?3及C?erbB?2陽性表達率明顯高于無轉移組,差異有統計學意義(P<0.05)。見表2。

表2 有無淋巴結轉移者TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 表達情況比較[n(%)]Table 2 Comparison of TAMs,PRL?3 and C?erbB?2 expression with or without lymph node metastasis[n(%)]
115 例患者隨訪12 個月后預后良好88 例(預后良好組),預后不良27 例(預后不良組)。預后不良組淋巴結轉移者、病理分期為Ⅲ~Ⅳ期、低分化、TAMs陽性、PRL?3 陽性、C?erbB?2 陽性占比明顯高于預后良好組,差異有統計學意義(P<0.05)。見表3。
賦予值見表3,Logistic回歸模型分析得病理分期、分化程度、淋巴結轉移情況、TAMs、PRL?3及C?erbB?2 為影響乳腺癌預后不良的獨立危險因素(P<0.05)。見表4。

表3 影響乳腺癌預后不良的因素分析[n(%)]Table 3 Analysis of factors affecting the poor prognosis of breast cancer[n(%)]

表4 影響乳腺癌患者預后不良危險因素分析Table 4 Analysis of risk factors affecting the prognosis of breast cancer patients
TAMs 為腫瘤間質細胞的重要一員,所占比例可達50%~80%,其可通過直接或間接的方式促進腫瘤發生與進展[7]。研究顯示TAMs 可促進腫瘤細胞分裂、血管生成、誘導腫瘤浸潤、參與免疫抑制與逃逸,其生物學功能與腫瘤發生密切相關,可促進腫瘤進展,與腫瘤預后不良存在密切聯系[8]。也有研究發現,腫瘤間質內TAMs 高表達的乳腺癌患者疾病進展快、易發生轉移,預后較差,且腫瘤血管生成與TAMs 之間關系密切,與患者微血管密度成正相關[9]。本研究結果提示TAMs 在乳腺癌進展過程中發揮著重要的作用,可能與TAMs可促進腫瘤血管生成、加速腫瘤發展有關。
PRL?3 為酪氨酸蛋白磷酸酶家族中的一員,其在腫瘤中生物活性高,在心肌細胞、骨骼肌、胰腺組織中有不同程度表達,在肺部、腦、腎等組織中低表達[10]。以往研究顯示PRL?3 在正常胃粘膜組織中表達陰性,在胃癌組織中陽性率高,且與胃癌患者淋巴結轉移情況密切相關[11]。也有報道顯示,PRL?3 可促進腫瘤相關性巨噬細胞分泌,從而誘導結腸癌細胞轉移,影響患者預后情況[12]。本研究中,PRL?3 在癌組織中高表達,淋巴結轉移者表達亦高于未轉移者,PRL?3 高表達為乳腺癌患者預后的相關因素,說明PRL?3 在乳腺癌發生、轉移的過程中可能發揮了一定的作用。結合以往文獻分析,可能與以下幾點有關:①PRL?3 可刺激血管內皮生長因子及其相關受體的過高表達,誘導腫瘤生長、侵襲和轉移;②PRL?3 可正向調控P13K 細胞通路誘導腫瘤侵襲和轉移;③促使PRL?3 信號轉導途徑激活,進而發揮調控腫瘤細胞活動性和侵襲性;④介導細胞外調節蛋白激酶信號傳導通路的作用,可刺激腫瘤血管的生成,進一步加快腫瘤的生長和成熟,同時可誘導淋巴結轉移和遠處轉移[13]。
C?erbB?2是目前公認與乳腺癌發生、發展之間有密切聯系的原癌基因,對細胞生長、增殖、分化具有調控作用;其產物的過度表達往往提示腫瘤惡性程度高,預后情況不佳。目前研究發現C?erbB?2 在乳腺癌組織中的表達程度結果差異較大,最低陽性表達為20%,最高可達70%,本組中C?erbB?2 在乳腺癌組織陽性表達率為67.82%,與大部分研究結果相符[14]。有學者認為C?erbB?2表達與乳腺癌臨床分期、病理類型、分化程度等存在相關性,C?erbB?2 表達情況與乳腺癌患者淋巴結轉移情況為正相關,C?erbB?2 陽性表達者出現轉移、復發機率高,總生存期短[15]。本研究中,C?erbB?2 在癌組織、有淋巴結轉移者中表達明顯高于癌旁組織以及無淋巴結轉移者,且與患者預后存在一定聯系,說明C?erbB?2 表達與乳腺癌淋巴結轉移之間密切相關,C?erbB?2 過度表達的乳腺癌具有更強的侵襲力與轉移能力,此類患者預后情況也較差。
綜上所述,TAMs、PRL?3 及C?erbB?2 過度表達與乳腺癌淋巴結轉移可能存在一定的聯系,對乳腺癌患者預后評估有參考價值。